Summary

Dissectie van volwassen muis Stria vascularis voor single-nucleus sequencing of immunostaining

Published: April 21, 2023
doi:

Summary

De stria vascularis is van vitaal belang voor het genereren van endocochleair potentieel. Hier presenteren we de dissectie van de volwassen muis stria vascularis voor single-nucleus sequencing of immunostaining.

Abstract

Endocochleair potentieel, dat wordt gegenereerd door de stria vascularis, is essentieel om een omgeving te behouden die bevorderlijk is voor geschikte haarcelmechanotransductie en uiteindelijk gehoor. Pathologieën van de stria vascularis kunnen leiden tot een verminderd gehoor. Dissectie van de volwassen stria vascularis maakt gerichte single-nucleus capture en daaropvolgende single-nucleus sequencing en immunostaining mogelijk. Deze technieken worden gebruikt om stria vascularis pathofysiologie op eencellig niveau te bestuderen.

Single-nucleus sequencing kan worden gebruikt in de setting van transcriptionele analyse van de stria vascularis. Ondertussen blijft immunostaining nuttig bij het identificeren van specifieke populaties van cellen. Beide methoden vereisen een goede stria vascularis-dissectie als voorwaarde, wat technisch uitdagend kan blijken te zijn.

Introduction

Het slakkenhuis bestaat uit drie met vloeistof gevulde kamers, de scala vestibuli, scala media en scala tympani. De scala vestibuli en scala tympani bevatten elk perilymfe, dat een hoge concentratie natrium (138 mM) en een lage concentratie kalium (6,8 mM)1 heeft. Het scala media bevat endolymfe, dat een hoge concentratie kalium (154 mM) en een lage concentratie natrium (0,91 mM)1,2,3 heeft. Dit verschil in ionenconcentratie kan worden aangeduid als de endocochleaire potentiaal (EP) en wordt voornamelijk gegenereerd door de beweging van kaliumionen door verschillende ionkanalen en gap junctions in de stria vascularis (SV) langs de zijwand van het slakkenhuis 4,5,6,7,8,9,10,11 . De SV is een heterogeen, sterk gevasculariseerd weefsel dat het mediale aspect van de laterale wand van het slakkenhuis bekleedt en drie hoofdceltypen bevat: marginale, intermediaire en basale cellen12 (figuur 1).

Marginale cellen zijn verbonden door tight junctions om het meest mediale oppervlak van de SV te vormen. Het apicale membraan staat tegenover de endolymfe van de scala-media en draagt bij aan het transport van kaliumionen naar de endolymfe met behulp van verschillende kanalen, waaronder KCNE1 / KCNQ1, SLC12A2 en Na + –K + -ATPase (NKA) 5,10,13,14. Tussenliggende cellen zijn gepigmenteerde cellen die zich tussen marginale en basale cellen bevinden en kaliumtransport door de SV vergemakkelijken met behulp van KCNJ10 (Kir 4.1)15,16. Basale cellen liggen in de nabijheid van de laterale wand van het slakkenhuis en zijn nauw verbonden met fibrocyten van het spiraalligament om kaliumrecycling van de perilymfe12 te bevorderen. Pathologie van de SV is betrokken bij tal van otologische aandoeningen17,18. Mutaties in genen die tot expressie komen in de belangrijkste SV-celtypen, zoals Kcnq1, Kcne1, Kcnj10 en Cldn11, kunnen doofheid en SV-disfunctie veroorzaken, waaronder het verlies van EP 19,20,21,22,23. Naast de drie belangrijkste celtypen zijn er andere minder bestudeerde celtypen in de SV, zoals spindelcellen 22, wortelcellen12,24, macrofagen 25, pericyten 26 en endotheelcellen 27, die onvolledig gedefinieerde rollen hebben met ionische homeostase en het genereren van EP 28.

In vergelijking met bulk RNA-sequencing biedt single-nuclei RNA-sequencing (sNuc-Seq) informatie over celheterogeniteit, in plaats van een gemiddelde van mRNA over een groep cellen29, en kan bijzonder nuttig zijn bij het bestuderen van de heterogene SV30. SNuc-Seq heeft bijvoorbeeld transcriptionele analyse geproduceerd die suggereert dat er een rol kan zijn voor spindel- en wortelcellen bij het genereren van EP’s, gehoorverlies en de ziekte van Ménière18. Verdere transcriptionele karakterisering van de verschillende SV-celtypen kan ons waardevolle informatie verschaffen over de pathofysiologie die ten grondslag ligt aan verschillende mechanismen en subtypen van SV-gerelateerde gehoorfluctuatie en gehoorverlies. De oogst van deze delicate binnenoorstructuren is van het grootste belang voor een optimale weefselanalyse.

