Summary

Automatisering av bearbetning av citrusknoppved för nedströms patogendetektering genom instrumentteknik

Published: April 21, 2023
doi:

Summary

Vi konstruerade, tillverkade och validerade ett instrument som snabbt bearbetar floemrika barkvävnader från citrusknoppar. Jämfört med nuvarande metoder har budwood tissue extractor (BTE) ökat provgenomströmningen och minskat de nödvändiga arbets- och utrustningskostnaderna.

Abstract

Transplantatöverförbara, floembegränsade patogener av citrusfrukter som virus, viroider och bakterier är ansvariga för förödande epidemier och allvarliga ekonomiska förluster över hela världen. Till exempel dödade citrus tristeza-viruset över 100 miljoner citrusträd globalt, medan “Candidatus Liberibacter asiaticus” har kostat Florida 9 miljarder dollar. Användningen av patogentestad citrusknoppved för trädförökning är avgörande för hanteringen av sådana patogener. Citrus Clonal Protection Program (CCPP) vid University of California, Riverside, använder PCR-analyser (polymeraskedjereaktion) för att testa tusentals prover från citrusknoppar varje år för att skydda Kaliforniens citrusfrukter och för att tillhandahålla rena förökningsenheter till National Clean Plant Network. En allvarlig flaskhals i den storskaliga molekylära detektionen av citrusvirus och viroider är bearbetningssteget för växtvävnad.

Korrekt vävnadsberedning är avgörande för extraktion av nukleinsyror av hög kvalitet och nedströms användning i PCR-analyser. Att hacka, väga, frystorka, mala och centrifugera växtvävnad vid låga temperaturer för att undvika nukleinsyranedbrytning är tids- och arbetskrävande och kräver dyr och specialiserad laboratorieutrustning. Denna artikel presenterar valideringen av ett specialiserat instrument konstruerat för att snabbt bearbeta floemrika barkvävnader från citrusknoppved, kallat budwood tissue extractor (BTE). BTE ökar provgenomströmningen med 100 % jämfört med nuvarande metoder. Dessutom minskar det arbetskraften och kostnaden för utrustning. I detta arbete hade BTE-proverna ett DNA-utbyte (80,25 ng/μL) som var jämförbart med CCPP:s handhackningsprotokoll (77,84 ng/μL). Detta instrument och det snabba bearbetningsprotokollet för växtvävnad kan gynna flera citrusdiagnostiska laboratorier och program i Kalifornien och bli ett modellsystem för vävnadsbearbetning för andra vedartade perenna grödor över hela världen.

Introduction

Transplantatöverförbara floembegränsade patogener av citrusfrukter, såsom viroider, virus och bakterier, har orsakat förödande epidemier och allvarliga ekonomiska förluster i alla citrusproducerande områden i världen. Citrusviroider begränsar produktionsfaktorer på grund av de exokortis- och kakexisjukdomar som de orsakar i ekonomiskt viktiga citrustyper, såsom trifoliat, trifoliathybrider, mandariner, klementiner och mandariner 1,2,3. I Kalifornien är dessa viroidkänsliga citrustyper grunden för den växande och lönsamma marknaden för “lättskalade”, vilket följer den skiftande trenden i konsumenternas preferens för frukter som är lätta att skala, segmenterade och kärnfria 4,5,6. Således regleras citrusviroider enligt California Department of Food and Agriculture (CDFA) “Citrus Nursery Stock Pest Cleanliness Program-Senate Bill 140”, och laboratorierna i CDFA:s Plant Pest Diagnostics Branch utför tusentals citrusviroidtester årligen 7,8,9,10 . Citrus tristeza-virus (CTV) har orsakat döden av över 100 miljoner citrusträd sedan början av den globala epidemin på 1930-talet 3,9,10,11. I Kalifornien utgör stamgropar och trifoliatbrytande resistensisolat av viruset ett allvarligt hot mot Kaliforniens citrusindustri som omsätter 3,6 miljarder dollar12,13,14. Följaktligen klassificerar CDFA CTV som en reglerad klass A-växtskadegörare, och laboratoriet vid Central California Tristeza Eradication Agency (CCTEA) utför omfattande fältundersökningar och tusentals virustester varje år15,16. Bakterien “Candidatus Liberibacter asiaticus” (CLas) och huanglongbing-sjukdomen (HLB) beräknas ha orsakat nära 9 miljarder dollar i ekonomisk skada för Florida som ett resultat av en 40-procentig minskning av citrusarealen, en 57-procentig minskning av citrusodlingen och en förlust av nästan 8 000 arbetstillfällen17,18. I Kalifornien förutspåddes en hypotetisk 20-procentig minskning av citrusarealen på grund av HLB leda till mer än 8 200 förlorade arbetstillfällen och en minskning av delstatens bruttonationalprodukt med över en halv miljard dollar. Därför spenderar Citrus Pest and Disease Prevention Program över 40 miljoner dollar årligen på undersökningar för att testa, upptäcka och utrota CLas från Kalifornien14,17,19,20.

