Summary

Lifespan Machine'i kullanarak yüksek verimli davranışsal yaşlanma ve ömür testleri

Published: January 26, 2024
doi:

Summary

Görüntüleme platformu “The Lifespan Machine”, büyük popülasyonların yaşam boyu gözlemini otomatikleştirir. Yaşam süresi, stres direnci, patogenez ve davranışsal yaşlanma testlerini gerçekleştirmek için gereken adımları gösteriyoruz. Verilerin kalitesi ve kapsamı, araştırmacıların biyolojik ve çevresel varyasyonların varlığına rağmen yaşlanmaya yönelik müdahaleleri incelemelerine olanak tanır.

Abstract

Sabit bir ortamda tutulan genetik olarak özdeş hayvanlar, incelenen tüm organizmalarda korunan yaşlanmanın genetik olmayan, stokastik büyük bir yönünü yansıtan geniş bir yaşam dağılımı sergiler. Bu stokastik bileşen, yaşlanmayı anlamak ve yaşam süresini uzatan veya sağlığı iyileştiren başarılı müdahaleleri belirlemek için araştırmacıların aynı anda büyük deney hayvanı popülasyonlarını izlemesi gerektiği anlamına gelir. Geleneksel manuel ölüm puanlaması, büyük ölçekli hipotez testi için gereken verimi ve ölçeği sınırlayarak, yüksek verimli yaşam süresi tahlilleri için otomatik yöntemlerin geliştirilmesine yol açar. Lifespan Machine (LSM), nematodların ömür boyu izlenmesi için modifiye edilmiş düz yataklı tarayıcıları özel görüntü işleme ve veri doğrulama yazılımıyla birleştiren yüksek verimli bir görüntüleme platformudur. Platform, büyük hayvan popülasyonlarından daha önce görülmemiş bir ölçekte ve deneyimli araştırmacılar tarafından gerçekleştirilen manuel tahlillere eşit istatistiksel bir hassasiyet ve doğrulukta yüksek oranda zamansal olarak çözülmüş yaşam süresi verileri üreterek büyük bir teknik ilerleme teşkil ediyor. Son zamanlarda, LSM, yaşlanma sırasında gözlenen davranışsal ve morfolojik değişiklikleri ölçmek ve bunları yaşam süresiyle ilişkilendirmek için daha da geliştirilmiştir. Burada, LSM kullanarak otomatik bir yaşam süresi denemesinin nasıl planlanacağını, çalıştırılacağını ve analiz edileceğini açıklıyoruz. Davranışsal verilerin ve yüksek kaliteli hayatta kalma eğrilerinin başarılı bir şekilde toplanması için gereken kritik adımları daha da vurguluyoruz.

Introduction

Yaşlanma, bir organizmanın fizyolojik işlevinde bir azalma ile karakterize edilen karmaşık, çok yönlü bir süreçtir ve bu da zamanla hastalık ve ölüm riskinde bir artışa yol açar1. Doğumdan veya yetişkinliğin başlangıcından ölüme kadar geçen süre olarak ölçülen yaşam süresi, yaşlanmanın kesin bir sonucunu2 ve popülasyonlar arasındaki nispi yaşlanma oranını ölçmek için dolaylı ancak titiz bir şekilde nicel bir vekilsağlar 3. Yaşlanma çalışmaları, bir müdahaleye maruz kalan bir popülasyon ile maruz kalmayan bir kontrol grubu arasındaki sonuçları karşılaştırmak için klinik çalışmalara benzer şekilde genellikle doğru yaşam süresi ölçümlerine bağlıdır. Ne yazık ki, tekrarlanabilirlik sorunları, bazen istatistiksel olarak yetersiz deneyler4 ve çoğu zaman yaşam süresi tahlillerinin ortamdaki ince değişikliklere karşı doğal duyarlılığı nedeniyle yaşlanma araştırmalarınahakimdir 5. Sağlam deneyler, büyük popülasyonların birden çok kopyasını gerektirir ve bu süreç özellikle otomasyon6 tarafından sunulan deneysel ölçeklenebilirlikten yararlanır.