In deze studie wordt de microdissectiebenadering beschreven om toegang te krijgen tot en de stria vascularis te isoleren van het volwassen muizenslakkenhuis voor sNuc-Seq of immunostaining. Dissectie van de volwassen muis SV is nodig om verschillende SV-celtypen te begrijpen en hun rol in het gehoor verder te karakteriseren.

Protocol

Alle dierproeven en procedures werden uitgevoerd volgens protocollen die zijn goedgekeurd door het Animal Care and Use Committee van het National Institute of Neurological Diseases and Stroke en het National Institute on Deafness and Other Communication Disorders, National Institutes of Health. Alle experimentele protocollen werden goedgekeurd door het Animal Care and Use Committee van het National Institute of Neurological Diseases and Stroke en het National Institute on Deafness and Other Communication Disorders, Natio…

Representative Results

We presenteren een methode om de SV te isoleren voor gebruik voor sNuc-Seq of immunostaining. De relevante anatomie (figuur 1) van het slakkenhuis ten opzichte van de SV kan gebruikers helpen de organisatie van de SV en de stappen van het dissectieprotocol beter te begrijpen. Elke stap van deze microdissectie van SV van een P30-muis wordt gedetailleerd beschreven in de bijbehorende video en snapshots van de belangrijkste stappen van deze dissectie en isolatie van …

Discussion

Vóór de komst van single-cell sequencing gebruikten veel onderzoekers bulkweefselanalyse, die het alleen mogelijk maakte om transcriptomen gemiddeld over cellen te analyseren. In het bijzonder maakten single-cell en sNuc-Seq het mogelijk om het transcriptoom van een enkele cel of enkele kern te isoleren, respectievelijk32. In dit geval kunnen transcriptomen met één kern worden geïdentificeerd voor marginale, intermediaire en basale cellen, evenals spindelcellen30. Dit …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit onderzoek werd mede ondersteund door het Intramuraal Onderzoeksprogramma van de NIH, NIDCD tot M.H. (DC000088)

Materials

10-µm filter (Polyethylenterephthalat) PluriSelect #43-50010-01 Filter tissue during sNuc-Seq
18 x 18 mm cover glass Fisher Scientific 12-541A Cover slip to mount SV
30-µm filter (Polyethylenterephthalat) PluriSelect #43-50030-03 Filter tissue during sNuc-Seq
75 x 25 mm Superfrost Plus/Colorforst Plus Microslide Daigger EF15978Z Microslide to mount SV on
C57BL/6J Mice The Jackson Laboratory RRID: IMSR_JAX:000664 General purpose mouse strain that has pigment more easily seen in the intermediate cells of the SV.
Cell Counter Logos Biosystems L20001 Used for cell counting
Chalizon curette 5'', size 3 2.5 mm Biomedical Research Instruments 15-1020 Used to transfer SV
Chromium Next GEM single Cell 3' GEM Kit v3.1 Chromium PN-1000141 Generates single cell 3' gene expression libraries
Clear nail polish Fisher Scientific NC1849418 Used for sealing SV mount
Corning Falcon Standard Tissue Culture Dishes, 24 well Corning 08-772B Culture dish used to hold specimen during dissection
DAPI Invitrogen D1306, RRID: AB_2629482 Stain used for nucleus labeling
Dounce homogenizer Sigma-Aldrich D8938 Used to homogenize tissue for sNuc-seq
Dumont #5 Forceps Fine Science Tools 11252-30 General forceps for dissection
Dumont #55 Forceps Fine Science Tools 11255-20 Forceps with fine tip that makes SV manipulation easier
Fetal Bovine Serum ThermoFisher 16000044 Used for steps of sNuc-Seq
Glue stick Fisher Scientific NC0691392 Used for mounting SV
GS-IB4 Antibody Molecular Probes I21411, RRID: AB-2314662 Antibody used for capillary labeling
KCNJ10-ZsGreen Mice n/a n/a Transgenic mouse that expresses KCNJ10-ZsGreen, partiularly in the intermediate cells of the SV.
MgCl2 ThermoFisher AM9530G Used for steps of sNuc-Seq
Mounting reagent ThermoFisher #S36940 Mounting reagent for SV
Multiwell 24 well plate Corning #353047 Plate used for immunostaining
NaCl ThermoFisher AAJ216183 Used for steps of sNuc-Seq
Nonidet P40 Sigma-Aldrich 9-16-45-9 Used for steps of sNuc-Seq
Nuclease free water ThermoFisher 4387936 Used for steps of sNuc-Seq
Orbital shaker Silent Shake SYC-2102A Used for steps of immunostaining
PBS ThermoFisher J61196.AP Used for steps of immunostaining and dissection
RNA Later Invitrogen AM7021 Used for preservation of SV for sNuc-Seq
Scizzors Fine Science Tools 14058-09 Used for splitting mouse skull
Tris-HCl Sigma-Aldrich 15506017 Used for steps of sNuc-Seq
Trypan blue stain Gibco 15250061 Used for cell counting
Tween20 ThermoFisher AAJ20605AP  Used for steps of sNuc-Seq
Zeiss STEMI SV 11 Apo stereomicroscope Zeiss n/a Microscope used for dissections

