Summary

遺伝子改変マウスモデルにおける悪性末梢神経鞘腫瘍の同定、診断、および悪性度判定

Published: May 17, 2024
doi:

Summary

私たちは、遺伝子改変マウスの神経系新生物がヒトの病理を正確に再現しているかどうかを評価するための方法論を開発しました。本研究では、これらの組織学的手法、定義された病理学的基準、および培養方法論を、P 0-GGFβ3マウスモデルで発生する神経線維腫および悪性末梢神経鞘腫瘍に適用します。

Abstract

常染色体優性腫瘍感受性症候群神経線維腫症1型(NF1)の患者は、一般的に叢状神経線維腫(PN)を発症し、その後、非常に侵攻性の高い悪性末梢神経鞘腫瘍(MPNST)に変化します。PNがMPNSTに変化するプロセスを理解することは、NF1のヒトで見られるPN-MPNSTの進行を正確に再現する遺伝子改変マウス(GEM)モデルの利用可能性によって容易になります。残念ながら、Nf1アブレーションを用いたGEMモデルでは、このプロセスを完全に再現することはできません。そこで、シュワン細胞でシュワン細胞マイトジェンニューレグリン-1(NRG1)を過剰発現させることでPNを発現させ、高頻度でMPNSTに進行するGEMモデルであるP 0-GGFβ3マウスを開発しました。しかし、P 0-GGFβ3マウスの腫瘍形成と腫瘍性進行がNF1患者に見られるプロセスを正確にモデル化しているかどうかを判断するには、まず、P0-GGFβ3末梢神経鞘腫瘍の病理がヒトの病理を再現していることを証明する必要がありました。

ここでは、P 0-GGFβ3およびP0-GGFβ3を使用して、GEMモデルで末梢神経系新生物を正確に診断および等級付けするために使用される特殊な方法論について説明します。例としてTrp53+/-マウス。PNおよびMPNSTの診断に使用される組織学的、免疫組織化学的、および組織化学的方法、これらの新生物をそれらの病理学を模倣する他の腫瘍型と区別する方法、およびこれらの新生物を等級付けする方法について説明します。本稿では、GEM MPNSTからの早期継代培養の確立、免疫細胞化学を用いたこれらの培養物の特性評価方法、および同種移植片の確立による腫瘍原性の検証方法について議論する。総じて、これらの技術は、GEMモデルで発生するPNおよびMPNSの病理を特徴付け、これらのマウス腫瘍の病理をヒトの病理学と批判的に比較します。

Introduction

過去30年間にわたり、多くの研究室が、ヒトのがん関連変異をマウスゲノムに導入したり、ヒトのがんに過剰発現している遺伝子産物を過剰発現させたりすることで、ヒトがんのマウスモデルの作成を試みてきました。得られた遺伝子改変マウス(GEM)モデルは、新たに導入されたゲノム改変が腫瘍形成を開始することの確立、腫瘍の進行に寄与する他のその後に発生する遺伝的またはエピジェネティックな変化の同定、腫瘍の開始と進行を促進する主要なシグナル伝達経路の定義など、さまざまな目的に使用できます。免疫不全マウスの使用に依存する同所異種移植モデルとは異なり、GEMがんモデルは完全に機能する免疫系を持っているため、候補となる治療薬に対する反応をより正確にモデル化できます。しかし、このような目的でGEMがんモデルを使用する場合、研究者はGEM新生物で行われた観察がヒトの対応物に関連していることを確認することが不可欠です。この検証には、GEM新生物の病理学の徹底的な評価と、GEM新生物の病理学的特徴が対応するヒト腫瘍型の病理学を再現しているかどうかの決定を含める必要があります。