Yaşam boyu tahlillerin titiz talepleri, yaşlanma sürecinin kendisinin öngörülemezliğinden kaynaklanmaktadır. Aynı ortamlarda barındırılan izogenik bireyler, farklı ölüm zamanları ve fizyolojik düşüş oranları7 sergilerler, bu da yaşam süresinin yüksek derecede stokastiklikiçerdiğini düşündürür 7,8. Bu nedenle, ortalama veya maksimum yaşam süresindeki değişiklikler gibi yaşlanma sürecindeki nicel değişiklikleri ölçmek ve bireysel değişkenlikten kaynaklanan önyargıların üstesinden gelmek için büyük popülasyonlar gereklidir. Ek olarak, yüksek verimli yaşam süresi tahlilleri için bir kapasite, hayatta kalma eğrisi şekilleri ve yaşlanma dinamiklerinin modelleri ile ilgili çalışmaları desteklemek için çok önemlidir9.

Nematod Caenorhabditis elegans, kısa ömrü, genetik izlenebilirliği ve hızlı üretim süresi nedeniyle yaşlanma araştırmaları için paha biçilmez bir modeldir ve bu da yüksek verimli yaşlanma ve yaşam süresi deneyleri için uygunluğunun altını çizer. Geleneksel olarak, C’deki ömür. Elegans, zaman içinde yaklaşık 50-100 hayvandan oluşan senkronize, küçük bir popülasyonu katı ortamda takip ederek ve bireysel ölümlerin zamanını yazarak ölçülmüştür. Hayvanlar yaşlandıkça ve hareket kabiliyetini kaybettikçe, ölüm zamanlarını manuel olarak puanlamak, hayvanları ayrı ayrı dürtmeyi ve baş veya kuyruğun küçük hareketlerini kontrol etmeyi gerektirir. Bu genellikle sıkıcı ve zahmetli bir süreçtir, ancak hızlandırmak için çaba sarf edilmiştir 10,11,12. Daha da önemlisi, yavaş deneysel boru hatları, yaşlanma ve test edilen müdahalelerin etkinliği konusundaki anlayışımızdaki ilerlemeyi engellemektedir.

Kantitatif veriler için yaşlanma araştırmalarının taleplerini karşılamak için, mikroakışkan odalardan düz yataklı tarayıcılara kadar dikkate değer bir dizi yaklaşım da dahil olmak üzere veri toplamayı otomatikleştirmek için birçok teknoloji geliştirilmiştir 13,14,15,16,17,18. LSM, kullanıcıların otomatik analizleri doğrulamasına, düzeltmesine ve iyileştirmesine olanak tanıyan kapsamlı bir yazılım paketi ile birlikte dikkatli ekipman kalibrasyon protokollerinin geliştirilmesiyle elde edilen son derece hassas ve doğru kullanım ömrü verilerinin toplanması için kapsamlı optimizasyonuyla diğer yöntemlerden farklıdır13. Yazılım, prensip olarak, çeşitli görüntüleme yöntemlerine uygulanabilse de, pratikte çoğu kullanıcı, kullanım ömrü üzerindeki büyük etkileri nedeniyle kritik öneme sahip faktörler olan ortam sıcaklığı ve nemi üzerinde ince ayarlı kontrole izin verecek şekilde modifiye edilmiş düz yataklı tarayıcılar kullanır19. LSM, çevresel koşullara ve genotipe bağlı olarak günlerden aylara kadar değişen aralıklarla her 20 dakikada bir nematodların görüntülerini alır. Üretilen veriler, manuel tahlillerden elde edilen verilere kıyasla çok daha yüksek zamansal çözünürlüğe sahiptir ve toplanan görüntüler, kullanım ömrü boyunca nematod konumunun kalıcı bir görsel kaydını sağlar. Makine öğrenimi yöntemleri kullanılarak, ölüm süreleri her bireye otomatik olarak atanır. Bu sonuçlar, “Worm Browser” adı verilen bir istemci yazılımı kullanılarak hızlı ve manuel olarak doğrulanabilir. Donanım ve yazılımının bir sonucu olarak, LSM, azaltılmış iş yükü ve daha yüksek ölçeklenebilirlik avantajı ile deneyimli araştırmacıların elindeki manuel ölüm puanlamasından istatistiksel olarak ayırt edilemeyen hayatta kalma eğrileri üretebilir13.