En viktig del av hanteringen av citrusviroider, virus och bakterier är användningen av patogentestade förökningsmaterial (t.ex. knoppved) för trädproduktion. Patogentestad citrusknoppved produceras och underhålls inom omfattande karantänprogram som använder avancerade tekniker för eliminering och detektion av patogener10,21. Citrus Clonal Protection Program (CCPP) vid University of California, Riverside, testar tusentals knoppträprover varje år från citrussorter som nyligen importerats till delstaten och USA, samt träd från citrusknoppar, för att skydda Kaliforniens citrus och stödja funktionerna hos National Clean Plant Network for Citrus10,17,22. För att hantera den stora volymen citrustester är tillförlitliga och kostnadseffektiva patogendetektionsanalyser med hög genomströmning en grundläggande komponent för framgång för program som CCPP 7,10,22.

Även om molekylbaserade patogendetektionsanalyser som polymeraskedjereaktion (PCR) har möjliggjort betydande ökningar av genomströmningen i växtdiagnostiska laboratorier, är enligt vår erfarenhet en av de mest kritiska flaskhalsarna i implementeringen av protokoll med hög genomströmning bearbetningssteget för växtvävnadsprover. Detta gäller särskilt för citrusfrukter eftersom de för närvarande tillgängliga protokollen för bearbetning av floemrika vävnader som bladskaft och knoppvedsbark är arbetskrävande, tidskrävande och kräver dyr och specialiserad laboratorieutrustning. Dessa protokoll kräver handhackning, vägning, frystorkning, malning och centrifugering vid låga temperaturer för att undvika nukleinsyranedbrytning 8,23,24. Vid diagnoslaboratoriet CCPP omfattar provbearbetningen till exempel i) handhackning (6–9 prover/h/operatör), ii) frystorkning (16–24 timmar), iii) pulverisering (30–60 s) och iv) centrifugering (1–2 timmar). Processen kräver också specialutrustning (t.ex. kraftiga safe-lock-rör, slipkulor i rostfritt stål, adaptrar, blad, handskar) och flera delar av dyr laboratorieutrustning (t.ex. ultralåg frys, frystork, vävnadspulveriserare, kryostation med flytande kväve, kylcentrifug).

Som i alla branscher är utrustningsteknik och automatisering av processer nyckeln till att sänka kostnaderna, öka genomströmningen och tillhandahålla högkvalitativa, enhetliga produkter och tjänster. Citrusindustrin behöver billiga instrument för bearbetning av vävnader som kräver minimal skicklighet för att fungera och som därför är lätta att överföra till diagnostiska laboratorier och fältverksamhet för att möjliggöra hög provbearbetningskapacitet för snabb upptäckt av patogener nedströms. Technology Evolving Solutions (TES) och CCPP utvecklade (dvs. designar och tillverkar) och validerade (dvs. testade med citrusprover och jämförde med standardlaboratorieprocedurer) ett billigt (dvs. eliminerade behovet av specialiserad laboratorieutrustning) instrument för snabb bearbetning av floemrika citrusvävnader (dvs. knoppved), kallat budwood tissue extractor (BTE). Som framgår av figur 1 innehåller BTE en baskomponent för ström och kontroller, plus en avtagbar kammare för bearbetning av citrusknoppved. BTE-kammaren består av en slipskiva som är speciellt utformad för att ta bort de floemrika barkvävnaderna från citrusknoppen. Den strimlade barkvävnaden matas snabbt ut genom en glidport till en spruta som innehåller extraktionsbuffert, filtreras och görs redo för nukleinsyraextraktion och rening utan ytterligare hantering eller beredning (figur 1). BTE-systemet innehåller också en papperslös provspårningsapplikation och en integrerad vägningsapplikation, som registrerar provbehandlingsinformationen i en onlinedatabas i realtid.