腫瘍感受性症候群神経線維腫症1型(NF1)は、人間の神経系に影響を与える最も一般的な遺伝性疾患であり、3,000〜3,500人の出生ごとに約1人で発生します1,2,3。NF1に罹患した個人は、皮膚(皮膚神経線維腫)および大きな神経および神経叢(網状神経線維腫)に神経線維腫として知られる複数の良性末梢神経鞘腫瘍を発症します。皮膚神経線維腫と叢状神経線維腫はどちらも身体的、行動的、および/または社会的障害を引き起こすことにより患者の生活の質を悪化させますが、叢状神経線維腫(PN)は特に危険です4,5。これは、PNが悪性末梢神経鞘腫瘍(MPNST)に変化することが多いためであり、これは生存率が非常に低い侵攻性の紡錘細胞腫瘍である1,2。この生存率の低さは、MPNSTの治療に現在使用されている放射線療法および化学療法レジメンが効果がないことが主な原因です。しかし、より効果的な新しい治療法の開発は困難でした。これは、MPNSTがNF1患者にどれほど一般的に発生するかにもかかわらず、MPNSTは依然としてまれな新生物であるためです。その結果、研究のために多数のヒト腫瘍を入手することは非常に困難です。また、臨床試験のために十分な数のMPNST患者を募集することも困難です。これらの限界を克服するために、神経線維腫の病因とPN-MPNSTの進行を促進する異常に関するさらなる洞察を得て、候補となる治療薬の前臨床試験を促進することを目的として、いくつかのGEMモデルが作成されました。

NF1患者は、NF1遺伝子の1つのコピーに不活性化変異を有する。神経線維腫の病因は、シュワン細胞系統の細胞に残りの機能的NF1遺伝子の不活性化変異が発生したときに引き起こされます。しかし、驚くべきことに、生殖細胞不活性化Nf1変異を持つマウスを作製したところ、神経線維腫は発症しなかった6,7。その後の実証では、Nf1-nullシュワン細胞と他のすべての細胞型におけるNf1ハプロ不全を有するマウス(Krox20-Cre;Nf1flox/-マウス)は、神経線維腫の病因には、他の細胞型におけるNf1遺伝子の投与量の減少が必要であることを示唆している8。それでも、Krox20-Creの叢状神経線維腫;Nf1flox/-マウスはMPNSTに進化しなかったため、ヒトの生態を部分的に模倣したに過ぎない。MPNSTの病因は、Nf1変異がTrp539Cdkn2a10などの追加の腫瘍抑制遺伝子の変異と組み合わされたときに起こったが、これらのGEMモデルにおけるMPNSTは、既存の良性叢状神経線維腫からではなく、de novoまたは生物学的可能性が不確かな非定型神経線維腫性腫瘍(ANNUBP)から発症した11,12(13,14参照)これらのモデルや、Suz12Pten15などの遺伝子にMPNST関連の機能喪失変異を追加導入した他のモデルの優れたレビュー。

これらのマウスモデルは、NF1TP53、CDKN2Aなどの遺伝子がNF1関連末梢神経系新生物の病因に果たす役割を確立し、治療薬候補を試験する前臨床試験に非常に貴重です。しかし、叢状神経線維腫が進行して、生物学的可能性が不確かな非定型神経線維腫性腫瘍(ANNUBPs16)になり、次にMPNSTになるプロセスについては、まだ完全には理解されていません。最近では、Nf1Arfに欠失したマウスがANNUBPを発達させ、それがMPNSTに進行するという報告があり、このプロセスの理解が進んでいます11。しかし、ヒトに見られる網状神経線維腫-MPNSTの進行過程を完全に再現したNf1変異ベースのマウスモデルはまだ存在しません。さらに、MPNSTの発症につながる複数の異なる経路があるかどうかは明らかではありません。このことを考えると、上記のGEMは、神経線維腫-MPNSTの進行およびMPNSTの病因につながるいくつかの異なる経路のサブセットのみをモデル化している可能性があります。この点は、MPNSTも散発的に発生し、一部の散発的なMPNSTは明らかにNF1変異を有さないという事実によって強調されている17,18

この後者の点は、 NF1 変異を欠く少なくともいくつかの散発性MPNSTが黒色腫または別のタイプの肉腫であるというMagollon-Lorenzらの最近の提案によって異議を唱えられてきましたが19、私たちは最近、散発性MPNSTと、この腫瘍に由来する細胞株(2XSB細胞)が NF1 野生型であることを報告しました20.親腫瘍および2XSB細胞株の特性評価において、散発性悪性末梢神経鞘腫瘍の鑑別診断で日常的に考慮される黒色腫および他の複数の肉腫型を含む代替診断の可能性を系統的に除外した20。さらに、Magollon-Lorenzらは、彼らが研究した3つの散発性MPNST細胞株における彼らの知見は、散発性MPNSTとして同定されたすべての腫瘍がMPNSTではないことを示すために一般化できないことを認めたことに留意する。

