Summary

Respirometri med høj opløsning til vurdering af mitokondriefunktion i humane spermatozoer

Published: June 23, 2023
doi:

Summary

Analysen af sædmitokondriefunktion ved respirometri med høj opløsning tillader måling af iltforbruget af frit bevægelige spermatozoer i et lukket kammersystem. Teknikken kan anvendes til at måle åndedræt i humane spermatozoer, hvilket giver information om sædmitokondrieegenskaber og integritet.

Abstract

Sædkvalitet studeres ofte ved rutinemæssig sædanalyse, som er beskrivende og ofte ufattelig. Mandlig infertilitet er forbundet med ændret sædmitokondrieaktivitet, så måling af sædmitokondriefunktion er en indikator for sædkvalitet. Respirometri med høj opløsning er en metode til måling af iltforbruget af celler eller væv i et lukket kammersystem. Denne teknik kan implementeres til at måle åndedræt i menneskelig sæd og giver information om sædmitokondriernes kvalitet og integritet. Respirometri med høj opløsning gør det muligt for cellerne at bevæge sig frit, hvilket er en a priori fordel i tilfælde af sædceller. Denne teknik kan anvendes med intakte eller permeabiliserede spermatozoer og muliggør undersøgelse af intakt sædmitokondriefunktion og aktiviteten af individuelle åndedrætskædekomplekser. Det højopløselige oxygrafinstrument bruger sensorer til at måle iltkoncentrationen kombineret med følsom software til at beregne iltforbruget. Dataene bruges til at beregne respiratoriske indekser baseret på iltforbrugsforholdene. Derfor er indekserne proportionerne af to iltforbrugshastigheder og normaliseres internt til celleantallet eller proteinmassen. Respiratoriske indekser er en indikator for sædmitokondriefunktion og dysfunktion.

Introduction

Mandlig infertilitet anslås at tegne sig for 40% -50% af alle tilfælde af infertilitet hos par1. Konventionel sædanalyse spiller en afgørende rolle i bestemmelsen af mandlig fertilitet; Imidlertid har ca. 15% af infertile mænd normale sædparametre2. Derudover giver rutinemæssig sædanalyse begrænset information om sædfunktion og afspejler ikke subtile sæddefekter3.

Spermmitokondrier har en særlig struktur, da de er arrangeret som en spiralformet kappe omkring flagellen. Mitokondrieskeden indeholder et variabelt antal mitokondrier forbundet med intermitokondriebindinger og forankret til cytoskelettet ved ordnede proteinarrangementer på den ydre mitokondriemembran 4,5. Denne struktur gør det særligt vanskeligt at isolere sædmitokondrier. Derfor bruger de fleste undersøgelser af sædmitokondriefunktion in situ-analyser eller afmembranerede sædceller6.

Sperm mitokondrie struktur og funktion har været konsekvent forbundet med mandlig infertilitet 7,8,9,10,11, hvilket tyder på, at analyse af strukturen og funktionen af disse organeller kan være en god kandidat til optagelse i sædanalyse.

Mitokondrier spiller en vigtig rolle i cellulær energimetabolisme, især ved at bruge ilt til at producere adenosintrifosfat (ATP) gennem oxidativ phosphorylering (OXPHOS). Især i spermatozoer er kilden til ATP (glykolyse vs. OXPHOS) omstridt, og mange af dataene forbliver kontroversielle og afhænger af forskellige eksperimentelle tilgange 4,12,13. Målinger af respiration ved oximetri giver betydelig indsigt i mitokondriel åndedrætskapacitet, mitokondriel integritet og energimetabolisme af cellen14,15,16. Traditionelt er denne teknik blevet udført ved hjælp af Clark oxygenelektrode – et instrument, der er blevet brugt til at måle mitokondriel respiration i mere end 50 år17,18. Derudover er sædmitokondriets iltforbrug blevet analyseret ved hjælp af den klassiske Clark iltelektrode 19,20,21. Respirometri med høj opløsning (HRR) ved hjælp af oxygrafer (Oroboros) giver højere følsomhed end ved brug af klassiske respirometriindretninger22. Oxygraferne består af to kamre med injektionsporte, og hvert kammer har en polarografisk iltføler. Med denne teknik er det muligt at analysere vævsdias, celler og isolerede mitokondriesuspensioner. Prøven omrøres kontinuerligt i kammeret, og under eksperimentet måles iltforbruget, og ilthastighederne beregnes ved hjælp af specifik software. Kamrene viser reduceret iltlækage, hvilket er en fordel i forhold til de konventionelle iltelektrodeanordninger14,23.