LSM’nin en son sürümü, nematodun yaşamı boyunca morfolojik ve davranışsal verileri toplayarak ve her bireyin ömrü ile birlikte raporlayarak davranışsal yaşlanmanın incelenmesine de olanak tanır. Özellikle, LSM, her bir hayvanın güçlü hareket bırakma zamanını (VMC) yakalar, bu genellikle bir bireyin yaşam süresinden farklı olarak “sağlık süresini” ölçmek için kullanılan bir dönüm noktasıdır. LSM, yaşam süresi ve davranışsal yaşlanma verilerini aynı anda toplayarak, yaşlanmanın farklı fenotipik sonuçları üzerinde farklı etkileri olabilecek müdahalelerin incelenmesini destekler20. Vücut hareketi veya faringeal pompalama21, doku bütünlüğü22 ve hareket hızı veya uyaran kaynaklı dönme17 gibi davranışsal yaşlanmayı incelemek için çeşitli makroskopik olarak gözlemlenebilir fenotipler kullanılabilir. Farklı yaşlanma fenotipleri arasındaki karşılaştırmalar, yaşlanma süreçlerinin nedensel yapısının analizlerini destekleyebilir. Örneğin, VMC ve yaşam süresi arasındaki karşılaştırma son zamanlarda C. elegans23’te iki farklı yaşlanma sürecini karakterize etmek için kullanılmıştır.

Başlangıçta C. elegans’ın ömrünü ölçmek için geliştirilmiş olsa da, LSM, C de dahil olmak üzere bir dizi nematod türünden hayatta kalma ve davranışsal verilerin toplanmasını destekler. briggsae, C. tropikal, C. japonica, C. brenneri ve P. Pasifik23. Teknoloji, biyolojik ve çevresel müdahalelerin yaşam süresi, stres direnci ve patojen direnci üzerindeki etkisinin incelenmesini kolaylaştırır ve RNA girişiminin hedefli tahlilleri veya oksin ile indüklenebilir protein bozunma sistemleri gibi deneysel araçlarla birleştirilebilir. Bugüne kadar bilimsel literatürde çok çeşitli uygulamalar için kullanılmıştır 6,24,25,26,27,28,29,30.

Burada, deney düzeneğinin ilk aşamalarından elde edilen hayatta kalma eğrilerinin çıktısına kadar, agar plakaları kullanarak bir Yaşam Süresi Makinesi deneyi gerçekleştirmek için adım adım bir protokolün ana hatlarını çiziyoruz. LSM’nin ayırt edici bir özelliği, çabanın yüksek oranda önden yüklemeli olmasıdır, yani araştırmacının zamanının çoğu deney kurulumu sırasında ve küçük bir dereceye kadar görüntü sonrası elde etme sırasında harcanır. Veri toplama, deneyin tüm süresi boyunca tamamen otomatiktir ve araştırmacının “eller serbest” bir deneyim yaşamasını sağlar. Burada açıklanan adımlar, birçok farklı sağkalım testi türü arasında ortak tutulur – aynı deney düzeneği yaşam süresi, termotolerans, oksidatif stres ve patogenez testleri için gerçekleştirilir. Temsili sonuçlar bölümünde, analiz hattının etkinliğini göstermek ve görüntü analizi sırasındaki en önemli adımları vurgulamak için yakın zamanda yayınlanan bir makaleden elde edilen verilerin bir alt kümesini tartışıyoruz23.