神経線維腫とMPNSTの病因が必ずしも特定の腫瘍抑制遺伝子変異に依存しないGEMモデルを構築するために、強力なシュワン細胞マイトジェンニューレグリン-1(NRG1)の過剰発現がシュワン細胞特異的ミエリンタンパク質ゼロ(P0)プロモーター(P 0-GGFβ3マウス)によって駆動されたトランスジェニックマウスを作製した21.我々は以前に、ヒト神経線維腫、MPNST、およびMPNST細胞株が、NRG1シグナル伝達を媒介するerbB受容体チロシンキナーゼ(erbB2、erbB3、およびerbB4)とともにいくつかのNRG1アイソフォームを発現し、これらのerbB受容体が恒常的に活性化されることを示しました22。また、erbBキナーゼの薬理学的阻害剤がMPNSTの増殖22、生存23、遊走24を強力に阻害することも実証した。ヒトでの観察結果と同様に、P 0-GGFβ3マウスは叢状神経線維腫を発症し25、高頻度でMPNSTに進行する21,25。我々は、P 0-GGFβ3 MPNST、ヒトのMPNST、Trp53およびCdkn2aの変異、および腫瘍形成に寄与する可能性のある他の多くのゲノム異常を一般的に発症することを示しました25P 0-GGFβ3マウスに生じるMPNSTは、不活性化Nf1変異を有しない。しかし、遺伝的相補性を用いて、NRG1は、主にNf1の欠損によって変化したのと同じシグナル伝達カスケードを介して、P 0-GGFβ3マウスの腫瘍形成を促進することを示した26この結論は、Trp53ハプロ不全(P 0-GGFβ3;Trp53+/-マウス)は、シス-Nf1+/-に見られるように、MPNSTがde novoを発症する動物を産生する。Trp53+/-マウス27

P 0-GGFβ3マウスがNF1のヒトに見られる神経線維腫の病因および神経線維腫-MPNST進行のプロセスを正確にモデル化することを実証するこの情報およびその他の情報を得るために、これらの動物の組織を処理し、それらの腫瘍を正確に診断し、これらのマウスで発生するMPNSTを等級付けし、早期継代P0-GGFβ3およびP0-GGFβ3を確立して特徴付けるための専門的な方法論を開発しました。Trp53+/- MPNST培養、およびP 0-GGFβ3 PNおよびMPNST、およびP0-GGFβ3の病理学を批判的に比較する。Trp53+/- MPNSTをヒトのMPNSTと比較します。これらの方法論の多くは、神経系腫瘍の他のGEMモデルに一般化可能である。さらに、これらの方法論のいくつかは、新生物が他の臓器部位に発生するGEMモデルにより広く適用できます。したがって、ここではこれらの方法論の詳細な説明を提示します。

Protocol

ここで説明する手順は、サウスカロライナ医科大学のIACUCによって承認され、実験動物のケアと使用に関するNIHガイドおよびMUSCの施設動物ケアガイドラインに従って、適切な訓練を受けた担当者によって実施されました。 1. P 0-GGFβ3マウスにおける腫瘍の浸透度と生存率の決定、およびさらなる特性評価のためのこれらの動物の腫瘍の同定 腫?…

Representative Results

図2は、P 0-GGFβ3マウスに生じる肉眼的に明らかな新生物の例を示す。肉眼で容易に識別できる腫瘍は、図2A(矢印)に示すように、腫瘤が体の領域を拡張させているように見えることがあります。新生物が末梢神経鞘腫瘍である可能性があるかどうかを判断する際には、腫瘍が末梢神経と関連していることを立証することが不可欠である。こ?…

Discussion

ここで紹介する組織学的および生化学的方法は、神経線維腫およびMPNSTの病因のGEMモデルを診断および特徴付けるためのフレームワークを提供します。何年にもわたって、これらの方法論は、GEMモデルで発生する末梢神経鞘腫瘍の病理を評価するのに非常に有用であることがわかりました212526。しかしながら、ここで?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、国立神経疾患・脳卒中研究所(R01 NS048353およびR01 NS109655 to S.L.C.;R01 NS109655-03S1 から D.P.J.)、国立がん研究所 (R01 CA122804 から S.L.C.)、および国防総省 (X81XWH-09-1-0086 および W81XWH-12-1-0164 から S.L.C. へ)。

