Method Article

Mesure de la consommation d’O2 chez Drosophila melanogaster à l’aide de la microrespirométrie coulométrique

DOI:

10.3791/65379

July 7th, 2023

In This Article

Summary

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La respirométrie coulométrique est idéale pour mesurer le taux métabolique des petits organismes. Lorsqu’elle a été adaptée pour Drosophila melanogaster dans la présente étude, la consommation d’O2 mesurée se situait dans la fourchette rapportée pour le type sauvage D. melanogaster par des études antérieures. La consommation d’O2 par mouche par les mutants CAS, qui sont plus petits et moins actifs, était significativement inférieure à celle du type sauvage.

Abstract

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La microrespirométrie coulométrique est une méthode simple et peu coûteuse pour mesurer la consommation d’O2 de petits organismes tout en maintenant un environnement stable. Un microrespiromètre coulométrique est constitué d’une chambre hermétique dans laquelle l’O 2 est consommé et le CO2 produit par l’organisme est éliminé par un milieu absorbant. La diminution de pression qui en résulte déclenche la production électrolytique d’O2, et la quantité d’O2 produite est mesurée en enregistrant la quantité de charge utilisée pour la générer. Dans la présente étude, la méthode a été adaptée à Drosophila melanogaster testée en petits groupes, avec la sensibilité de l’appareil et les conditions environnementales optimisées pour une grande stabilité. La quantitéd’O2 consommée par les mouches sauvages dans cet appareil est cohérente avec celle mesurée par des études antérieures. La consommation d’O2 spécifique à la masse par les mutants CASK qui sont plus petits et connus pour être moins actifs, n’était pas différente de celle des témoins congéniques. Cependant, la petite taille des mutants CASK a entraîné une réduction significative de la consommation d’O2 par mouche. Par conséquent, le microrespiromètre est capable de mesurer la consommation d’O2 chez D. melanogaster, de distinguer des différences modestes entre les génotypes et d’ajouter un outil polyvalent pour mesurer les taux métaboliques.

Introduction

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La capacité de mesurer le taux métabolique est cruciale pour une compréhension complète d’un organisme dans son contexte environnemental. Par exemple, il est nécessaire de mesurer le taux métabolique afin de comprendre son rôle dans la durée de vie1, le rôle de l’alimentation dans le métabolisme2, ou encore le seuil du stress hypoxique3.

Il existe deux approches générales pour mesurer le taux métabolique4. La calorimétrie directe mesure directement la dépense énergétique en mesurant la production de chaleur. La calorimétrie indirecte mesure la pr....

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Protocol

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1. Élevage et collecte de mouches

  1. Maintenir les mouches à 25 °C dans des flacons étroits contenant de la nourriture standard pour drosophiles .
    NOTA : La taille de l’échantillon pour chaque génotype doit comprendre au moins neuf répétitions, chacune consistant en une seule chambre respirométrique contenant 15 à 25 mouches, configurée comme décrit ci-dessous.
  2. Transférez les mouches tous les 2-3 jours.
  3. Anesthésier les mouches avec du CO2, prélever des groupes de 15 à 25 mâles de chaque génotype et placer chaque groupe dans des flacons d’aliments frais et sans levure.
    NOTE : Les mâles ont été utilis....

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Results

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Les sorties de pression et de courant du contrôleur du respiromètre sont illustrées pour une chambre dans une expérience à la figure 3A. La première impulsion de courant long a pressurisé la chambre de la pression ambiante (environ 992 hPa) au seuil d’arrêt prédéfini de 1017 hPa. Au fur et à mesure que les mouches consommaient de l’O 2 et que le CO2 était absorbé, la pression diminuait lentement jusqu’à ce qu’elle atteigne le seuil ON de 1016 hPa, ce qui activait le cou.......