BTE-systemet har ökat CCPP:s laboratoriediagnostiska kapacitet med över 100 % och har konsekvent producerat extrakt av citrusvävnad som är lämpliga för rening av nukleinsyror av hög kvalitet och nedströms detektion av transplantatöverförbara patogener av citrusfrukter med hjälp av PCR-analyser. Mer specifikt har BTE minskat tiden för vävnadsbearbetning från över 24 timmar till ~3 minuter per prov, ersatt laboratorieinstrument som kostar över 60 000 USD (figur 2, steg 2-4) och möjliggjort bearbetning av större provstorlekar.

Detta dokument presenterar BTE-högkapacitetsbearbetning av citrusbarkvävnadsbearbetning, nukleinsyraextraktion och valideringsdata för patogendetektion med citrusknoppsprover från källträd, inklusive alla lämpliga positiva och negativa kontroller från CCPP Rubidoux Quarantine Facility respektive Lindcove Foundation Facility. Vi presenterar också genomströmnings- och bearbetningstidsförändringarna jämfört med den nuvarande laboratorieproceduren (Figur 2). Dessutom ger detta arbete ett detaljerat, steg-för-steg-protokoll för testlaboratorier för citruspatogener och visar hur BTE kan stödja funktionerna hos patogenrena plantskole-, undersöknings- och utrotningsprogram.

Figure 1
Figur 1: Vävnadsextraktor av knoppträ. BTE innehåller en baskomponent för kraft och kontroller, plus en avtagbar kammare för bearbetning av citrusknoppved. BTE-kammaren består av en slipskiva som är speciellt utformad för att ta bort de floemrika barkvävnaderna från citrusknoppved. Den strimlade barkvävnaden matas snabbt ut genom en glidport i en spruta, filtreras och görs redo för nukleinsyraextraktion och rening utan ytterligare hantering eller förberedelse. Förkortning: BTE = budwood tissue extractor. Klicka här för att se en större version av denna figur.

Figure 2
Figur 2: Steg-för-steg-jämförelse mellan den konventionella handhackningsproceduren i labbet och BTE-bearbetning. BTE-bearbetning involverar bearbetning av citrusbarkvävnad med hög kapacitet, nukleinsyraextraktion och patogendetektering. Tiden för varje steg anges inom parentes. Klicka här för att se en större version av denna figur.

Protocol

1. Samla in proverna av citrusknoppträ som ska skickas Skicka Technology Evolving Solutions ett kalkylblad med trädinformation som de kan läsa in på sin webbserver (så småningom kommer användaren att skapa nya träd). Använd telefonappen TES-spåraren för att välja ett träd och håll en NFC-halsbandstagg mot telefonen för att läsa in trädinformationen till taggen. Sätt in tre till fyra citrusknoppsprover i den BTE-kompatibla plastpåshållaren…

Representative Results

RNA-extraktion, rening och kvalitet med hjälp av BTE-bearbetad citrusvävnad från knoppved och bedömning av tid för vävnadsbearbetningVi använde knoppvedsprover från 255 representativa citrusträd för detta test för att jämföra RNA-kvaliteten från BTE jämfört med standardproceduren. Proverna bearbetades med budwood tissue extractor (BTE) (protokollsteg 4.1-4.6 och figur 2, höger sida, steg 1, steg 5 och steg 6) eller framställdes enligt den regulatoriskt …

