Summary

Séquençage ultra-rapide de nouvelle génération basé sur l’amplicon dans le cancer du poumon non épidermoïde non à petites cellules

Published: September 08, 2023
doi:

Summary

L’augmentation du nombre de biomarqueurs moléculaires à tester pour la prise en charge du cancer du poumon non à petites cellules non épidermoïde (NS-NSCLC) a entraîné la mise au point de méthodes de détection moléculaire rapides et fiables. Nous décrivons un flux de travail pour l’évaluation de l’altération génomique chez les patients atteints de NS-CPNPC à l’aide d’une approche de séquençage ultra-rapide de nouvelle génération (NGS).

Abstract

Le nombre d’altérations moléculaires à tester pour le traitement ciblé des patients atteints d’un cancer du poumon non à petites cellules non épidermoïde (NS-CPNPC) a considérablement augmenté ces dernières années. La détection d’anomalies moléculaires est obligatoire pour la prise en charge optimale des patients atteints de NS-NSCLC avancés ou métastatiques, ce qui permet d’administrer des thérapies ciblées avec une amélioration de la survie globale. Néanmoins, ces tumeurs développent des mécanismes de résistance qui sont potentiellement ciblables à l’aide de nouvelles thérapies. Certaines altérations moléculaires peuvent également moduler la réponse au traitement. La caractérisation moléculaire du NS-NSCLC doit être réalisée dans un délai d’exécution court (TAT), en moins de 10 jours ouvrables, comme le recommandent les directives internationales. De plus, l’origine des biopsies tissulaires pour l’analyse génomique est diverse, et leur taille ne cesse de diminuer avec le développement de méthodes et de protocoles moins invasifs. Par conséquent, les pathologistes sont mis au défi d’effectuer des techniques moléculaires efficaces tout en maintenant une stratégie de diagnostic efficace et rapide. Nous décrivons ici le flux de travail ultra-rapide de séquençage de nouvelle génération (NGS) basé sur l’amplicon utilisé dans la pratique quotidienne de routine au moment du diagnostic chez les patients atteints de NS-NSCLC. Nous avons montré que ce système est capable d’identifier les cibles moléculaires actuelles utilisées en médecine de précision en oncologie thoracique dans un TAT approprié.

Introduction

Au cours de la dernière décennie, le développement de thérapies ciblées et d’immunothérapies a considérablement augmenté la survie globale (SG) du cancer du poumon non épidermoïde non à petites cellules (NS-CPNPC)1,2. À cet égard, le nombre de gènes et de cibles moléculaires obligatoires à analyser lors du traitement du CPNPC a augmenté au cours des dernières années 3,4.

Les lignes directrices internationales actuelles recommandent de tester l’EGFR, l’ALK, le ROS1, le BRAF, le NTRK, le RET, le MET et le MET lors du diagnostic du NS-NSCLC5 avancé. De plus, comme de nouveaux médicaments ont récemment donné des résultats très prometteurs dans les essais cliniques, d’autres altérations génomiques seront prochainement criblées dans un certain nombre de gènes supplémentaires, notamment KRAS et HER2, ainsi que BRAC1/BRAC2, PI3KA, NRG1 et NUT 6,7,8,9. De plus, le statut de différents gènes associés, tels que STK11, KEAP1 et TP53, peut être d’un grand intérêt pour une meilleure prédiction de la réponse ou de la résistance à certaines thérapies ciblées et/ou inhibiteurs de points de contrôle immunitaires (ICI)10,11,12.

Il est important de noter que les altérations moléculaires doivent être signalées sans délai significatif afin d’assurer une prise de décision clinique prudente. L’absence de caractérisation moléculaire d’une tumeur peut conduire à l’instauration de thérapies non ciblées telles que la chimiothérapie avec/sans immunothérapie, conduisant à une stratégie de traitement sous-optimale, car la réponse à la chimiothérapie est limitée chez les patients présentant des altérations exploitables, telles que des mutations de l’EGFR ou des fusions de gènes13.

