Summary

Dissektion av vuxen mus Stria vascularis för sekvensering av en kärna eller immunfärgning

Published: April 21, 2023
doi:

Summary

Den stria vascularis är avgörande för genereringen av endokokleär potential. Här presenterar vi dissektionen av den vuxna musen stria vascularis för sekvensering av en kärna eller immunfärgning.

Abstract

Endokokleär potential, som genereras av stria vascularis, är avgörande för att upprätthålla en miljö som bidrar till lämplig hårcellsmekanotransduktion och slutligen hörsel. Patologier av stria vascularis kan leda till minskad hörsel. Dissektion av den vuxna stria vascularis möjliggör fokuserad enkärnig infångning och efterföljande sekvensering och immunfärgning med en kärna. Dessa tekniker används för att studera stria vascularis patofysiologi på encellsnivå.

Enkärnig sekvensering kan användas vid inställning av transkriptionsanalys av stria vascularis. Samtidigt fortsätter immunfärgning att vara användbar för att identifiera specifika populationer av celler. Båda metoderna kräver korrekt stria vascularis-dissektion som en förutsättning, vilket kan visa sig vara tekniskt utmanande.

Introduction

Cochlean består av tre vätskefyllda kamrar, scala vestibuli, scala media och scala tympani. Scala vestibuli och scala tympani innehåller vardera perilymfa, som har en hög koncentration av natrium (138 mM) och en låg koncentration av kalium (6,8 mM)1. Scalamediet innehåller endolymf, som har en hög koncentration av kalium (154 mM) och en låg koncentration av natrium (0,91 mM)1,2,3. Denna skillnad i jonkoncentration kan kallas endokokleär potential (EP), och genereras främst av rörelsen av kaliumjoner genom olika jonkanaler och gapkorsningar i stria vascularis (SV) längs sidoväggen i cochlea 4,5,6,7,8,9,11 . SV är en heterogen, mycket vaskulär vävnad som leder den mediala aspekten av cochleans sidovägg och innehåller tre huvudcelltyper: marginella, mellanliggande och basala celler12 (figur 1).

Marginalceller är förbundna med täta korsningar för att bilda SV: s mest mediala yta. Det apikala membranet vetter mot endolymfen i scala media och bidrar till kaliumjontransport till endolymfen med hjälp av olika kanaler, inklusive KCNE1 / KCNQ1, SLC12A2 och Na +K + -ATPas (NKA) 5,10,13,14. Intermediära celler är pigmenterade celler som finns mellan marginal- och basalceller och underlättar kaliumtransport genom SV med användning av KCNJ10 (Kir 4.1)15,16. Basalceller ligger i närheten av cochleans sidovägg och är nära associerade med fibrocyter i spiralligamentet för att främja kaliumåtervinning från perilymph12. Patologi av SV har varit inblandad i många otologiska störningar17,18. Mutationer i gener uttryckta i de viktigaste SV-celltyperna, såsom Kcnq1, Kcne1, Kcnj10 och Cldn11, kan orsaka dövhet och SV-dysfunktion, inklusive förlust av EP 19,20,21,22,23. Förutom de tre huvudcelltyperna finns det andra mindre studerade celltyper i SV, såsom spindelceller 22, rotceller12,24, makrofager 25, pericyter 26 och endotelceller 27, som har ofullständigt definierade roller som involverar jonisk homeostas och generering av EP 28.

I jämförelse med bulk-RNA-sekvensering ger enkärnig RNA-sekvensering (sNuc-Seq) information om cellheterogenitet, snarare än ett genomsnitt av mRNA över en grupp celler29, och kan vara särskilt användbar när man studerar den heterogena SV30. Till exempel har sNuc-Seq producerat transkriptionsanalys som tyder på att det kan finnas en roll för spindel och rotceller i EP-generering, hörselnedsättning och Ménières sjukdom18. Ytterligare transkriptionell karakterisering av de olika SV-celltyperna kan ge oss ovärderlig information om patofysiologin bakom olika mekanismer och subtyper av SV-relaterade hörselfluktuationer och hörselnedsättning. Skörden av dessa känsliga inre öronstrukturer är av största vikt för optimal vävnadsanalys.

I denna studie beskrivs mikrodissektionsmetoden för att komma åt och isolera stria vascularis från den vuxna mussnäckan för sNuc-Seq eller immunfärgning. Dissektion av den vuxna musen SV krävs för att förstå olika SV-celltyper och ytterligare karakterisera deras roll i hörseln.

