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Article de méthode

Protocole optimisé pour la génération de cellules pancréatiques fonctionnelles sécrétant de l’insuline à partir de cellules souches pluripotentes humaines

3.3K vues

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DOI :

10.3791/65530

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2 février 2024

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Dans cet article

Résumé

Cet article présente un protocole de différenciation dirigée et d’analyse fonctionnelle des cellules de type β-cellules. Nous décrivons les conditions de culture et les passages optimaux pour les cellules souches pluripotentes humaines avant de générer des cellules pancréatiques productrices d’insuline. La différenciation en six étapes progresse de la formation définitive de l’endoderme à des cellules fonctionnelles de type β sécrétant de l’insuline en réponse au glucose.

Résumé

Les cellules souches pluripotentes humaines (hPSC) peuvent se différencier en n’importe quel type de cellule, ce qui en fait une excellente source alternative de β-cellules pancréatiques humaines. Les CSPh peuvent être soit des cellules souches embryonnaires (CSEh) dérivées du blastocyste, soit des cellules pluripotentes induites (CSPh) générées directement à partir de cellules somatiques par un processus de reprogrammation. Ici, un protocole vidéo est présenté pour décrire les conditions optimales de culture et de passage des hPSC, avant leur différenciation et la génération ultérieure de cellules pancréatiques productrices d’insuline. Cette méthodologie suit le processus en six étapes de différenciation dirigée par les cellules β, dans lequel les hPSC se différencient en endoderme définitif (DE), tube intestinal primitif, destin de l’intestin antérieur postérieur, progéniteurs pancréatiques, progéniteurs endocriniens pancréatiques et finalement cellules β pancréatiques. Il convient de noter que cette méthodologie de différenciation prend une période de 27 jours pour générer des β-cellules pancréatiques humaines. Le potentiel de sécrétion d’insuline a été évalué par le biais de deux expériences, qui comprenaient l’immunomarquage et la sécrétion d’insuline stimulée par le glucose.

Introduction

Les cellules souches pluripotentes humaines (CSPh) ont la capacité unique de se différencier en différents types de cellules, ce qui en fait une alternative viable aux cellules β pancréatiques humaines1. Ces hPSC sont classées en deux types : les cellules souches embryonnaires (hESC), dérivées du blastocyste2, et les cellules pluripotentes induites (hiPSC), générées par la reprogrammation directe des cellules somatiques3. Le développement de techniques permettant de différencier les CSPh en cellules β a des implications importantes pour la recherche fondamentale et la pratique clinique

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Protocole

Avant d’amorcer la différenciation, il est recommandé de déterminer le nombre requis d’organoïdes en forme d’îlots à des fins expérimentales. Dans une plaque à 6 puits, un seul puits avec plus de 80 % de confluence se compose généralement de 2 à 2,3 millions de CSPh. Bien qu’une prédiction précise soit difficile en raison des variations des lignées de hPSC et de l’efficacité de la différenciation, une estimation approximative est 1,5 fois le nombre de puits initiaux. Une différenciation dirigée efficacement produit généralement 1,6 à 2 millions de cellules par puits dans des plaques à six puits, englobant toutes les cellules des grappes plutôt que exclusivement les ce....

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Résultats

Le protocole décrit dans cet article offre une approche très efficace pour différencier les cellules de type β des hPSC10. Ce processus utilise un système de culture 2D facilement évolutif, permettant son utilisation dans divers contextes expérimentaux, tels que la différenciation de l’apprentissage, des projets et des laboratoires plus petits, et des tests pilotes pour évaluer le potentiel de différenciation d’une lignée iPSC.

Il est essentiel de caractériser les propr.......

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Discussion

La différenciation réussie des CSPh en cellules β pancréatiques dépend de l’optimisation de tous les aspects de la culture de routine et du passage des CSPh sélectionnées. Il s’agit notamment de s’assurer que la lignée cellulaire a un caryotype normal, qu’elle est négative pour l’infection à mycoplasmes et qu’elle est exempte de génomes plasmidiques ou de vecteurs viraux. De plus, lors de l’utilisation de hiPSC, il est important d’éviter d’utiliser le passage le plus ancien qui est encore en cours de reprogrammation, pou.......

