Summary

Høyoppløselig respirometri for å vurdere mitokondriell funksjon i humane spermatozoer

Published: June 23, 2023
doi:

Summary

Analysen av sperm mitokondriell funksjon ved høyoppløselig respirometri tillater måling av oksygenforbruket av fritt bevegelige spermatozoer i et lukket kammersystem. Teknikken kan brukes til å måle respirasjon i humane spermatozoer, som gir informasjon om sperm mitokondrielle egenskaper og integritet.

Abstract

Sædkvalitet studeres ofte ved rutinemessig sædanalyse, som er beskrivende og ofte mangelfull. Mannlig infertilitet er assosiert med endret sperm mitokondriell aktivitet, så måling av sperm mitokondriell funksjon er en indikator på sædkvalitet. Høyoppløselig respirometri er en metode for å måle oksygenforbruket til celler eller vev i et lukket kammersystem. Denne teknikken kan implementeres for å måle respirasjon i menneskelig sæd og gir informasjon om kvaliteten og integriteten til sædmitokondriene. Høyoppløselig respirometri gjør at cellene kan bevege seg fritt, noe som er en a priori fordel når det gjelder sædceller. Denne teknikken kan brukes med intakte eller permeabiliserte spermatozoer og muliggjør studier av intakt sæd, mitokondriell funksjon og aktiviteten til individuelle respiratoriske kjedekomplekser. Det høyoppløselige oksygrafinstrumentet bruker sensorer til å måle oksygenkonsentrasjonen kombinert med sensitiv programvare for å beregne oksygenforbruket. Dataene brukes til å beregne respiratoriske indekser basert på oksygenforbruksforholdene. Følgelig er indeksene proporsjonene av to oksygenforbrukshastigheter og er internt normalisert til cellenummer eller proteinmasse. Respiratoriske indekser er en indikator på sperm, mitokondriell funksjon og dysfunksjon.

Introduction

Mannlig infertilitet er estimert til å utgjøre 40% -50% av alle tilfeller av infertilitet hos par1. Konvensjonell sædanalyse spiller en avgjørende rolle for å bestemme mannlig fruktbarhet; Imidlertid har omtrent 15% av infertile menn normale sædparametere2. I tillegg gir rutinemessig sædanalyse begrenset informasjon om sædfunksjon og gjenspeiler ikke subtile sæddefekter3.

Sperm mitokondrier har en spesiell struktur, da de er arrangert som en spiralformet skjede rundt flagellaen. Mitokondrieskjeden inneholder et variabelt antall mitokondrier forbundet med intermitokondrielle linkere og forankret til cytoskjelettet ved bestilte proteinarrangementer på den ytre mitokondriemembranen 4,5. Denne strukturen gjør det spesielt vanskelig å isolere sperm mitokondrier. Derfor bruker de fleste studier av sperm mitokondriell funksjon in situ analyser eller demembranert sperm6.

Sperm mitokondriell struktur og funksjon har vært konsekvent knyttet til mannlig infertilitet 7,8,9,10,11, noe som tyder på at analyse av strukturen og funksjonen til disse organellene kan være en god kandidat for inkludering i sædanalyse.

Mitokondrier spiller en viktig rolle i cellulær energimetabolisme, spesielt ved å bruke oksygen til å produsere adenosintrifosfat (ATP) gjennom oksidativ fosforylering (OXPHOS). Spesielt i spermatozoa er kilden til ATP (glykolyse vs. OXPHOS) omstridt, og mye av dataene forblir kontroversielle og avhenger av forskjellige eksperimentelle tilnærminger 4,12,13. Målinger av respirasjon ved oksymetri gir betydelig innsikt i mitokondriell respiratorisk kapasitet, mitokondriell integritet og energimetabolisme i cellen14,15,16. Tradisjonelt har denne teknikken blitt utført ved hjelp av Clark oksygenelektrode – et instrument som har blitt brukt til å måle mitokondriell respirasjon i mer enn 50 år17,18. I tillegg har sperm mitokondrielt oksygenforbruk blitt analysert ved hjelp av den klassiske Clark oksygenelektroden 19,20,21. Høyoppløselig respirometri (HRR) ved bruk av oksygrafer (Oroboros) gir høyere sensitivitet enn ved bruk av klassiske respirometrienheter22. Oksygrafene består av to kamre med injeksjonsporter, og hvert kammer har en polarografisk oksygensensor. Med denne teknikken er det mulig å analysere vevslysbilder, celler og isolerte mitokondrielle suspensjoner. Prøven omrøres kontinuerlig i kammeret, og under forsøket måles oksygenforbruket, og oksygenhastigheten beregnes ved hjelp av spesifikk programvare. Kamrene viser redusert oksygenlekkasje, noe som er en fordel i forhold til de konvensjonelle oksygenelektrodeenhetene14,23.