Protocol

Alla djurförsök och procedurer utfördes enligt protokoll som godkänts av djurvårds- och användningskommittén vid National Institute of Neurological Diseases and Stroke och National Institute on Deafness and Other Communication Disorders, National Institutes of Health. Alla experimentella protokoll godkändes av djurvårds- och användningskommittén vid National Institute of Neurological Diseases and Stroke och National Institute on Deafness and Other Communication Disorders, National Institutes of Health. Alla me…

Representative Results

Vi presenterar en metod för att isolera SV som ska användas för antingen sNuc-Seq eller immunfärgning. Den relevanta anatomin (figur 1) för cochlean i förhållande till SV kan hjälpa användare att bättre förstå organisationen av SV och stegen i dissektionsprotokollet. Varje steg i denna mikrodissektion av SV från en P30-mus beskrivs i den tillhörande videon, och ögonblicksbilder av de viktigaste stegen i denna dissektion och isolering av SV presenter…

Discussion

Före tillkomsten av encellssekvensering använde många forskare bulkvävnadsanalys, vilket bara gjorde det möjligt att analysera transkriptom i genomsnitt över celler. I synnerhet gjorde encell och sNuc-Seq det möjligt att isolera transkriptomet av en enda cell respektive enstaka kärna32. I detta fall kan transkriptom med en kärna identifieras för marginal-, mellan- och basalceller samt spindelceller30. Detta möjliggör undersökning av transkriptionell heterogenit…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna forskning stöddes delvis av NIH: s intramurala forskningsprogram, NIDCD till MH (DC000088)

Materials

10-µm filter (Polyethylenterephthalat) PluriSelect #43-50010-01 Filter tissue during sNuc-Seq
18 x 18 mm cover glass Fisher Scientific 12-541A Cover slip to mount SV
30-µm filter (Polyethylenterephthalat) PluriSelect #43-50030-03 Filter tissue during sNuc-Seq
75 x 25 mm Superfrost Plus/Colorforst Plus Microslide Daigger EF15978Z Microslide to mount SV on
C57BL/6J Mice The Jackson Laboratory RRID: IMSR_JAX:000664 General purpose mouse strain that has pigment more easily seen in the intermediate cells of the SV.
Cell Counter Logos Biosystems L20001 Used for cell counting
Chalizon curette 5'', size 3 2.5 mm Biomedical Research Instruments 15-1020 Used to transfer SV
Chromium Next GEM single Cell 3' GEM Kit v3.1 Chromium PN-1000141 Generates single cell 3' gene expression libraries
Clear nail polish Fisher Scientific NC1849418 Used for sealing SV mount
Corning Falcon Standard Tissue Culture Dishes, 24 well Corning 08-772B Culture dish used to hold specimen during dissection
DAPI Invitrogen D1306, RRID: AB_2629482 Stain used for nucleus labeling
Dounce homogenizer Sigma-Aldrich D8938 Used to homogenize tissue for sNuc-seq
Dumont #5 Forceps Fine Science Tools 11252-30 General forceps for dissection
Dumont #55 Forceps Fine Science Tools 11255-20 Forceps with fine tip that makes SV manipulation easier
Fetal Bovine Serum ThermoFisher 16000044 Used for steps of sNuc-Seq
Glue stick Fisher Scientific NC0691392 Used for mounting SV
GS-IB4 Antibody Molecular Probes I21411, RRID: AB-2314662 Antibody used for capillary labeling
KCNJ10-ZsGreen Mice n/a n/a Transgenic mouse that expresses KCNJ10-ZsGreen, partiularly in the intermediate cells of the SV.
MgCl2 ThermoFisher AM9530G Used for steps of sNuc-Seq
Mounting reagent ThermoFisher #S36940 Mounting reagent for SV
Multiwell 24 well plate Corning #353047 Plate used for immunostaining
NaCl ThermoFisher AAJ216183 Used for steps of sNuc-Seq
Nonidet P40 Sigma-Aldrich 9-16-45-9 Used for steps of sNuc-Seq
Nuclease free water ThermoFisher 4387936 Used for steps of sNuc-Seq
Orbital shaker Silent Shake SYC-2102A Used for steps of immunostaining
PBS ThermoFisher J61196.AP Used for steps of immunostaining and dissection
RNA Later Invitrogen AM7021 Used for preservation of SV for sNuc-Seq
Scizzors Fine Science Tools 14058-09 Used for splitting mouse skull
Tris-HCl Sigma-Aldrich 15506017 Used for steps of sNuc-Seq
Trypan blue stain Gibco 15250061 Used for cell counting
Tween20 ThermoFisher AAJ20605AP  Used for steps of sNuc-Seq
Zeiss STEMI SV 11 Apo stereomicroscope Zeiss n/a Microscope used for dissections