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Discussion

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La procédure ci-dessus illustre la mesure de la consommation d’O2 chez D. Melanogaster à l’aide d’un microrespiromètre coulométrique électronique. Les données obtenues pour la consommationd’O2 chez le D. melanogaster de type sauvage se situaient dans les fourchettes décrites dans la plupart des publications antérieures utilisant diverses méthodes (tableau 1), bien qu’un peu inférieures à celles rapportéespar d’autres 3,6

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Disclosures

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Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts.

Acknowledgements

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Nous remercions le Dr Linda Restifo de l’Université de l’Arizona d’avoir suggéré de tester la consommation d’O2 des mutants CASK et d’avoir envoyé des mutants CASK et leurs contrôles congéniques. Les frais de publication ont été fournis par le Fonds de réinvestissement départemental du département de biologie de l’Université de College Park. L’espace et certains équipements ont été fournis par les universités de Shady Grove.

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
19/22 Adaptateur de thermomètreWilmad-LabglassML-280-702Connecteur de capteur
2 ml Tubes à bouchon à visFisher3464O2
Connecteur 2 brochesZyamy40PIN-RFB10O2 générateur : coupé à 2 broches
4 broches Connecteur femelleTE Connectivity215299-4Fiche de capteur
5 ml Tube en polypropylèneFalcon352063Coupé à 5,5 cm et perforé
50 ml Schlenk Tube 19/22 JointLaboyChambre HMF050804
Câble 6 conducteursZenith6 conducteurs 26 gaCâble
6 broches femellede cloison Switchcraft17982-6SG-300Contrôleur
6 broches Connecteur femelleSwitchcraft18982-6SG-522
Connecteur capteur 6 brochesSwitchcraft16982-6PG-522Câble
800 ul tube centrifugeFisher05-408-120Cartouche de chaux sodocalcique
ABS Boîtier en plastique BudIndustriesPS-11533-GContrôleur
Arduino Nano Chaquecontrôleur ABX00028 Arduino LLCBME
280 CapteurDIYMallFZ1639-BME280Capteur Fiche
Carte de circuit impriméLheng5 X 7 cmContrôleur
Sulfate de CuivreBioPharmBC2045O2
Générateur OrdinateurAzulleByte4Acquisition de données
Rouleaux de cotonKajukajudo#2Coupé en deux pour boucher les tubes anti-mouches
Coupé en quartiers pour l’humidité
Chambre environnementalePercivalI30 VLC8Soin des mouches
EpoxyJB WeldPlastic Bonder Sécuriseles électrodes dans O2 Générateur
Fly FoodLab ExpressType RFly Care
Keck Clampsuxcella20092300ux0418Sécurise le joint en verre de la chambre pour boucher
LoctiteE-30CLfaible viscositéFiche
OLED Affichage OLEDIZOKEEIZKE31-IIC-WH-3Contrôleur
Platinum Wire 24 gauGems14349O2
générateur Graisse siliconeDow-CorningGraisse sous vide pousséJoints d’étanchéité de la chambre Connexion à prise
Soda LimeJorvetJO553CO2
absorption Interrupteur à basculeE-Switch100SP1T1B1M1QEH
Contrôleur Câble USB SabrentCB-UM63Contrôleur
Hub USBAtollaHub 3.0Connecter les contrôleurs à l’ordinateur
Bain d’eauAmersham56-1165-33Contrôle de la température
Réservoir de bain-marie Cagesen verreacrylique sans rebord de 15 litres pour respiromètres
connecteur mâle Epoxy Capteur à Bain

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Arking, R., Buck, S., Wells, R. A., Pretzlaff, R. Metabolic rates in genetically based long lived strains of Drosophila. Experimental Gerontology. 23 (1), 59-76 (1988).
  2. Henry, Y., Overgaard, J., Colinet, H.

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Coulometric MicrorespirometryOxygen ConsumptionDrosophila MelanogasterMetabolic RateRespirometer ChamberMass Specific ConsumptionTemperature ControlSoda Lime AbsorbentOxygen GeneratorInsect Metabolism

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