Materials

100 mm Tissue Culture Plates Corning Falcon 353003
3, 3'- Diaminobensidine (DAB) Vector Laboratories SK-400
6- well plates Corning Costar 3516
Acetic Acid Fisher Scientific A38-212
Alexa Fluor 488 Secondary (Goat Anti-Mouse) Invitrogen A11029
Alexa Fluor 568 Secondary (Goat Anti-Mouse) Invitrogen A21043 or A11004
Alexa Fluor 568 Secondary (Goat Anti-Rabbit) Invitrogen A11036
Ammonium Chloride (NH4Cl) Fisher Scientific A661-500
BCA Protein Assay Kit Thermo Scientific 23225
Bovine Serum Albumin Fisher Scientific BP1600-100
Caldesmon ABCAM  E89, ab32330
CD117 Cell Marque 117R-18-ASR
CD163 Leica NCL-L-CD163
CD31 ABCAM  ab29364
CD34 ABCAM  ab81289
CD86 ABCAM  ab53004
Cell Scraper Sarstedt 83.183
Cell Stripper Corning 25-056-CI
Circle Coverslip Fisher Scientific 12-545-100
Citrisolve Hybrid (d-limonene-based solvent) Decon Laboratories 5989-27-5
Critic Acid Fisher Scientific A104-500
Cytokeratin ABCAM  C-11, ab7753
Desmin Agilent Dako  clone D33 (M0760)
Diaminobensizdine (DAB) Solution Vector Laboratories SK-4100
DMEM Corning 15-013-CV
Eosin Y Thermo Scientific 7111
Ethanol (200 Proof) Decon Laboratories 2716
Fetal Calf Serum Omega Scientific FB-01
Forksolin Sigma-Aldrich F6886
Glycerol Sigma-Aldrich G6279
Hank's Balanced Salt Solution (HBSS) Corning 21-022-CV
Harris Hematoxylin Fisherbrand 245-677
Hemacytometer Brightline-Hauser Scientific 1490
Hydrochloric Acid Fisher Scientific A144-212
Hydrogen Peroxide Fisher Scientific 327-500
Iba1 Wako Chemicals 019-19741
ImmPRESS HRP (Peroxidase) Polymer Kit ,Mouse on Mouse Vector Laboratories MP-2400
ImmPRESS HRP (Peroxidase) Polymer Kit, Horse Anti-Rabbit Vector Laboratories MP-7401
Incubator Thermo Scientific Heracell 240i CO2 incubator
Isoflurane Piramal NDC 66794-017-25
Isopropanol Fisher Scientific A415
Ki-67 Cell Signaling  12202
Laminin Thermo Fisher Scientific 23017015
Liquid Nitrogen
MART1 ABCAM  M2-9E3, ab187369
Microtome
Nestin Millipore  Human: MAD5236 (10C2), Human:MAB353 (Rat-401)
Neuregulin 1 beta In house Made by S.L.C. (also available as 396-HB-050/CF from R&D Systems)
Neurofibromin Santa Cruz Biotechnology  sc-67
NOD.Cg-Prkdcscid Il2rgtm1Wjl/SzJ mice Jackson Laboratory 5557
Nonfat Dry Milk Walmart Great Value Brand
P0-GGFβ3 mice In house
Paraffin Wax Leica Paraplast 39601006
Parafilm M Sigma-Aldrich PM-999
Paraformaldehyde (4%) Thermo Scientific J19943-K2
Permount (Xylene Mounting Medium) Fisher Scientific SP15-100
pH Meter Mettler Toldedo Seven Excellence, 8603
Phosphate Buffered Saline (Dulbecco's) Corning 20-031-CV
PMEL ABCAM  EP4863(2), ab137078
Poly-L-Lysine Hydrobromide Sigma-Aldrich P5899-5MG
Portable Isoflurance Machine VetEquip Inhalation Anesthesia Systems
PVA-DABCO (Aqueous Mounting Medium) Millipore Sigma 10981100ML
Rice Cooker Beech Hamilton
S100B Agilent Dako  Z0311  (now GA504)
SMA Ventana Medical Systems  clone 1A4
Sodium Chloride Fisher Scientific S640
Sodium Citrate (Dihydrate) Fisher Scientific BP327-1
Sox10 ABCAM  ab212843
Steel histology mold
Superfrost Plus Microscope Slides Fisher Scientific 12-550-15
TCF4/TCFL2  Cell Signaling  (CH48H11) #2569
Tissue Cassette
Toluidine Blue ACROS Organics 348600050
Triton X-100 Fisher Scientific BP151-500
TRIzol Invitrogen 15596026
Trypsin Corning 25-051-31