De plus, le développement actuel de thérapies/immunothérapies ciblées dans des contextes néoadjuvants et/ou adjuvants pourrait conduire à rechercher systématiquement, au moins, des altérations de l’EGFR et de l’ALK dans le NS-NSCLC à un stade précoce, car les ICI ne devraient être administrées que dans les tumeurs de type sauvage pour l’EGFR et l’ALK14. Il est désormais également obligatoire de tester la présence de mutations de l’EGFR dans le NS-NSCLC à un stade précoce, car l’osimertinib (un inhibiteur de la tyrosine kinase de l’EGFR de troisième génération) peut être utilisé comme traitement adjuvant dans le NS-NSCLC15 mutant de l’EGFR.

La stratégie d’évaluation des différents biomarqueurs pour prédire la réponse à différentes thérapies ciblées et/ou immunothérapies chez les patients atteints de NS-CPNPC évolue rapidement, ce qui rend l’identification de ces biomarqueurs séquentiellement difficile 3,16. À cet égard, le séquençage de nouvelle génération (NGS) est maintenant l’approche optimale pour l’évaluation parallèle à haut débit des altérations génétiques dans le NS-NSCLC 5,17.

Cependant, le flux de travail NGS peut être difficile à maîtriser et peut conduire à un TAT18,19 plus long. Ainsi, de nombreux centres pratiquent encore des approches séquentielles (immunohistochimie (IHC), hybridation in situ par fluorescence (FISH) et/ou séquençage ciblé). Cependant, cette stratégie est limitée dans le cas d’un échantillon de petite taille et, surtout, en raison de l’augmentation du nombre de mutations exploitables qui doivent être testées dans le NS-CPNPC20. Ainsi, les méthodes de test ultra-rapides et simples permettant l’évaluation rapide des altérations génétiques sont devenues de plus en plus importantes pour une prise de décision clinique optimale. De plus, les systèmes approuvés et accrédités pour les tests moléculaires deviennent obligatoires pour la prescription de thérapies ciblées spécifiques.

Nous décrivons ici un test NGS ADN/ARN ultra-rapide et automatisé à base d’amplicon pour les tests moléculaires du NS-NSCLC qui est utilisé dans le Laboratoire de Pathologie Clinique et Expérimentale (LPCE) du CHU de Nice, France et qui est accrédité selon la norme ISO 15189 par le Comité Français d’Accréditation (COFRAC) (https://www.cofrac.fr/). Le COFRAC certifie que le laboratoire répond aux exigences de la norme ISO 15189 et des règles d’application COFRAC pour les activités d’essais/étalonnage en analyse moléculaire en NGS automatisé sur séquenceur avec le panel réalisé par le laboratoire. L’accréditation selon la norme internationale reconnue ISO 15189 atteste de la compétence technique du laboratoire pour un périmètre défini et du bon fonctionnement d’un système de management approprié dans ce laboratoire. Les avantages et les limites de ce flux de travail, depuis la préparation des échantillons de biopsie tissulaire jusqu’à l’obtention du rapport, sont discutés.

Protocol

Toutes les procédures ont été approuvées par le comité d’éthique local (Comité d’éthique de la recherche humaine, Centre Hospitalier Universitaire de Nice, Tumorothèque BB-0033-00025). Le consentement éclairé de tous les patients a été obtenu pour l’utilisation d’échantillons et de données générées. Tous les échantillons ont été prélevés sur des patients diagnostiqués avec NS-NSCLC à LPCE (Nice, France) entre le 20 septembre et le 31 janvier 2022 dans le cadre des soins médicaux. <p …

Representative Results

À l’aide de la procédure présentée ici, décrite en détail dans nos publications récentes21, nous avons développé un flux de travail optimal pour l’évaluation de l’altération moléculaire en tant que test réflexe dans la pratique clinique de routine pour le diagnostic chez les patients atteints de NSCLC à l’aide d’une approche de séquençage ultra-rapide basée sur l’amplicon de nouvelle génération. Le flux de travail moléculaire de la méthode est illustré à la <stro…