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Remerciements

Ines Cherkaoui a bénéficié d’une bourse de recherche de Diabetes UK (BDA 18/0005934) à GAR, qui remercie également le Wellcome Trust pour une bourse de chercheur (212625/Z/18/Z), UKRI MRC pour une subvention de programme (MR/R022259/1), Diabetes UK pour une subvention de projet (BDA16/0005485), le CRCHUM pour des fonds de démarrage, Innovation Canada pour une bourse John R. Evans Leader (CFI 42649), NIH-NIDDK (R01DK135268) pour une subvention Projet, et IRSC, FRDJ pour une subvention d’équipe (IRSC-IRSC : 0682002550 ; FRDJ 4-SRA-2023-1182-S-N). Camille Dion et le Dr Harry Leitch pour leur aide à la génération et à la culture d’hiPSC humaines, l’installation d’organoï....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
1,5 mL TubeOne Microcentrifugeuse TubeStarlabsS1615-5500
6 puits Plaque de culture cellulaireThermoFisher Scientific165218
AggreWell 400 Plaque 6 puits  ;STEMCELL Technologies34425
Anti-Glucagon  ;Sigma-aldrichG2654-100UL
Anti-insuline  ;DakoA0564
Anti-NKX6.1Novus BiologicalsNBP1-49672SS
Anti-PDX1  ;Abcamab84987
AphidicolinSigma-AldrichA4487
B-27 Supplément (50X), sans sérumThermo Fisher Scientific17504044
Albumine sérique bovine, sans acides grasSigma-AldrichA3803-100G
Chlorure de calcium dihydratéSigma-AldrichC3306
Sans calcium/magnésium D-PBSThermo Fisher Scientific14190144
Cyclopamine-KAADCalbiochem239804
D-(+)-Glucose, BioXtraSigma-AldrichG7528
Hydrogénophosphate disodique, anhydreSigma-Aldrich94046-100ML-DMEM
plus GlutaMAXThermo Fisher Scientific10566016pour milieu de lavage 2 : DMEM plus GlutaMAX 1 % PS.
DMEM/F-12 (Mélange Eagle Medium Modifié/Nutriments F-12)Thermo Fisher Scientific10565-018
Epredi SuperFrost Plus Lames d’adhérenceThermo Fisher Scientific10149870
EthanolVWR20821.33
Sérum de bovin fœtalThermo Fisher Scientific10270098
Inhibiteur de la gamma-sécrétase XXThermo Fisher ScientificJ64904
Geltrex sans LDEV Facteur de croissance réduitSocle Thermo Fisher ScientificA1413302Geltrex 1:1 dans un milieu DMEM/F-12 froid pour fournir une dilution finale de 1:100.
Chèvre anti-cochon d’Inde, Alexa Fluor 555Thermo Fisher ScientificA-21435
Chèvre anti-cochon d’Inde, Alexa Fluor 647Abcamab150187
Anticorps secondaire anti-souris de chèvre, Alexa Fluor 633Thermo Fisher ScientificA-21052
Anticorps secondaire anti-IgG de chèvre, Alexa Fluor 568Thermo Fisher ScientificA-11011
HéparineSigma-AldrichH3149
Tampon HEPESSigma-AldrichH3375-500G
Hoechst 33342, TrichlorhydrateThermo Fisher ScientificH1399
Protéine recombinante humaine FGF-7 (KGF) ThermoFisher ScientificPHG0094
Chlorure d’hydrogèneSigma-Aldrich295426
ImmEdge Barrière hydrophobe PAP PenAgar ScientificAGG4582
LDN193189Sigma-AldrichSML0559-5MG
Chlorure de magnésium hexahydratéSigma-AldrichM9272-500G
Composé OCT 118 mLAgar ScientificAGR1180
PBS Comprimés, solution saline tamponnée au phosphate, Fisher BioReagentsThermo Fisher Scientific7647-14-5
Pénicilline-Streptomycine (PS)Thermo Fisher Scientific,15070-063
Chlorure de potassiumSigma-Aldrich7447-40-7
Protéine EGF humaine recombinanteR& D Systems236-EG-200
Verres de protection rectangulaires, 22× ; 50 mmVWR631-0137
RepSox (chlorhydrate)STEMCELL Technologies72394
RPMI 1640 Medium, Supplément GlutaMAX  ;   ;Thermo Fisher Scientific61870036pour le produit de lavage 1 : RPMI 1640 plus GlutaMAX 1 % PS.
Shandon Immu-mountThermo Fisher Scientific9990402
Bicarbonatede sodium Sigma-AldrichS6014-500G
Chlorurede sodium Sigma-AldrichS3014
Dihydrogénophosphate de sodium anhydreSigma-Aldrich7558-80-7
STEMdiff Endoderm  ;STEMCELL Technologies5110
StemFlex MediumThermo Fisher ScientificA3349401Décongeler le supplément StemFlex pendant la nuit à 4° ; C, transférez tout liquide résiduel de la bouteille de supplément dans le milieu basal StemFlex.
Stemolecule All-Trans Retinoic AcidReprocell04-0021  ;
Thyroïde Tormone 3 (T3)Sigma-AldrichT6397
Trypan Blue Solution, 0,4 %ThermoFisher Scientific15250061
TrypL Express Enzyme (1X)Thermo Fisher Scientific12604013
TWEEN 20Sigma-AldrichP2287-500ML
Plaque à très faible adhérence pour culture en suspensionThermo Fisher Scientific38071
Eau distillée sans DNase/RNase UltraPureThermo Fisher Scientific10977015
Y-27632 (dichlorhydrate)  ;STEMCELL Technologies72302
Sulfate de zincSigma-Aldrich  ;Réf. Z4750

Références

  1. Kolios, G., Moodley, Y. Introduction to stem cells and regenerative medicine. Respiration. 85 (1), 3-10 (2013).
  2. Thomson, J. A., et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282 (5391), 1145-1147 (1998).
  3. Martin, G. R.

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Réimpressions et autorisations

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