References

  1. Bosher, S. K., Warren, R. L. Observations on the electrochemistry of the cochlear endolymph of the rat: a quantitative study of its electrical potential and ionic composition as determined by means of flame spectrophotometry. Proceedings of the Royal Society of London. Series B. Biological Sciences. 171 (1023), 227-247 (1968).
  2. Patuzzi, R. Ion flow in stria vascularis and the production and regulation of cochlear endolymph and the endolymphatic potential. Hearing Research. 277 (1-2), 4-19 (2011).
  3. Wangemann, P. K+ cycling and the endocochlear potential. Hearing Research. 165 (1-2), 1-9 (2002).
  4. Adachi, N., et al. The mechanism underlying maintenance of the endocochlear potential by the K+ transport system in fibrocytes of the inner ear. The Journal of Physiology. 591 (18), 4459-4472 (2013).
  5. Hibino, H., Nin, F., Tsuzuki, C., Kurachi, Y. How is the highly positive endocochlear potential formed? The specific architecture of the stria vascularis and the roles of the ion-transport apparatus. Pflugers Archiv. 459 (4), 521-533 (2010).
  6. Lang, F., Vallon, V., Knipper, M., Wangemann, P. Functional significance of channels and transporters expressed in the inner ear and kidney. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 293 (4), C1187-C1208 (2007).
  7. Liu, W., Schrott-Fischer, A., Glueckert, R., Benav, H., Rask-Andersen, H. The human "cochlear battery"-claudin-11 barrier and ion transport proteins in the lateral wall of the cochlea. Frontiers in Molecular Neuroscience. 10, 239 (2017).
  8. Marcus, D. C., Wu, T., Wangemann, P., Kofuji, P. KCNJ10 (Kir4.1) potassium channel knockout abolishes endocochlear potential. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 282 (2), C403-C407 (2002).
  9. Spicer, S. S., Schulte, B. A. Differentiation of inner ear fibrocytes according to their ion transport related activity. Hearing Research. 56 (1-2), 53-64 (1991).
  10. Wangemann, P., Liu, J., Marcus, D. C. Ion transport mechanisms responsible for K+ secretion and the transepithelial voltage across marginal cells of stria vascularis in vitro. Hearing Research. 84 (1-2), 19-29 (1995).
  11. Yoshida, T., et al. The unique ion permeability profile of cochlear fibrocytes and its contribution to establishing their positive resting membrane potential. Pflugers Archiv. 468 (9), 1609-1619 (2016).
  12. Johns, J. D., Adadey, S. M., Hoa, M. The role of the stria vascularis in neglected otologic disease. Hearing Research. 428, 108682 (2023).
  13. Kim, J., Ricci, A. J. In vivo real-time imaging reveals megalin as the aminoglycoside gentamicin transporter into cochlea whose inhibition is otoprotective. Proceedings of the National Academy of Sciences. 119 (9), e2117846119 (2022).
  14. Zdebik, A. A., Wangemann, P., Jentsch, T. J. Potassium ion movement in the inner ear: insights from genetic disease and mouse models. Physiology. 24, 307-316 (2009).
  15. Chen, J., Zhao, H. B. The role of an inwardly rectifying K+ channel (Kir4.1) in the inner ear and hearing loss. Neurosciences. 265, 137-146 (2014).
  16. Steel, K. P., Barkway, C. Another role for melanocytes: their importance for normal stria vascularis development in the mammalian inner ear. Development. 107 (3), 453-463 (1989).
  17. Ito, T., Nishio, A., Wangemann, P., Griffith, A. J. Progressive irreversible hearing loss is caused by stria vascularis degeneration in an Slc26a4-insufficient mouse model of large vestibular aqueduct syndrome. Neurosciences. 310, 188-197 (2015).
  18. Gu, S., et al. Characterization of rare spindle and root cell transcriptional profiles in the stria vascularis of the adult mouse cochlea. Scientific Reports. 10 (1), 18100 (2020).