Som med andre celler, når det gjelder spermatozoer, er følsomheten til HRR-utstyr høyere enn for konvensjonell respirometri, noe som betyr at HRR-utstyr kan brukes til analyse av et begrenset antall intakte eller permeabiliserte sædceller. Det er to hovedstrategier for å vurdere sperm mitokondriell funksjon ved HRR: (a) måling av oksygenforbruket i intakte celler, som innebærer å reprodusere respiratorisk funksjon i et medium som inneholder substrater som glukose, eller (b) måle oksygenforbruket i permeabiliserte celler ved hjelp av et av OXPHOS-kompleksene, med tilsetning av spesifikke substrater for å overvåke hver funksjon separat.

I denne studien beskriver vi bruken av HRR for å bestemme mitokondriell respirasjon i humane sædceller.

Protocol

Eksperimentene ble godkjent av etikkomiteen ved Facultad de Medicina de la Universidad de la República, Montevideo, Uruguay. Figur 1: Arbeidsflyt for høyoppløselig respirometri for å vurdere mitokondriefunksjon i intakt og permeabilisert human sæd. Protokollen ble delt inn i fire ulike trinn: 1) klargjøring av prøv…

Representative Results

Bestemmelse av optimal konsentrasjon av digitonin i sædcellerI denne protokollen presenterer vi bruken av HRR for å overvåke sanntidsendringer i OXPHOS i humane sædceller. Siden metoden kan brukes til å analysere intakt eller digitoninpermeabilisert sæd, presenterer vi først standardiseringen av digitoninkonsentrasjon som kreves for å permeabilisere sædceller (figur 3). Digitonin brukes til kjemisk permeabilisering, som gjør at subst…

Discussion

HRR avhenger kritisk av flere trinn: (a) vedlikehold av utstyret, (b) nøyaktig kalibrering av oksygensensorene, (c) uncoupler-titrering26, og til slutt (d) tilstrekkelig bruk av indekser som representerer mitokondriefunksjonen. Vedlikehold av utstyr er avgjørende. Det anbefales å bytte ut membranene til den polarografiske oksygensensoren regelmessig og korrigere instrumentbakgrunnen. Omfattende vask etter samling av spermatozoa fra kamrene er avgjørende for å oppnå gode replikater, spesielt …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gjerne takke Fertilab Andrology klinikken, spesielt José María Montes og Andrea Torrents, for å gi oss tilgang til givere. Finansiering: AC støttes av tilskudd fra Universidad de la República (CSIC_2018, Espacio Interdisciplinario_2021). Ytterligere finansiering ble hentet fra Programa de Desarrollo de Ciencias Básicas (PEDECIBA, Uruguay). P.I. og R.S. støttes av Universidad de la República (I+D, CSIC 2014; I+D, CSIC 2016, Iniciación a la Investigación, CSIC 2019 og FMV_1_2017_1_136490 ANII- Uruguay). PI støttes av POS_FMV_2018_1_1007814 og CAP-UDELAR 2020. Figurene er illustrert med Biorender.com.