Som med andre celler, i tilfælde af spermatozoer, er følsomheden af HRR-udstyr højere end for konventionel respirometri, hvilket betyder, at HRR-udstyr kan bruges til analyse af et begrænset antal intakte eller permeabiliserede sædceller. Der er to hovedstrategier til vurdering af sædmitokondriefunktion ved HRR: (a) måling af iltforbruget i intakte celler, hvilket indebærer reproduktion af åndedrætsfunktionen i et medium, der indeholder substrater såsom glukose, eller (b) måling af iltforbruget i permeabiliserede celler ved hjælp af et af OXPHOS-komplekserne med tilsætning af specifikke substrater til overvågning af hver funktion separat.

I denne undersøgelse beskriver vi brugen af HRR til bestemmelse af mitokondriel respiration i humane sædceller.

Protocol

Forsøgene blev godkendt af den etiske komité ved Facultad de Medicina de la Universidad de la República, Montevideo, Uruguay. Figur 1: Workflow for respirometri med høj opløsning til vurdering af mitokondriefunktion i intakt og permeabiliseret human sæd. Protokollen blev opdelt i fire forskellige trin: 1) forberedel…

Representative Results

Bestemmelse af den optimale koncentration af digitonin i sædcellerI denne protokol præsenterer vi brugen af HRR til at overvåge ændringer i realtid i OXPHOS i humane sædceller. Da metoden kan bruges til at analysere intakt eller digitoninpermeabiliseret sæd, præsenterer vi først standardiseringen af digitoninkoncentration, der kræves for at permeabilisere sædceller (figur 3). Digitonin anvendes til kemisk permeabilisering, som gør d…

Discussion

HRR afhænger kritisk af flere trin: (a) vedligeholdelse af udstyr, (b) nøjagtig kalibrering af iltsensorerne, (c) frakoblingstitreringen26 og endelig (d) tilstrækkelig brug af indekser, der repræsenterer mitokondriefunktionen. Vedligeholdelse af udstyr er afgørende. Det anbefales at udskifte membranerne i den polarografiske iltføler regelmæssigt og korrigere den instrumentelle baggrund. Omfattende vask efter indsamling af spermatozoer fra kamrene er afgørende for at opnå gode replikater, …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gerne takke Fertilab Andrology klinikken, især José María Montes og Andrea Torrents, for at give os adgang til donorer. Finansiering: AC støttes af tilskud fra Universidad de la República (CSIC_2018, Espacio Interdisciplinario_2021). Der blev opnået yderligere finansiering fra Programa de Desarrollo de Ciencias Básicas (PEDECIBA, Uruguay). P.I. og R.S. støttes af Universidad de la República (I + D, CSIC 2014; I+D, CSIC 2016, Iniciación a la Investigación, CSIC 2019 og FMV_1_2017_1_136490 ANII-Uruguay). P.I. støttes af POS_FMV_2018_1_1007814 og CAP-UDELAR 2020. Figurerne blev illustreret ved hjælp af Biorender.com.