Discussion

I och med tillkomsten av HLB-citrussjukdomen har citrusindustrin, tillsynsmyndigheter och diagnostiska laboratorier uppmanats att förlita sig på nukleinsyraextraktionsmetoder med hög genomströmning i kombination med manuell provbearbetning med låg genomströmning och patogendetektionsanalyser som qPCR34 för testning av enskilda träd, i kombination med metoder för sjukdomshantering35. Kaliforniens HLB-positivitetsgrad har gått från 0,01 % 2012 till 1,2 % 2020. Äve…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna erkänner Cahuilla-folket som de traditionella väktarna av det land där det experimentella arbetet slutfördes. Vi är tacksamma mot professor Norman Ellstrand vid University of California, Riverside, för att ha tillhandahållit labbutrymme för att genomföra forskningsaktiviteter för detta projekt inom ramen för UCR California Agriculture and Food Enterprise (CAFÉ) Initiative. Denna forskning stöddes av CDFA – Specialty Crop Block Grant Program (anslag nr 18-0001-055-SC). Ytterligare stöd tillhandahölls också av CRB-projektet 6100; USDA National Institute of Food and Agriculture, Hatch-projektet 1020106; och National Clean Plant Network-USDA Animal and Plant Health Inspection Service (AP17PPQS&T00C118, AP18PPQS&T00C107, AP19PPQS&T00C148, & AP20PPQS&T00C049) tilldelas Georgios Vidalakis.

Materials

0.08" Hex Trimmer line PowerCare FPRO07065 Needed to replace blades.
1 Hp, 8 gal air compressor California Air Tools 8010 Quickly dry chambers after rinsed
1.5 mL microcentrifuge tube Globe Scientific 111558B Store sample in after swishing with syinges
10 mL Syringe Set Technology Evolving Solutions TE006-F1-10A-G1000-E1 Syringe material is cut into. 1 L bottle with guanidine thiocyanate buffer. WARNING – contains guanidine thiocyanate, hazardous waste service required – do not mix with bleach
12" Ruler Westcott ‎16012 To measure trimmer line before cutting
12% Sodium Hypochlorite Hasa 1041 Disinfects chambers after processing
-20 C Freezer Insignia NS-CZ70WH0 Store sample after processing
4" x 12" plastic bags Plymor FP20-4×12-10 Bags to hold branches during shipping. O-rings attach bag to BTE chamber to seal
6" Cotton Swab Puritan 806-PCL Swab to remove clogs
7 Gallon Storage Tote HDX 206152 Holds sodium hypochlorite solution to disinfect chambers and water to rinse chambers
Air blow gun JASTIND ‎JTABG103A Directs air into the chambers at high pressure
Black Sharpie Sharpie  S-19421 Mark 1.5 mL tubes so you can identify sample later
Bottle Top Dispensor Brand Z627569 Adjustable bottle top dispensor to dispense guandine into syringe
BTE Chamber Technology Evolving Solutions TE002BB-A05-E1 Used to process budwood. Includes O-rings, BTE Slide, slide plunger, drain valve, lid, blade set, and blade set removal tool
Dish Soap Dawn 57445CT Surfectant to improve sodium hypochlorite penetration into chamber
Fume hood with hepa filter Air Science P5-36XT-A Fume hood with hepa filter (ASTS-030)  to limit possible contamination and protect against chemical spills
Insulated foam shipping container PolarTech 261/J50C Insulated shipping container to ship samples on ice after they are collected
Lab coat Red Kap KP14WH LN 46 Lab coat to limit possible contamination and protect against chemical spills
Laptop Microsoft Surface Wifi capable laptop to run TES GUI. Needed for initial setup and provides more indepth information about the tissue processing base
NFC Capable Phone Samsung Galaxy S9 Phone to download and use TES phone app
NFC clip tag Technology Evolving Solutions TE005-Clip-E1 Sample tag that can be linked with trees. Made to function with TES phone app
NFC Collar Tag Technology Evolving Solutions TE005-Collar-E1 Tag that is attached to a tree. Made to function with TES phone app
Nitrile Gloves Usa Scientific 3915-4400 Gloves to limit possible contamination and protect against chemical spills
Noise-Reducing Earmuff 3M 90565-4DC-PS Protect ears while operating air compressor and tissue processing base
Polyurethane Recoil Air Hose FYPower ‎510019 Attaches air gun to compressor
Saftey glasses Solidwork SW8329-US Protect eyes for chemical and physical hazards
Spray bottle JohnBee B08QM81BJV Spray bleach to deconatinate surfaces
Tissue Extractor Base Technology Evolving Solutions TE001-A-E1 System to process plant tissue. Needs BTE or LTE chambers to function. Includes power cable, blade adapter, and 8/32" allen wrench
Tissue Processing Base Weight Scale Technology Evolving Solutions TE003-A05-200g-01-E1 200 g, 0.01 resolution weight scale that connects to tissue processing base to enforce weight ranges and/or link weights with sample. Includes scale, power cable, connection cable, 5ml syringe holder, tower air shield 
Vermiculite EasyGoProducts B07WQDZGRP Needed to transport hazardous waste (guanidine thiocyanate) using a hazardous waste disposal service
Wire Cutter Boenfu ‎BOWC-06002-US Wire cutters to cut trimmer line