References

  1. Carroll, S. L. Molecular mechanisms promoting the pathogenesis of Schwann cell neoplasms. Acta Neuropathologica. 123 (3), 321-348 (2012).
  2. Longo, J. F., Weber, S. M., Turner-Ivey, B. P., Carroll, S. L. Recent advances in the diagnosis and pathogenesis of neurofibromatosis type 1 (NF1)-associated peripheral nervous system neoplasms. Advances in Anatomic Pathology. 25 (5), 353-368 (2018).
  3. Longo, J. F., Carroll, S. L. The RASopathies: Biology, genetics and therapeutic options. Advances in Cancer Research. 153, 305-341 (2022).
  4. Boyd, K. P., Korf, B. R., Theos, A. Neurofibromatosis type 1. Journal of the American Academy of Dermatology. 61 (1), 1-16 (2009).
  5. Rad, E., Tee, A. R. Neurofibromatosis type 1: Fundamental insights into cell signalling and cancer. Seminars in Cell and Developmental Biology. 52, 39-46 (2016).
  6. Brannan, C. I., et al. Targeted disruption of the neurofibromatosis type-1 gene leads to developmental abnormalities in heart and various neural crest-derived tissues. Genes and Development. 8 (9), 1019-1029 (1994).
  7. Jacks, T., et al. Tumour predisposition in mice heterozygous for a targeted mutation in Nf1. Nature Genetics. 7 (3), 353-361 (1994).
  8. Zhu, Y., Ghosh, P., Charnay, P., Burns, D. K., Parada, L. F. Neurofibromas in NF1: Schwann cell origin and role of tumor environment. Science. 296 (5569), 920-922 (2002).
  9. Cichowski, K., et al. Mouse models of tumor development in neurofibromatosis type 1. Science. 286 (5447), 2172-2176 (1999).
  10. Joseph, N. M., et al. The loss of Nf1 transiently promotes self-renewal but not tumorigenesis by neural crest stem cells. Cancer Cell. 13 (2), 129-140 (2008).
  11. Rhodes, S. D., et al. Cdkn2a (Arf) loss drives NF1-associated atypical neurofibroma and malignant transformation. Human Molecular Genetics. 28 (16), 2752-2762 (2019).
  12. Chaney, K. E., et al. Cdkn2a loss in a model of neurofibroma demonstrates stepwise tumor progression to atypical neurofibroma and MPNST. Recherche en cancérologie. 80 (21), 4720-4730 (2020).
  13. Mohamad, T., Plante, C., Brosseau, J. P. Toward understanding the mechanisms of malignant peripheral nerve sheath tumor development. International Journal of Molecular Science. 22 (16), 8620 (2021).
  14. Somatilaka, B. N., Sadek, A., McKay, R. M., Le, L. Q. Malignant peripheral nerve sheath tumor: models, biology, and translation. Oncogene. 41 (17), 2405-2421 (2022).
  15. Keng, V. W., et al. Conditional inactivation of Pten with EGFR overexpression in Schwann cells models sporadic MPNST. Sarcoma. 2012, 620834 (2012).
  16. Miettinen, M. M., et al. Histopathologic evaluation of atypical neurofibromatous tumors and their transformation into malignant peripheral nerve sheath tumor in patients with neurofibromatosis 1-a consensus overview. Human Pathology. 67, 1-10 (2017).
  17. Lee, W., et al. PRC2 is recurrently inactivated through EED or SUZ12 loss in malignant peripheral nerve sheath tumors. Nature Genetics. 46 (11), 1227-1232 (2014).
  18. Zhang, M., et al. Somatic mutations of SUZ12 in malignant peripheral nerve sheath tumors. Nature Genetics. 46 (11), 1170-1172 (2014).
  19. Magallon-Lorenz, M., et al. Deep genomic analysis of malignant peripheral nerve sheath tumor cell lines challenges current malignant peripheral nerve sheath tumor diagnosis. iScience. 26 (2), 106096 (2023).
  20. Longo, J. F., et al. Establishment and genomic characterization of a sporadic malignant peripheral nerve sheath tumor cell line. Scientific Reports. 11 (1), 5690 (2021).