Materials

Acid free- Bovine serum albumine Sigma Aldrich A8806
Adenosine 5'-diphosphate monopotassium salt dihydrate Sigma Aldrich A5285
Animycin A from streptomyces sp. Sigma Aldrich A8674
Calcium chloride Sigma Aldrich C4901
carbonyl cyanide-P- trifluoromethoxy-phenylhydrazone Sigma Aldrich C2920
DatLab sofware version 4,2 Oroboros Instruments GmbH N/A
D-glucose Sigma Aldrich G7021
Digitonin Sigma Aldrich D141
EGTA Sigma Aldrich E4378
HEPES Sigma Aldrich H3375
L glutamic acid Sigma Aldrich G1251
L malic acid Sigma Aldrich M1000
Magnesium sulphate Sigma Aldrich M7506
Microliter Syringes Hamilton 87900 or 80400
Microscope camera Basler acA780-75gc
Microscope Eclipse E200 with phase contrast 10X Ph+ Nikon N/A
Monopotassium phosphate Sigma Aldrich P5655
MOPS Sigma Aldrich M1254
Oligomycin A Sigma Aldrich 75351
Oxygraph-2 K Oroboros Instruments GmbH N/A
Potassium chloride Sigma Aldrich P3911
Power O2k-Respirometer Oroboros Intruments 10033-01
Rotenone Sigma Aldrich R8875
Saccharose Sigma Aldrich S0389
Sodium bicarbonate Sigma Aldrich S5761
Sodium lactate Sigma Aldrich L7022
Sodium pyruvate Sigma Aldrich P2256
Sperm class analyzer 6.3.0.59 Evolution-SCA Research Microptic N/A
Sperm Counting Chamber DRM-600 Millennium Sciences CELL-VU N/A
Succinate disodium salt Sigma Aldrich W327700