References

  1. Vernière, C., et al. Interactions between citrus viroids affect symptom expression and field performance of clementine trees grafted on trifoliate orange. Phytopathology. 96 (4), 356-368 (2006).
  2. Vernière, C., et al. Citrus viroids: Symptom expression and effect on vegetative growth and yield of clementine trees grafted on trifoliate orange. Plant Disease. 88 (11), 1189-1197 (2004).
  3. Zhou, C., Talon, M., Caruso, M., Gmitter, F. G., et al. Chapter 19 – Citrus viruses and viroids. The Genus Citrus. , 391-410 (2020).
  4. Trends and issues facing the U.S. citrus industry. Choices Magazine Online Available from: https://www.choicesmagazine.org/choices-magazine/theme-articles/trends-and-challenges-in-fruit-and-tree-nut-sectors/trends-and-issues-facing-the-us-citrus-industry (2021)
  5. Fruit and Tree Nuts Outlook. United States Department of Agriculture-Economic Research Service Available from: https://www.ers.usda.gov/webdocs/outlooks/98171/fts-370.pdf?v=5697 (2020)
  6. Forsyth, J., Fruits Damiani, J. C. i. t. r. u. s. Citrus Fruits. Types on the market. Encyclopedia of Food Sciences and Nutrition. , 1329-1335 (2003).
  7. Bostock, R. M., Thomas, C. S., Hoenisch, R. W., Golino, D. A., Vidalakis, G. Plant health: How diagnostic networks and interagency partnerships protect plant systems from pests and pathogens. California Agriculture. 68 (4), 117-124 (2014).
  8. Osman, F., Dang, T., Bodaghi, S., Vidalakis, G. One-step multiplex RT-qPCR detects three citrus viroids from different genera in a wide range of hosts. Journal of Virological Methods. 245, 40-52 (2017).
  9. Wang, J., et al. Past and future of a century old Citrus tristeza virus collection: A California citrus germplasm tale. Frontiers in Microbiology. 4, 366 (2013).
  10. Gergerich, R. C., et al. Safeguarding fruit crops in the age of agricultural globalization. Plant Disease. 99 (2), 176-187 (2015).
  11. Moreno, P., Ambrós, S., Albiach-Martí, M. R., Guerri, J., Peña, L. Citrus tristeza virus: A pathogen that changed the course of the citrus industry. Molecular Plant Pathology. 9 (2), 251-268 (2008).
  12. Yokomi, R. K., et al. Identification and characterization of Citrus tristeza virus isolates breaking resistance in trifoliate orange in California. Phytopathology. 107 (7), 901-908 (2017).
  13. Selvaraj, V., Maheshwari, Y., Hajeri, S., Yokomi, R. A rapid detection tool for VT isolates of Citrus tristeza virus by immunocapture-reverse transcriptase loop-mediated isothermal amplification assay. PLoS One. 14 (9), 0222170 (2019).
  14. Babcock, B. A. Economic impact of California’s citrus industry in 2020. Journal of Citrus Pathology. 9, (2022).
  15. Gottwald, T. R., Polek, M., Riley, K. History, present incidence, and spatial distribution of Citrus tristeza virus in the California central valley. International Organization of Citrus Virologists Conference Proceedings (1957-2010). 15, (2002).
  16. Yokomi, R., et al. Molecular and biological characterization of a novel mild strain of citrus tristeza virus in California. Archives of Virology. 163 (7), 1795-1804 (2018).
  17. Fuchs, M., et al. Economic studies reinforce efforts to safeguard specialty crops in the United States. Plant Disease. 105 (1), 14-26 (2021).
  18. The real cost of HLB in Florida. Citrus Industry Magazine Available from: https://citrusindustry.net/2019/07/30/the-real-cost-of-hib-in-florida/ (2019)
  19. McRoberts, N., et al. Using models to provide rapid programme support for California’s efforts to suppress Huanglongbing disease of citrus. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 374 (1776), 20180281 (2019).