  21. Huijbregts, R. P., Roth, K. A., Schmidt, R. E., Carroll, S. L. Hypertrophic neuropathies and malignant peripheral nerve sheath tumors in transgenic mice overexpressing glial growth factor beta3 in myelinating Schwann cells. Journal of Neuroscience. 23 (19), 7269-7280 (2003).
  22. Stonecypher, M. S., Byer, S. J., Grizzle, W. E., Carroll, S. L. Activation of the neuregulin-1/ErbB signaling pathway promotes the proliferation of neoplastic Schwann cells in human malignant peripheral nerve sheath tumors. Oncogene. 24 (36), 5589-5605 (2005).
  23. Kohli, L., et al. The pan erbB inhibitor PD168393 enhances lysosomal dysfunction-induced apoptotic death in malignant peripheral nerve sheath tumor cells. Neuro-Oncology. 14 (3), 266-277 (2012).
  24. Eckert, J. M., Byer, S. J., Clodfelder-Miller, B. J., Carroll, S. L. Neuregulin-1 beta and neuregulin-1 alpha differentially affect the migration and invasion of malignant peripheral nerve sheath tumor cells. Glia. 57 (14), 1501-1520 (2009).
  25. Kazmi, S. J., et al. Transgenic mice overexpressing neuregulin-1 model neurofibroma-malignant peripheral nerve sheath tumor progression and implicate specific chromosomal copy number variations in tumorigenesis. American Journal of Pathology. 182 (3), 646-667 (2013).
  26. Brosius, S. N., et al. Neuregulin-1 overexpression and Trp53 haploinsufficiency cooperatively promote de novo malignant peripheral nerve sheath tumor pathogenesis. Acta Neuropathologica. 127 (4), 573-591 (2014).
  27. Vogel, K. S., et al. Mouse tumor model for neurofibromatosis type 1. Science. 286 (5447), 2176-2179 (1999).
  28. Reuss, D. E., et al., Louis, D. N., et al. Malignant peripheral nerve sheath tumour (MPNST). WHO Classification of Tumours of the Central Nervous System, Revised 4th Edition. , 226-229 (2016).
  29. Landuzzi, L., Ruzzi, F., Lollini, P. L., Scotlandi, K. Synovial sarcoma preclinical modeling: integrating transgenic mouse models and patient-derived models for translational research. Cancers. 15 (3), 588 (2023).
  30. Cohen, P. R., Rapini, R. P., Farhood, A. I. Expression of the human hematopoietic progenitor cell antigen CD34 in vascular and spindle cell tumors. Journal of Cutaneous Pathology. 20 (1), 15-20 (1993).
  31. Weiss, S. W., Nickoloff, B. J. CD-34 is expressed by a distinctive cell population in peripheral nerve, nerve sheath tumors, and related lesions. American Journal of Surgical Pathology. 17 (10), 1039-1045 (1993).
  32. Longo, J. F., Brosius, S. N., Carroll, S. L. Defining gene functions in tumorigenesis by ex vivo ablation of floxed alleles in malignant peripheral nerve sheath tumor cells. Journal of Visualized Experiments. (174), (2021).
  33. Hoffman, G. E., Murphy, K. J., Sita, L. V. The importance of titrating antibodies for immunocytochemical methods. Current Protocols in Neuroscience. 76, 2.12.1-2.12.37 (2016).
  34. Brossier, N. M., Carroll, S. L. Genetically engineered mouse models shed new light on the pathogenesis of neurofibromatosis type I-related neoplasms of the peripheral nervous system. Brain Research Bulletin. 88 (1), 58-71 (2012).

Play Video

Citer Cet Article
Jenkins, D. P., Turner-Ivey, B., Fromm Longo, J., Carroll, S. L. Identifying, Diagnosing, and Grading Malignant Peripheral Nerve Sheath Tumors in Genetically Engineered Mouse Models. J. Vis. Exp. (207), e65740, doi:10.3791/65740 (2024).

View Video