References

  1. Bosher, S. K., Warren, R. L. Observations on the electrochemistry of the cochlear endolymph of the rat: a quantitative study of its electrical potential and ionic composition as determined by means of flame spectrophotometry. Proceedings of the Royal Society of London. Series B. Biological Sciences. 171 (1023), 227-247 (1968).
  2. Patuzzi, R. Ion flow in stria vascularis and the production and regulation of cochlear endolymph and the endolymphatic potential. Hearing Research. 277 (1-2), 4-19 (2011).
  3. Wangemann, P. K+ cycling and the endocochlear potential. Hearing Research. 165 (1-2), 1-9 (2002).
  4. Adachi, N., et al. The mechanism underlying maintenance of the endocochlear potential by the K+ transport system in fibrocytes of the inner ear. The Journal of Physiology. 591 (18), 4459-4472 (2013).
  5. Hibino, H., Nin, F., Tsuzuki, C., Kurachi, Y. How is the highly positive endocochlear potential formed? The specific architecture of the stria vascularis and the roles of the ion-transport apparatus. Pflugers Archiv. 459 (4), 521-533 (2010).
  6. Lang, F., Vallon, V., Knipper, M., Wangemann, P. Functional significance of channels and transporters expressed in the inner ear and kidney. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 293 (4), C1187-C1208 (2007).
  7. Liu, W., Schrott-Fischer, A., Glueckert, R., Benav, H., Rask-Andersen, H. The human "cochlear battery"-claudin-11 barrier and ion transport proteins in the lateral wall of the cochlea. Frontiers in Molecular Neuroscience. 10, 239 (2017).
  8. Marcus, D. C., Wu, T., Wangemann, P., Kofuji, P. KCNJ10 (Kir4.1) potassium channel knockout abolishes endocochlear potential. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 282 (2), C403-C407 (2002).
  9. Spicer, S. S., Schulte, B. A. Differentiation of inner ear fibrocytes according to their ion transport related activity. Hearing Research. 56 (1-2), 53-64 (1991).
  10. Wangemann, P., Liu, J., Marcus, D. C. Ion transport mechanisms responsible for K+ secretion and the transepithelial voltage across marginal cells of stria vascularis in vitro. Hearing Research. 84 (1-2), 19-29 (1995).
  11. Yoshida, T., et al. The unique ion permeability profile of cochlear fibrocytes and its contribution to establishing their positive resting membrane potential. Pflugers Archiv. 468 (9), 1609-1619 (2016).
  12. Johns, J. D., Adadey, S. M., Hoa, M. The role of the stria vascularis in neglected otologic disease. Hearing Research. 428, 108682 (2023).
  13. Kim, J., Ricci, A. J. In vivo real-time imaging reveals megalin as the aminoglycoside gentamicin transporter into cochlea whose inhibition is otoprotective. Proceedings of the National Academy of Sciences. 119 (9), e2117846119 (2022).
  14. Zdebik, A. A., Wangemann, P., Jentsch, T. J. Potassium ion movement in the inner ear: insights from genetic disease and mouse models. Physiology. 24, 307-316 (2009).
  15. Chen, J., Zhao, H. B. The role of an inwardly rectifying K+ channel (Kir4.1) in the inner ear and hearing loss. Neurosciences. 265, 137-146 (2014).
  16. Steel, K. P., Barkway, C. Another role for melanocytes: their importance for normal stria vascularis development in the mammalian inner ear. Development. 107 (3), 453-463 (1989).
  17. Ito, T., Nishio, A., Wangemann, P., Griffith, A. J. Progressive irreversible hearing loss is caused by stria vascularis degeneration in an Slc26a4-insufficient mouse model of large vestibular aqueduct syndrome. Neurosciences. 310, 188-197 (2015).
  18. Gu, S., et al. Characterization of rare spindle and root cell transcriptional profiles in the stria vascularis of the adult mouse cochlea. Scientific Reports. 10 (1), 18100 (2020).