References

  1. Agarwal, A., Mulgund, A., Hamada, A., Chyatte, M. R. A unique view on male infertility around the globe. Reproductive Biology and Endocrinology. 13, 37 (2015).
  2. Guzick, D. S., et al. Sperm morphology, motility, and concentration in fertile and infertile men. The New England Journal of Medicine. 345 (19), 1388-1393 (2001).
  3. Wang, C., Swerdloff, R. S. Limitations of semen analysis as a test of male fertility and anticipated needs from newer tests. Fertility and Sterility. 102 (6), 1502-1507 (2014).
  4. Amaral, A. Energy metabolism in mammalian sperm motility. WIREs Mechanisms of Disease. 14 (5), e1569 (2022).
  5. Leung, M. R., et al. In-cell structures of conserved supramolecular protein arrays at the mitochondria-cytoskeleton interface in mammalian sperm. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 118 (45), e2110996118 (2021).
  6. Moraes, C. R., Meyers, S. The sperm mitochondrion: Organelle of many functions. Animal Reproduction Science. 194, 71-80 (2018).
  7. Cassina, A., et al. Defective human sperm cells are associated with mitochondrial dysfunction and oxidant production. Biology of Reproduction. 93 (5), 119 (2015).
  8. Marchetti, C., Obert, G., Deffosez, A., Formstecher, P., Marchetti, P. Study of mitochondrial membrane potential, reactive oxygen species, DNA fragmentation and cell viability by flow cytometry in human sperm. Human Reproduction. 17 (5), 1257-1265 (2002).
  9. Amaral, A., Lourenço, B., Marques, M., Ramalho-Santos, J. Mitochondria functionality and sperm quality. Reproduction. 146 (5), R163-R174 (2013).
  10. Durairajanayagam, D., Singh, D., Agarwal, A., Henkel, R. Causes and consequences of sperm mitochondrial dysfunction. Andrologia. 53 (1), e13666 (2021).
  11. Uribe, P., et al. Use of the fluorescent dye tetramethylrhodamine methyl ester perchlorate for mitochondrial membrane potential assessment in human spermatozoa. Andrologia. 49 (9), e12753 (2017).
  12. Storey, B. T. Mammalian sperm metabolism: Oxygen and sugar, friend and foe. The International Journal of Developmental Biology. 52 (5-6), 427-437 (2008).
  13. Tourmente, M., Sansegundo, E., Rial, E., Roldan, E. R. S. Capacitation promotes a shift in energy metabolism in murine sperm. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 10, 950979 (2022).
  14. Gnaiger, E., Dykens, J. A., Will, Y. Chapter 12 – Polarographic oxygen sensors, the oxygraph, and high-resolution respirometry to assess mitochondrial function. Drug-Induced Mitochondrial Dysfunction. , 325-352 (2008).
  15. Brand, M. D., Nicholls, D. G. Assessing mitochondrial dysfunction in cells. Biochemical Journal. 435 (2), 297-312 (2011).
  16. Awadhpersad, R., Jackson, C. B. High-resolution respirometry to assess bioenergetics in cells and tissues using chamber- and plate-based respirometers. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (176), e63000 (2021).
  17. Chance, B., Williams, G. R. A simple and rapid assay of oxidative phosphorylation. Nature. 175 (4469), 1120-1121 (1955).
  18. Li, Z., Graham, B. H. Measurement of mitochondrial oxygen consumption using a Clark electrode. Methods in Molecular Biology. 837, 63-72 (2012).
  19. Stendardi, A., et al. Evaluation of mitochondrial respiratory efficiency during in vitro capacitation of human spermatozoa. International Journal of Andrology. 34 (3), 247-255 (2011).
  20. Ferramosca, A., Focarelli, R., Piomboni, P., Coppola, L., Zara, V. Oxygen uptake by mitochondria in demembranated human spermatozoa: A reliable tool for the evaluation of sperm respiratory efficiency. International Journal of Andrology. 31 (3), 337-345 (2008).
  21. Ferramosca, A., et al. Modulation of human sperm mitochondrial respiration efficiency by plant polyphenols. Antioxidants. 10 (2), 217 (2021).
  22. Gnaiger, E., Steinlechner-Maran, R., Méndez, G., Eberl, T., Margreiter, R. Control of mitochondrial and cellular respiration by oxygen. Journal of Bioenergetics and Biomembranes. 27 (6), 583-596 (1995).
  23. . O2k Quality Control 1: Polarographic oxygen sensors and accuracy of calibration Available from: https://www.bioblst.at/images/archive/7/77/20210819114548%21MiPNet06.03_POS-Calibration-SOP.pdf (2020)
  24. WHO Laboratory Manual for the Examination and Processing of Human Semen. World Health Organization Available from: https://www.who.int/publications/i/item/9789240030787 (2010)
  25. . O2k-protocols SOP: O2k quality control 1 Available from: https://www.bioblast.at/images/9/9c/MiPNet06.03_POS-Calibration-SOP_DatLab8.pdf (2021)
  26. Gnaiger, E. . Mitochondrial Pathways and Respiratory Control. , (2012).
  27. Steinlechner-Maran, R., Eberl, T., Kunc, M., Margreiter, R., Gnaiger, E. Oxygen dependence of respiration in coupled and uncoupled endothelial cells. The American Journal of Physiology. 271, C2053-C2061 (1996).
  28. Holt, W. V., Van Look, K. J. W. Concepts in sperm heterogeneity, sperm selection and sperm competition as biological foundations for laboratory tests of semen quality. Reproduction. 127 (5), 527-535 (2004).
  29. Sousa, A. P., et al. Not all sperm are equal: Functional mitochondria characterize a subpopulation of human sperm with better fertilization potential. PloS One. 6 (3), e18112 (2011).
  30. Moscatelli, N., et al. Single-cell-based evaluation of sperm progressive motility via fluorescent assessment of mitochondria membrane potential. Scientific Reports. 7, 17931 (2017).
  31. Ferreira, J. J., et al. Increased mitochondrial activity upon CatSper channel activation is required for mouse sperm capacitation. Redox Biology. 48, 102176 (2021).
  32. Irigoyen, P., et al. Mitochondrial metabolism determines the functional status of human sperm and correlates with semen parameters. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 10, 926684 (2022).
check_url/fr/65493?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Irigoyen, P., Sapiro, R., Cassina, A. High-Resolution Respirometry to Assess Mitochondrial Function in Human Spermatozoa. J. Vis. Exp. (196), e65493, doi:10.3791/65493 (2023).

View Video