Discussion

La mise au point d’une approche NGS ultra-rapide basée sur l’amplicon en tant que test réflexe pour l’évaluation de l’altération moléculaire au diagnostic de n’importe quel stade du NS-NSLC est une option optimale pour la détection de tous les biomarqueurs recommandés et émergents recommandés par les lignes directrices dans NS-NSCLC 5,22,23. Alors que les méthodes séquentielles (IHC, PCR, FISH) se concentren…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous remercions Thermo Fisher Scientific de nous avoir donné la possibilité d’utiliser leur appareil et leurs matériaux.

Materials

96 well hard shell plate clear Thermo Fisher Scientific (Waltham, Massachusetts, USA) 4483354
Adhesive PCR Plate Foil Thermo Fisher Scientific (Waltham, Massachusetts, USA) AB0626
AutoLys M tube  Thermo Fisher Scientific (Waltham, Massachusetts, USA) A38738 FFPE sample processing tubes
Genexus Barcodes 1-32 HD Thermo Fisher Scientific (Waltham, Massachusetts, USA) A40261
Genexus GX5 Chip and Genexus Coupler Thermo Fisher Scientific (Waltham, Massachusetts, USA) A40269
Genexus Pipette Tips Thermo Fisher Scientific (Waltham, Massachusetts, USA) A40266
Genexus Purification Instrument Thermo Fisher Scientific (Waltham, Massachusetts, USA) A48148 Automated purification instrument (API)
Genexus Sequencing Kit Thermo Fisher Scientific (Waltham, Massachusetts, USA) A40271
Genexus Templating Strips 3-GX5 and 4 Thermo Fisher Scientific (Waltham, Massachusetts, USA) A40263
Genexus Integrated Sequencer Thermo Fisher Scientific (Waltham, Massachusetts, USA) A45727
Ion Torrent  Genexus FFPE DNA/RNA Purification Combo Kit Thermo Fisher Scientific (Waltham, Massachusetts, USA) A45539
Oncomine  Precision Assay GX (OPA) Panel (included Strips 1 and 2-HD) Thermo Fisher Scientific (Waltham, Massachusetts, USA) A46291