  19. Gow, A., et al. Deafness in claudin 11-null mice reveals the critical contribution of basal cell tight junctions to stria vascularis function. The Journal of Neuroscience. 24 (32), 7051-7062 (2004).
  20. Chang, Q., et al. Virally mediated Kcnq1 gene replacement therapy in the immature scala media restores hearing in a mouse model of human Jervell and Lange-Nielsen deafness syndrome. EMBO Molecular Medicine. 7 (8), 1077-1086 (2015).
  21. Faridi, R., et al. Mutational and phenotypic spectra of KCNE1 deficiency in Jervell and Lange-Nielsen Syndrome and Romano-Ward Syndrome. Human Mutation. 40 (2), 162-176 (2019).
  22. Wangemann, P., et al. Loss of KCNJ10 protein expression abolishes endocochlear potential and causes deafness in Pendred syndrome mouse model. BMC Medicine. 2, 30 (2004).
  23. Kitajiri, S. -. I., et al. Expression patterns of claudins, tight junction adhesion molecules, in the inner ear. Hearing Research. 187 (1-2), 25-34 (2004).
  24. Jagger, D. J., Nevill, G., Forge, A. The membrane properties of cochlear root cells are consistent with roles in potassium recirculation and spatial buffering. Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 11 (3), 435-448 (2010).
  25. Ito, T., Kurata, N., Fukunaga, Y. Tissue-resident macrophages in the stria vascularis. Frontiers in Neurology. 13, 818395 (2022).
  26. Zhang, J., et al. VEGFA165 gene therapy ameliorates blood-labyrinth barrier breakdown and hearing loss. JCI Insight. 6 (8), e143285 (2021).
  27. Shi, X. Pathophysiology of the cochlear intrastrial fluid-blood barrier (review). Hearing Research. 338, 52-63 (2016).
  28. Gu, S., et al. Identification of potential Meniere’s disease targets in the adult stria vascularis. Frontiers in Neurology. 12, 630561 (2021).
  29. Fischer, J., Ayers, T. Single nucleus RNA-sequencing: how it’s done, applications and limitations. Emerging Topics in Life Sciences. 5 (5), 687-690 (2021).
  30. Korrapati, S., et al. Single cell and single nucleus RNA-Seq reveal cellular heterogeneity and homeostatic regulatory networks in adult mouse stria vascularis. Frontiers in Molecular Neuroscience. 12, 316 (2019).
  31. Pyle, M. P., Hoa, M. Applications of single-cell sequencing for the field of otolaryngology: A contemporary review. Laryngoscope Investigative Otolaryngology. 5 (3), 404-431 (2020).
  32. Hwang, B., Lee, J. H., Bang, D. Single-cell RNA sequencing technologies and bioinformatics pipelines. Experimental & Molecular Medicine. 50 (8), 1-14 (2018).
  33. Shafer, M. E. R. Cross-species analysis of single-cell transcriptomic data. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 7, 175 (2019).
  34. Chen, G., Ning, B., Shi, T. Single-cell RNA-Seq technologies and related computational data analysis. Frontiers in Genetics. 10, 317 (2019).
  35. Longo, S. K., Guo, M. G., Ji, A. L., Khavari, P. A. Integrating single-cell and spatial transcriptomics to elucidate intercellular tissue dynamics. Nature Reviews Genetics. 22 (10), 627-644 (2021).
  36. Kim, N., Kang, H., Jo, A., Yoo, S. A., Lee, H. O. Perspectives on single-nucleus RNA sequencing in different cell types and tissues. Journal of Pathology and Translational Medicine. 57 (1), 52-59 (2023).
  37. Grindberg, R. V., et al. RNA-sequencing from single nuclei. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (49), 19802-19807 (2013).
  38. Montgomery, S. C., Cox, B. C. Whole mount dissection and immunofluorescence of the adult mouse cochlea. Journal of Visuazlied Experiments. (107), e53561 (2016).

Play Video

Citer Cet Article
Strepay, D., Olszewski, R., Taukulis, I., Johns, J. D., Gu, S., Hoa, M. Dissection of Adult Mouse Stria Vascularis for Single-Nucleus Sequencing or Immunostaining. J. Vis. Exp. (194), e65254, doi:10.3791/65254 (2023).

View Video