  20. Albrecht, C., et al. Action plan for Asian citrus psyllid and huanglongbing (citrus greening) in California. Journal of Citrus Pathology. 7 (1), (2020).
  21. Navarro, L., et al. The Citrus Variety Improvement Program in Spain in the period 1975-2001. International Organization of Citrus Virologists Conference Proceedings (1957-2010). 15 (15), (2002).
  22. Vidalakis, G., Gumpf, D. J., Polek, M. L., Bash, J. A., Ferguson, L., Grafton-Cardwell, E. E. The California Citrus Clonal Protection Program. Citrus Production Manual. , 117-130 (2014).
  23. Dang, T., Rao, A. L. N., Lavagi-Craddock, I., Vidalakis, G., et al. High-throughput RNA extraction from citrus tissues for the detection of viroids. In Viroids: Methods and Protocols. 2316, (2022).
  24. Osman, F., Vidalakis, G., Rao, A. L. N., Lavagi-Craddock, I., Vidalakis, G. Real-time detection of viroids using singleplex and multiplex quantitative polymerase chain reaction. Viroids: Methods and Protocols. 2316, (2022).
  25. Li, R., et al. A reliable and inexpensive method of nucleic acid extraction for the PCR-based detection of diverse plant pathogens. Journal of Virological Methods. 154 (1-2), 48-55 (2008).
  26. Saponari, M., Manjunath, K., Yokomi, R. K. Quantitative detection of Citrus tristeza virus in citrus and aphids by real-time reverse transcription-PCR (TaqMan). Journal of Virological Methods. 147 (1), 43-53 (2008).
  27. Damaj, M. B., et al. Reproducible RNA preparation from sugarcane and citrus for functional genomic applications. International Journal of Plant Genomics. 2009, 765367 (2009).
  28. Dang, T., et al. First report of citrus leaf blotch virus infecting Bearss lime tree in California. Plant Disease. 104 (11), 3088 (2020).
  29. Manchester, K. L. Use of UV methods for measurement of protein and nucleic acid concentrations. BioTechniques. 20 (6), 968-970 (1996).
  30. Teare, J. M., et al. Measurement of nucleic acid concentrations using the DyNA QuantTM and the GeneQuantTM. BioTechniques. 22 (6), 1170-1174 (1997).
  31. Imbeaud, S. Towards standardization of RNA quality assessment using user-independent classifiers of microcapillary electrophoresis traces. Nucleic Acids Research. 33 (6), 56-56 (2005).
  32. Menzel, W., Jelkmann, W., Maiss, E. Detection of four apple viruses by multiplex RT-PCR assays with coamplification of plant mRNA as internal control. Journal of Virological Methods. 99 (1-2), 81-92 (2002).
  33. Vidalakis, G., Rao, A. L. N., Lavagi-Craddock, I., Vidalakis, G., et al. SYBR Green RT-qPCR for the universal detection of citrus viroids. Viroids: Methods and Protocols. , 211-217 (2022).
  34. Arredondo Valdés, R., et al. A review of techniques for detecting Huanglongbing (greening) in citrus. Canadian Journal of Microbiology. 62 (10), 803-811 (2016).
  35. Li, S., Wu, F., Duan, Y., Singerman, A., Guan, Z. Citrus greening: Management strategies and their economic impact. HortScience. 55 (5), 604-612 (2020).
  36. . CDFA California Citrus Pest and Disease Prevention Program Operations Subcomittee Meeting. Meeting Minutes Available from: https://www.cdfa.ca.gov/citrus/docs/minutes/2019/OpsSubcoMinutes-11062019.pdf (2019)
check_url/fr/65159?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Pagliaccia, D., Hill, D., Dang, E., Uribe, G., De Francesco, A., Milton, R., De La Torre, A., Mounkam, A., Dang, T., Bodaghi, S., Lavagi-Craddock, I., Syed, A., Grover, W., Okamba, A., Vidalakis, G. Automating Citrus Budwood Processing for Downstream Pathogen Detection Through Instrument Engineering. J. Vis. Exp. (194), e65159, doi:10.3791/65159 (2023).

View Video