References

  1. Howlader, N., et al. The effect of advances in lung-cancer treatment on population mortality. New England Journal of Medicine. 383 (7), 640-649 (2020).
  2. Melosky, B., et al. The rapidly evolving landscape of novel targeted therapies in advanced non-small cell lung cancer. Lung Cancer. 160, 136-151 (2021).
  3. Hanna, N. H., et al. Therapy for stage IV non-small-cell lung cancer with driver alterations: ASCO and OH (CCO) joint guideline update. Journal of Clinical Oncology. 39 (9), 1040-1091 (2021).
  4. Kerr, K. M., et al. The evolving landscape of biomarker testing for non-small cell lung cancer in Europe. Lung Cancer. 154, 161-175 (2021).
  5. Mosele, F., et al. Recommendations for the use of next-generation sequencing (NGS) for patients with metastatic cancers: a report from the ESMO precision medicine working group. Annals of Oncology. 31 (11), 1491-1505 (2020).
  6. Kazdal, D., Hofman, V., Christopoulos, P., Ilié, M., Stenzinger, A., Hofman, P. Fusion-positive non-small cell lung carcinoma: Biological principles, clinical practice, and diagnostic implications. Genes Chromosomes and Cancer. 61 (5), 244-260 (2022).
  7. Li, B. T., et al. Trastuzumab deruxtecan in HER2 -mutant non-small-cell lung cancer. New England Journal of Medicine. 386 (3), 241-251 (2022).
  8. Bontoux, C., Hofman, V., Brest, P., Ilié, M., Mograbi, B., Hofman, P. Daily practice assessment of KRAS status in NSCLC patients: A new challenge for the thoracic pathologist is right around the corner. Cancers. 14 (7), 1628 (2022).
  9. Skoulidis, F., et al. Sotorasib for lung cancers with KRAS p.G12C mutation. New England Journal of Medicine. 384 (25), 2371-2381 (2021).
  10. Hellyer, J. A., et al. Impact of tumor suppressor gene co-mutations on differential response to EGFR TKI therapy in EGFR L858R and Exon 19 deletion lung cancer. Clinical Lung Cancer. 23 (3), 264-272 (2022).
  11. Mograbi, B., Heeke, S., Hofman, P. The importance of stk11/lkb1 assessment in non-small cell lung carcinomas. Diagnostics. 11 (2), 196 (2021).
  12. Nadal, E., et al. Two patients with advanced-stage lung adenocarcinoma with radiologic complete response to nivolumab treatment harboring an STK11/LKB1 mutation. JCO Precision Oncology. 4, 1239-1245 (2022).
  13. Smeltzer, M. P., et al. The international association for the study of lung cancer global survey on molecular testing in lung cancer. Journal of Thoracic Oncology. 15 (9), 1434-1448 (2020).
  14. Ahern, E., Solomon, B. J., Hui, R., Pavlakis, N., O’Byrne, K., Hughes, B. G. M. Neoadjuvant immunotherapy for non-small cell lung cancer: Right drugs, right patient, right time. Journal for ImmunoTherapy of Cancer. 9 (6), e002248 (2021).
  15. Wu, Y. -. L., et al. Osimertinib in resected EGFR-mutated non-small-cell lung cancer. New England Journal of Medicine. 383 (18), 1711-1723 (2020).
  16. Hanna, N. H., et al. Therapy for stage IV non-small-cell lung cancer without driver alterations: ASCO and OH (CCO) joint guideline update. J Clin Oncol. 38 (14), 1608-1632 (2020).
  17. de Maglio, G., et al. The storm of NGS in NSCLC diagnostic-therapeutic pathway: How to sun the real clinical practice. Critical Reviews in Oncology/Hematology. 169, 103561 (2022).
  18. DiStasio, M., Chen, Y., Rangachari, D., Costa, D. B., Heher, Y. K., VanderLaan, P. A. Molecular testing turnaround time for non-small cell lung cancer in routine clinical practice confirms feasibility of CAP/IASLC/AMP guideline recommendations: A single-center analysis. Clinical Lung Cancer. 18 (5), e349-e356 (2017).
  19. Heeke, S., et al. Use of the ion PGM and the genereader NGS systems in daily routine practice for advanced lung adenocarcinoma patients: A practical point of view reporting a comparative study and assessment of 90 patients. Cancers. 10 (4), 88 (2018).
  20. Hofman, P. The challenges of evaluating predictive biomarkers using small biopsy tissue samples and liquid biopsies from non-small cell lung cancer patients. Journal of Thoracic Disease. 11, S57-S64 (2019).
  21. Ilié, M., et al. Setting up an ultra-fast next-generation sequencing approach as reflex testing at diagnosis of non-squamous non-small cell lung cancer; experience of a single center (LPCE, Nice, France). Cancers. 14 (9), 2258 (2022).
