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Article de méthode

Enrichissement de la bibliothèque d’ARNm et de bisulfite-ARNm pour le séquençage de nouvelle génération

1.9K vues

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DOI :

10.3791/65352

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7 juillet 2023

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Dans cet article

Résumé

Ce protocole fournit un flux de travail facile à suivre pour effectuer la purification de l’ARN poly(A), la conversion du bisulfite et la préparation de la bibliothèque à l’aide d’un équipement normalisé pour un échantillon biologique d’intérêt.

Résumé

Les modifications post-transcriptionnelles de l’ARN dans divers types de transcrits d’ARN sont associées à une régulation diversifiée de l’ARN dans les cellules eucaryotes. Il a été démontré que les modifications aberrantes de l’ARN 5-méthylcytosine et l’expression dérégulée des ARN méthyltransférases sont associées à diverses maladies, y compris les cancers. Le séquençage au bisulfite à l’échelle du transcriptome a été développé pour caractériser les positions et les niveaux quantitatifs de méthylation de la cytosine dans l’ARN converti au bisulfite à la résolution de la paire de bases. Dans ce document, ce protocole présente en détail les procédures de deux cycles de purification de l’ARN poly(A), de trois cycles de réaction au bisulfite et de la préparation de la bibliothèque pour permettre la cartographie à l’échelle du transcriptome des sites de modification de l’ARNm 5-méthylcytosine. L’évaluation de la quantité et de la qualité de l’ARN après la réaction principale est essentielle pour surveiller l’intégrité de l’ARN et constitue une étape critique pour garantir des banques de séquençage de haute qualité. Idéalement, les procédures peuvent être terminées en trois jours. Avec ce protocole, l’utilisation d’ARN total de haute qualité comme entrée peut pratiquement constituer des banques robustes d’ARNm bisulfite pour le séquençage de nouvelle génération à partir de l’échantillon d’intérêt.

Introduction

Parmi plus de 150 types de modifications post-transcriptionnelles1, la modification de la 5-méthylcytosine (m5C) a été identifiée dans divers types d’ARN, y compris l’ARN ribosomique, l’ARN de transfert, l’ARN messager, le micro-ARN, l’ARN long non codant, l’ARN voûté, l’ARN enhancer et les ARN spécifiques du corps du petit cajal2. L’ARN m 5 C est associé à divers mécanismes biologiques et pathologiques tels que la régulation du développement racinaire des plantes 3, l’expressiondes gènes viraux4 et la progression du cancer5. L’....

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Protocole

1. Purification de l’ARN poly(A)

REMARQUE : Utiliser l’ARN total traité avec la DNase I et examiner la qualité et l’intégrité de l’ARN total par électrophorèse capillaire ou conventionnelle sur gel avant de procéder à la purification de l’ARN poly(A). Les chercheurs devraient être en mesure d’identifier les bandes ribosomiques d’ARNr 28S et 18S dans le champ de poids moléculaire élevé et la bande d’ARNr 5,8S dans le champ de faible poids moléculaire sans bandes de frottis significatives dans l’électrophérogramme. Les étapes de purification suivent essentiellement les instructions du fabricant avec des modifications mineures i....

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Résultats

Une série de banques de séquençage de l’ARNb à partir de lignéescellulaires 19 a été générée en suivant les procédures décrites dans ce rapport (Figure 1). Après une purification totale de l’ARN accompagnée d’un traitement à la DNase effectué sur des échantillons de lignées cellulaires et la vérification de la qualité par électrophorèse sur gel et spectrophotométrie UV-Vis (A260/A280), l’échantillon d’ARN peut procéder à l’enrichissement en ARN poly(A.......

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Discussion

Dans ce protocole, un pipeline détaillé d’enrichissement en poly(A), de conversion de bisulfite et de préparation de la bibliothèque a été réalisé en utilisant des composants standardisés. D’autres analyses de séquençage ont permis d’identifier l’ARNm 5-méthylcytosine dans des échantillons d’intérêt.

L’étape critique est la qualité du matériau de départ - l’ARN total - car la dégradation de l’ARN aurait un impact sur le taux de récupération de la purification de l’ARN poly(A). L’échantillon do.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par le Conseil national de la science et de la technologie de Taïwan. [NSTC 111-2314-B-006-003]

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Agilent 2100 Système de bioanalyseur d’électrophorèseAgilent, Santa Clara, CADétection de la qualité de l’ARN
AMpure XP billesBeckman CoulterA63881purifier l’ADN
Bioanalyseur d’ADN kit haute sensibilitéAgilent, Santa Clara, CA5067-4626Détection de la qualité de l’ADN
Bioanalyseur ARN 6000 Kit PicoAgilent, Santa Clara, CA5067-1513ARN détection de la qualité
DiaMag02 - rack magnétiqueDiagenode, Denville, NJB04000001aider à la préparation de la bibliothèque
DiaMag1.5 - rack magnétiqueDiagenode, Denville, NJB04000003assist poly(A) RNA purificaion
Dynabeads mRNA DIRECT kit de purificationThermo Fisher Scientific, Waltham, MA61011poly(A) RNA purificaion ; Tampon de lavage 1 et tampon de lavage 2
ÉthanolJ.T.Baker64-17-5
Kit de méthylation de l’ARN EZZymo, Irvine, CAR5002traitement au bisulfite
Luciférase Firefly ARNmPromega, Madison, WI, États-UnisL4561pic de contrôle seqeunce  ;
KAPA Library Quantification KitsRoche, SwitzerlandKK4824Quantification de la bibliothèque
Spectrophotomètre NanodropThermo Fisher Scientific, Waltham, MADétection de la quantité totale d’ARN
NEBNext multiplex Oligos pour illumina (index Primer set1)New England Biolabs, Ipswich, MAE7335Spréparation de la bibliothèque
NEBNext Ultra figure-materials-1 Kit de préparation de banque d’ARN directionnel pour IlluminaNew England Biolabs, Ipswich, MAE7760SPréparation
de bibliothèque sans nucléase ThermoFisher ScientificAM9932
P2 pipetmanThermo Fisher Scientific, Waltham, MA4641010
fluorimètre Qubit 2.0Thermo Fisher Scientific, Waltham, MADétection de la quantité d’ARN
Qubit dsDNA HS Kit de dosageThermo Fisher Scientific, Waltham, MAQ32854Détection de la quantité d’ADN
Qubit RNA HS Kit de dosageThermo Fisher Scientific, Waltham, MAQ32852Détection de la quantité d’ARN

Références

  1. Boccaletto, P., et al. MODOMICS: a database of RNA modification pathways. 2021 update. Nucleic Acids Research. 50, D231-D235 (2022).
  2. Bohnsack, K. E., Höbartner, C., Bohnsack, M. T. Eukaryotic 5-methylcytosine (m5C) RNA Me....

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Réimpressions et autorisations

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