Protocol

1. Yazılım ve donanım gereksinimleri Düz yataklı tarayıcılar: Prensip olarak, LSM çeşitli görüntüleme cihazları kullanılarak uygulanabilir. Tarayıcı değişiklikleri ve odaklama için ayrıntılı talimatlar başka bir yerde mevcuttur13. LSM donanımı Ek Şekil 1’de gösterilmiştir. Veri analizi araçları: LSM yazılımının birbiriyle etkileşim halinde olan üç bileşeni vardır: Linux tabanlı bir tarayıcı kontrol yaz?…

Representative Results

Yaşam süresi deneylerinde deneysel tekrarlanabilirlik zordur ve yeterli istatistiksel çözünürlük elde etmek için hem sıkı bir şekilde kontrol edilen deneysel koşulları hem de büyük popülasyonları gerektirir 4,36. LSM, yüksek zamansal çözünürlüğe sahip sabit bir ortamda büyük hayvan popülasyonlarını araştırmak için benzersiz bir şekilde uygundur. LSM’nin kapasitesini göstermek, analizin önemli adımlarını vurgulamak ve araştı…

Discussion

Burada, Lifespan Machine’in en son sürümünü kullanarak bir deney yapmak için ayrıntılı, erişilebilir bir protokol sunuyoruz. İyi çözülmüş hayatta kalma eğrileri elde etmek için kritik adımın, görüntü sonrası elde etme sırasında solucan olmayan nesnelerin manuel olarak dışlanması olduğunu gösterdik. Manuel ölüm zamanı açıklaması, hayatta kalma eğrilerinin genel şekli üzerinde küçük bir etkiye sahiptir ve tam otomatik ölüm zamanı tahmininin manuel açıklama olmadan bile verimli…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Julian Ceron ve Jeremy Vicencio’ya (IDIBELL Barcelona) rpb-2(cer135) alelini ürettikleri için teşekkür ederiz. Bu proje, Avrupa Birliği’nin Horizon 2020 araştırma ve yenilik programı (Hibe Sözleşmesi No. 852201) kapsamında Avrupa Araştırma Konseyi (ERC), İspanya Ekonomi, Sanayi ve Rekabet Edebilirlik Bakanlığı (MEIC) tarafından EMBL ortaklığına, Centro de Excelencia Severo Ochoa (CEX2020-001049-S, MCIN/AEI /10.13039/501100011033), CERCA Programı/Generalitat de Catalunya, MEIC Excelencia ödülü BFU2017-88615-P, ve Glenn Tıbbi Araştırma Vakfı’ndan bir ödül.

Materials

1-Naphtaleneacetic  acid (Auxin) Sigma N0640 Solubilize Auxin in 1M potassium hydroxide and add into molten agar
5-fluoro-2-deoxyuridine (FUDR) Sigma F0503 27.5 μg/mL of FUDR was used to eliminate progeny from populations on UV-inactivated bacteria
Glass cleaner Kristal-M QB-KRISTAL-M125ml
Hydrophobic anti-fog glass treatment Rain-X Scheibenreiniger  C. 059140
Rubber matt Local crafstman Cut on a high-strength EPDM rubber sheet stock
Scanner glass Local hardware supplier 9" x 11.5" inch glass sheet
Scanner plates Life Sciences 351006 50 mm x 9 mm, polystyrene petri dish
USB Reference Thermometer USB Brando ULIFE055500  For calibrating temperature of scanners