Materials

Acid free- Bovine serum albumine Sigma Aldrich A8806
Adenosine 5'-diphosphate monopotassium salt dihydrate Sigma Aldrich A5285
Animycin A from streptomyces sp. Sigma Aldrich A8674
Calcium chloride Sigma Aldrich C4901
carbonyl cyanide-P- trifluoromethoxy-phenylhydrazone Sigma Aldrich C2920
DatLab sofware version 4,2 Oroboros Instruments GmbH N/A
D-glucose Sigma Aldrich G7021
Digitonin Sigma Aldrich D141
EGTA Sigma Aldrich E4378
HEPES Sigma Aldrich H3375
L glutamic acid Sigma Aldrich G1251
L malic acid Sigma Aldrich M1000
Magnesium sulphate Sigma Aldrich M7506
Microliter Syringes Hamilton 87900 or 80400
Microscope camera Basler acA780-75gc
Microscope Eclipse E200 with phase contrast 10X Ph+ Nikon N/A
Monopotassium phosphate Sigma Aldrich P5655
MOPS Sigma Aldrich M1254
Oligomycin A Sigma Aldrich 75351
Oxygraph-2 K Oroboros Instruments GmbH N/A
Potassium chloride Sigma Aldrich P3911
Power O2k-Respirometer Oroboros Intruments 10033-01
Rotenone Sigma Aldrich R8875
Saccharose Sigma Aldrich S0389
Sodium bicarbonate Sigma Aldrich S5761
Sodium lactate Sigma Aldrich L7022
Sodium pyruvate Sigma Aldrich P2256
Sperm class analyzer 6.3.0.59 Evolution-SCA Research Microptic N/A
Sperm Counting Chamber DRM-600 Millennium Sciences CELL-VU N/A
Succinate disodium salt Sigma Aldrich W327700