  22. Zacharias, M., et al. Reflex testing in non-small cell lung carcinoma using DNA-and RNA-based next-generation sequencing-a single-center experience. Translational Lung Cancer Research. 10 (11), 4221-4234 (2021).
  23. Miller, T. E., et al. Clinical utility of reflex testing using focused nextgeneration sequencing for management of patients with advanced lung adenocarcinoma. Journal of Clinical Pathology. 71 (12), 1108-1115 (2018).
  24. Al-Ahmadi, A., et al. Next generation sequencing of advanced non-small cell lung cancer: utilization based on race and impact on survival. Clinical Lung Cancer. 22 (1), 16.e1-22.e1 (2021).
  25. Kim, J. H., Yoon, S., Lee, D. H., Jang, S. J., Chun, S. M., Kim, S. W. Real-world utility of next-generation sequencing for targeted gene analysis and its application to treatment in lung adenocarcinoma. Cancer Medicine. 10 (10), 3197-3204 (2021).
  26. Sheffield, B. S., et al. Point of care molecular testing: Community-based rapid next-generation sequencing to support cancer care. Current Oncology. 29 (3), 1326-1334 (2022).
  27. Camidge, D. R., Doebele, R. C., Kerr, K. M. Comparing and contrasting predictive biomarkers for immunotherapy and targeted therapy of NSCLC. Nature Reviews Clinical Oncology. 16 (6), 341-355 (2019).
  28. Rosas, D., Raez, L. E., Russo, A., Rolfo, C. Neuregulin 1 gene (Nrg1). A potentially new targetable alteration for the treatment of lung cancer. Cancers. 13 (20), 5038 (2021).
  29. Shapiro, G. I., et al. A Phase 1 study of RO6870810, a novel bromodomain and extra-terminal protein inhibitor, in patients with NUT carcinoma, other solid tumours, or diffuse large B-cell lymphoma. British Journal of Cancer. 124 (4), 744-753 (2021).
  30. Schoenfeld, A. J., et al. The genomic landscape of SMARCA4 alterations and associations with outcomes in patients with lung cancer. Clinical Cancer Research. 26 (21), 5701-5708 (2021).
  31. Zhang, K., et al. Identification of deleterious NOTCH mutation as novel predictor to efficacious immunotherapy in NSCLC. Clinical Cancer Research. 26 (14), 3649-3661 (2020).
  32. Shen, C. I., et al. Real-world evidence of the intrinsic limitations of PCR-based EGFR mutation assay in non-small cell lung cancer. Scientific Reports. 12 (1), 13566 (2022).
  33. Zou, D., et al. Diagnostic value and cost-effectiveness of next-generation sequencing-based testing for treatment of patients with advanced/metastatic non-squamous non-small-cell lung cancer in the United States. Journal of Molecular Diagnostics. 24 (8), 901-914 (2022).
  34. Zhong, Y., Xu, F., Wu, J., Schubert, J., Li, M. M. Application of next generation sequencing in laboratory medicine. Annals of Laboratory Medicine. 41 (1), 25-43 (2020).
  35. Bruno, R., Fontanini, G. Next generation sequencing for gene fusion analysis in lung cancer: A literature review. Diagnostics. 10 (8), 521 (2020).
  36. Hofman, V., et al. Ultra-fast gene fusion assessment for non-squamous non-small cell lung cancer. JTO Clinical and Research Reports. 4 (2), 100457 (2022).
  37. Horgan, D., et al. Personalized medicine perspective identifying the steps required to effectively implement next-generation sequencing in oncology at a national level in Europe. Journal of Personalized Medicine. 12 (1), 72 (2022).
  38. Cohen, D., et al. Optimizing mutation and fusion detection in NSCLC by sequential DNA and RNA sequencing. Journal of Thoracic Oncology. 15 (6), 1000-1014 (2020).
  39. Goswami, R. S., et al. Identification of factors affecting the success of next-generation sequencing testing in solid tumors. American Journal of Clinical Pathology. 145 (2), 222-237 (2016).
  40. Ilie, M., Hofman, P. Pitfalls in Lung Cancer Molecular Pathology: How to Limit them in Routine Practice. Current Medicinal Chemistry. 19 (16), 2638-2651 (2012).

Play Video

Citer Cet Article
Bontoux, C., Lespinet-Fabre, V., Bordone, O., Tanga, V., Allegra, M., Salah, M., Lalvée, S., Goffinet, S., Benzaquen, J., Marquette, C., Ilié, M., Hofman, V., Hofman, P. Ultra-Fast Amplicon-Based Next-Generation Sequencing in Non-Squamous Non-Small Cell Lung Cancer. J. Vis. Exp. (199), e65190, doi:10.3791/65190 (2023).

View Video