References

  1. Harman, D. The aging process: Major risk factor for disease and death. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 88 (12), 5360-5363 (1991).
  2. Vaupel, J. W. Biodemography of human ageing. Nature. 464 (7288), 536-542 (2010).
  3. Mair, W., Goymer, P., Pletcher, S. D., Partridge, L. Demography of dietary restriction and death in Drosophila. Science. 301 (5640), 1731-1733 (2003).
  4. Petrascheck, M., Miller, D. L. Computational analysis of lifespan experiment reproducibility. Frontiers in Genetics. 8, 92 (2017).
  5. Lucanic, M., et al. Impact of genetic background and experimental reproducibility on identifying chemical compounds with robust longevity effects. Nature Communications. 8 (1), 14256 (2017).
  6. Banse, S. A., et al. Automated lifespan determination across Caenorhabditis strains and species reveals assay-specific effects of chemical interventions. Geroscience. 41 (6), 945-960 (2019).
  7. Herndon, L. A., et al. Stochastic and genetic factors influence tissue-specific decline in ageing C. elegans. Nature. 419 (6909), 808-814 (2002).
  8. Kirkwood, T. B., et al. What accounts for the wide variation in life span of genetically identical organisms reared in a constant environment. Mechanisms of Ageing and Development. 126 (3), 439-443 (2005).
  9. Stroustrup, N., et al. The temporal scaling of Caenorhabditis elegans ageing. Nature. 530 (7588), 103-107 (2016).
  10. Hamilton, B., et al. A systematic RNAi screen for longevity genes in C. elegans. Genes & Development. 19 (13), 1544-1555 (2005).
  11. Lee, S. S., et al. A systematic RNAi screen identifies a critical role for mitochondria in C. elegans longevity. Nature Genetics. 33 (1), 40-48 (2003).
  12. Cornwell, A. B., Llop, J. R., Salzman, P., Thakar, J., Samuelson, A. V. The replica set method: A high-throughput approach to quantitatively measure Caenorhabditis elegans lifespan. Journal of Visualized Experiments. (136), e57819 (2018).
  13. Stroustrup, N., et al. The Caenorhabditis elegans lifespan machine. Nature Methods. 10 (7), 665-670 (2013).
  14. Xian, B., et al. WormFarm: A quantitative control and measurement device toward automated Caenorhabditis elegans aging analysis. Aging Cell. 12 (3), 398-409 (2013).
  15. Churgin, M. A., et al. Longitudinal imaging of Caenorhabditis elegans in a microfabricated device reveals variation in behavioral decline during aging. Elife. 6, 26652 (2017).
  16. Hulme, S. E., et al. Lifespan-on-a-chip: Microfluidic chambers for performing lifelong observation of C. elegans. Lab on a Chip. 10 (5), 589-597 (2010).
  17. Kerr, R. A., Roux, A. E., Goudeau, J. F., Kenyon, C. The C. elegans observatory: High-throughput exploration of behavioral aging. Frontiers in Aging. 3, 932696 (2022).
  18. Javer, A., Ripoll-Sánchez, L., Brown, A. E. Powerful and interpretable behavioural features for quantitative phenotyping of Caenorhabditis elegans. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 373 (1758), 20170375 (2018).
  19. Miller, H., et al. Genetic interaction with temperature is an important determinant of nematode longevity. Aging Cell. 16 (6), 1425-1429 (2017).
  20. Bansal, A., Zhu, L. J., Yen, K., Tissenbaum, H. A. Uncoupling lifespan and healthspan in Caenorhabditis elegans longevity mutants. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (3), E277-E286 (2015).
  21. Huang, C., Xiong, C., Kornfeld, K. Measurements of age-related changes of physiological processes that predict lifespan of Caenorhabditis elegans. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (21), 8084-8089 (2004).
  22. Garigan, D., et al. Genetic analysis of tissue aging in Caenorhabditis elegans: A role for heat-shock factor and bacterial proliferation. Génétique. 161 (3), 1101-1112 (2002).