References

  1. Agarwal, A., Mulgund, A., Hamada, A., Chyatte, M. R. A unique view on male infertility around the globe. Reproductive Biology and Endocrinology. 13, 37 (2015).
  2. Guzick, D. S., et al. Sperm morphology, motility, and concentration in fertile and infertile men. The New England Journal of Medicine. 345 (19), 1388-1393 (2001).
  3. Wang, C., Swerdloff, R. S. Limitations of semen analysis as a test of male fertility and anticipated needs from newer tests. Fertility and Sterility. 102 (6), 1502-1507 (2014).
  4. Amaral, A. Energy metabolism in mammalian sperm motility. WIREs Mechanisms of Disease. 14 (5), e1569 (2022).
  5. Leung, M. R., et al. In-cell structures of conserved supramolecular protein arrays at the mitochondria-cytoskeleton interface in mammalian sperm. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 118 (45), e2110996118 (2021).
  6. Moraes, C. R., Meyers, S. The sperm mitochondrion: Organelle of many functions. Animal Reproduction Science. 194, 71-80 (2018).
  7. Cassina, A., et al. Defective human sperm cells are associated with mitochondrial dysfunction and oxidant production. Biology of Reproduction. 93 (5), 119 (2015).
  8. Marchetti, C., Obert, G., Deffosez, A., Formstecher, P., Marchetti, P. Study of mitochondrial membrane potential, reactive oxygen species, DNA fragmentation and cell viability by flow cytometry in human sperm. Human Reproduction. 17 (5), 1257-1265 (2002).
  9. Amaral, A., Lourenço, B., Marques, M., Ramalho-Santos, J. Mitochondria functionality and sperm quality. Reproduction. 146 (5), R163-R174 (2013).
  10. Durairajanayagam, D., Singh, D., Agarwal, A., Henkel, R. Causes and consequences of sperm mitochondrial dysfunction. Andrologia. 53 (1), e13666 (2021).
  11. Uribe, P., et al. Use of the fluorescent dye tetramethylrhodamine methyl ester perchlorate for mitochondrial membrane potential assessment in human spermatozoa. Andrologia. 49 (9), e12753 (2017).
  12. Storey, B. T. Mammalian sperm metabolism: Oxygen and sugar, friend and foe. The International Journal of Developmental Biology. 52 (5-6), 427-437 (2008).
  13. Tourmente, M., Sansegundo, E., Rial, E., Roldan, E. R. S. Capacitation promotes a shift in energy metabolism in murine sperm. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 10, 950979 (2022).
  14. Gnaiger, E., Dykens, J. A., Will, Y. Chapter 12 – Polarographic oxygen sensors, the oxygraph, and high-resolution respirometry to assess mitochondrial function. Drug-Induced Mitochondrial Dysfunction. , 325-352 (2008).
  15. Brand, M. D., Nicholls, D. G. Assessing mitochondrial dysfunction in cells. Biochemical Journal. 435 (2), 297-312 (2011).
  16. Awadhpersad, R., Jackson, C. B. High-resolution respirometry to assess bioenergetics in cells and tissues using chamber- and plate-based respirometers. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (176), e63000 (2021).
  17. Chance, B., Williams, G. R. A simple and rapid assay of oxidative phosphorylation. Nature. 175 (4469), 1120-1121 (1955).
  18. Li, Z., Graham, B. H. Measurement of mitochondrial oxygen consumption using a Clark electrode. Methods in Molecular Biology. 837, 63-72 (2012).
  19. Stendardi, A., et al. Evaluation of mitochondrial respiratory efficiency during in vitro capacitation of human spermatozoa. International Journal of Andrology. 34 (3), 247-255 (2011).
  20. Ferramosca, A., Focarelli, R., Piomboni, P., Coppola, L., Zara, V. Oxygen uptake by mitochondria in demembranated human spermatozoa: A reliable tool for the evaluation of sperm respiratory efficiency. International Journal of Andrology. 31 (3), 337-345 (2008).
  21. Ferramosca, A., et al. Modulation of human sperm mitochondrial respiration efficiency by plant polyphenols. Antioxidants. 10 (2), 217 (2021).
  22. Gnaiger, E., Steinlechner-Maran, R., Méndez, G., Eberl, T., Margreiter, R. Control of mitochondrial and cellular respiration by oxygen. Journal of Bioenergetics and Biomembranes. 27 (6), 583-596 (1995).
  23. . O2k Quality Control 1: Polarographic oxygen sensors and accuracy of calibration Available from: https://www.bioblst.at/images/archive/7/77/20210819114548%21MiPNet06.03_POS-Calibration-SOP.pdf (2020)
  24. WHO Laboratory Manual for the Examination and Processing of Human Semen. World Health Organization Available from: https://www.who.int/publications/i/item/9789240030787 (2010)
  25. . O2k-protocols SOP: O2k quality control 1 Available from: https://www.bioblast.at/images/9/9c/MiPNet06.03_POS-Calibration-SOP_DatLab8.pdf (2021)
  26. Gnaiger, E. . Mitochondrial Pathways and Respiratory Control. , (2012).
  27. Steinlechner-Maran, R., Eberl, T., Kunc, M., Margreiter, R., Gnaiger, E. Oxygen dependence of respiration in coupled and uncoupled endothelial cells. The American Journal of Physiology. 271, C2053-C2061 (1996).
  28. Holt, W. V., Van Look, K. J. W. Concepts in sperm heterogeneity, sperm selection and sperm competition as biological foundations for laboratory tests of semen quality. Reproduction. 127 (5), 527-535 (2004).
  29. Sousa, A. P., et al. Not all sperm are equal: Functional mitochondria characterize a subpopulation of human sperm with better fertilization potential. PloS One. 6 (3), e18112 (2011).
  30. Moscatelli, N., et al. Single-cell-based evaluation of sperm progressive motility via fluorescent assessment of mitochondria membrane potential. Scientific Reports. 7, 17931 (2017).
  31. Ferreira, J. J., et al. Increased mitochondrial activity upon CatSper channel activation is required for mouse sperm capacitation. Redox Biology. 48, 102176 (2021).
  32. Irigoyen, P., et al. Mitochondrial metabolism determines the functional status of human sperm and correlates with semen parameters. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 10, 926684 (2022).

Play Video

Citer Cet Article
Irigoyen, P., Sapiro, R., Cassina, A. High-Resolution Respirometry to Assess Mitochondrial Function in Human Spermatozoa. J. Vis. Exp. (196), e65493, doi:10.3791/65493 (2023).

View Video