  19. Gow, A., et al. Deafness in claudin 11-null mice reveals the critical contribution of basal cell tight junctions to stria vascularis function. The Journal of Neuroscience. 24 (32), 7051-7062 (2004).
  20. Chang, Q., et al. Virally mediated Kcnq1 gene replacement therapy in the immature scala media restores hearing in a mouse model of human Jervell and Lange-Nielsen deafness syndrome. EMBO Molecular Medicine. 7 (8), 1077-1086 (2015).
  21. Faridi, R., et al. Mutational and phenotypic spectra of KCNE1 deficiency in Jervell and Lange-Nielsen Syndrome and Romano-Ward Syndrome. Human Mutation. 40 (2), 162-176 (2019).
  22. Wangemann, P., et al. Loss of KCNJ10 protein expression abolishes endocochlear potential and causes deafness in Pendred syndrome mouse model. BMC Medicine. 2, 30 (2004).
  23. Kitajiri, S. -. I., et al. Expression patterns of claudins, tight junction adhesion molecules, in the inner ear. Hearing Research. 187 (1-2), 25-34 (2004).
  24. Jagger, D. J., Nevill, G., Forge, A. The membrane properties of cochlear root cells are consistent with roles in potassium recirculation and spatial buffering. Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 11 (3), 435-448 (2010).
  25. Ito, T., Kurata, N., Fukunaga, Y. Tissue-resident macrophages in the stria vascularis. Frontiers in Neurology. 13, 818395 (2022).
  26. Zhang, J., et al. VEGFA165 gene therapy ameliorates blood-labyrinth barrier breakdown and hearing loss. JCI Insight. 6 (8), e143285 (2021).
  27. Shi, X. Pathophysiology of the cochlear intrastrial fluid-blood barrier (review). Hearing Research. 338, 52-63 (2016).
  28. Gu, S., et al. Identification of potential Meniere’s disease targets in the adult stria vascularis. Frontiers in Neurology. 12, 630561 (2021).
  29. Fischer, J., Ayers, T. Single nucleus RNA-sequencing: how it’s done, applications and limitations. Emerging Topics in Life Sciences. 5 (5), 687-690 (2021).
  30. Korrapati, S., et al. Single cell and single nucleus RNA-Seq reveal cellular heterogeneity and homeostatic regulatory networks in adult mouse stria vascularis. Frontiers in Molecular Neuroscience. 12, 316 (2019).
  31. Pyle, M. P., Hoa, M. Applications of single-cell sequencing for the field of otolaryngology: A contemporary review. Laryngoscope Investigative Otolaryngology. 5 (3), 404-431 (2020).
  32. Hwang, B., Lee, J. H., Bang, D. Single-cell RNA sequencing technologies and bioinformatics pipelines. Experimental & Molecular Medicine. 50 (8), 1-14 (2018).
  33. Shafer, M. E. R. Cross-species analysis of single-cell transcriptomic data. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 7, 175 (2019).
  34. Chen, G., Ning, B., Shi, T. Single-cell RNA-Seq technologies and related computational data analysis. Frontiers in Genetics. 10, 317 (2019).
  35. Longo, S. K., Guo, M. G., Ji, A. L., Khavari, P. A. Integrating single-cell and spatial transcriptomics to elucidate intercellular tissue dynamics. Nature Reviews Genetics. 22 (10), 627-644 (2021).
  36. Kim, N., Kang, H., Jo, A., Yoo, S. A., Lee, H. O. Perspectives on single-nucleus RNA sequencing in different cell types and tissues. Journal of Pathology and Translational Medicine. 57 (1), 52-59 (2023).
  37. Grindberg, R. V., et al. RNA-sequencing from single nuclei. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (49), 19802-19807 (2013).
  38. Montgomery, S. C., Cox, B. C. Whole mount dissection and immunofluorescence of the adult mouse cochlea. Journal of Visuazlied Experiments. (107), e53561 (2016).

Play Video

Citer Cet Article
Strepay, D., Olszewski, R., Taukulis, I., Johns, J. D., Gu, S., Hoa, M. Dissection of Adult Mouse Stria Vascularis for Single-Nucleus Sequencing or Immunostaining. J. Vis. Exp. (194), e65254, doi:10.3791/65254 (2023).

View Video