  23. Oswal, N., Martin, O. M., Stroustrup, S., Bruckner, M. A. M., Stroustrup, N. A hierarchical process model links behavioral aging and lifespan in C. elegans. PLoS Computational Biology. 18 (9), 1010415 (2022).
  24. Sen, I., et al. DAF-16/FOXO requires protein phosphatase 4 to initiate transcription of stress resistance and longevity promoting genes. Nature Communications. 11 (1), 138 (2020).
  25. Schiffer, J. A., et al. et al.Caenorhabditis elegans processes sensory information to choose between freeloading and self-defense strategies. Elife. 9, 56186 (2020).
  26. Bazopoulou, D., et al. Developmental ROS individualizes organismal stress resistance and lifespan. Nature. 576 (7786), 301-305 (2019).
  27. Guerrero-Rubio, M. A., Hernández-García, S., García-Carmona, F., Gandía-Herrero, F. Extension of life-span using a RNAi model and in vivo antioxidant effect of Opuntia fruit extracts and pure betalains in Caenorhabditis elegans. Food Chemistry. 274, 840-847 (2019).
  28. Janssens, G. E., et al. Transcriptomics-based screening identifies pharmacological inhibition of Hsp90 as a means to defer aging. Cell Reports. 27 (2), 467-480 (2019).
  29. Kasimatis, K. R., Moerdyk-Schauwecker, M. J., Phillips, P. C. Auxin-mediated sterility induction system for longevity and mating studies in Caenorhabditis elegans. G3: Genes, Genomes, Genetics. 8 (8), 2655-2662 (2018).
  30. Lin, X. -. X., et al. DAF-16/FOXO and HLH-30/TFEB function as combinatorial transcription factors to promote stress resistance and longevity. Nature Communications. 9 (1), 4400 (2018).
  31. Stroustrup, N., et al. The temporal scaling of Caenorhabditis elegans ageing. Nature. 530 (7588), 103-107 (2016).
  32. Byerly, L., Cassada, R., Russell, R. The life cycle of the nematode Caenorhabditis elegans: I. Wild-type growth and reproduction. Biologie du développement. 51 (1), 23-33 (1976).
  33. Perez, M. F., Francesconi, M., Hidalgo-Carcedo, C., Lehner, B. Maternal age generates phenotypic variation in Caenorhabditis elegans. Nature. 552 (7683), 106-109 (2017).
  34. Wilkinson, D. S., Taylor, R. C., Dillin, A. Analysis of aging in Caenorhabditis elegans. Methods in Cell Biology. 107, 353-381 (2012).
  35. Hosono, R. Sterilization and growth inhibition of Caenorhabditis elegans by 5-fluorodeoxyuridine. Experimental Gerontology. 13 (5), 369-373 (1978).
  36. Lithgow, G. J., Driscoll, M., Phillips, P. A long journey to reproducible results. Nature. 548 (7668), 387-388 (2017).
  37. Zhang, L., Ward, J. D., Cheng, Z., Dernburg, A. F. The auxin-inducible degradation (AID) system enables versatile conditional protein depletion in C. elegans. Development. 142 (24), 4374-4384 (2015).
  38. Baeriswyl, S., et al. Modulation of aging profiles in isogenic populations of Caenorhabditis elegans by bacteria causing different extrinsic mortality rates. Biogerontology. 11 (1), 53 (2010).
  39. Banse, S. A., Blue, B. W., Robinson, K. J., Jarrett, C. M., Phillips, P. C. The Stress-Chip: A microfluidic platform for stress analysis in Caenorhabditis elegans. PLoS One. 14 (5), e0216283 (2019).
  40. Banse, S. A., et al. Automated lifespan determination across Caenorhabditis strains and species reveals assay-specific effects of chemical interventions. Geroscience. 41 (6), 945-960 (2019).
  41. Swindell, W. R. Accelerated failure time models provide a useful statistical framework for aging research. Experimental Gerontology. 44 (3), 190-200 (2009).
check_url/fr/65462?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Del Carmen-Fabregat, A., Sedlackova, L., Oswal, N., Stroustrup, N. High-Throughput Behavioral Aging and Lifespan Assays Using the Lifespan Machine. J. Vis. Exp. (203), e65462, doi:10.3791/65462 (2024).

View Video