Förundersökningen bekräftar att subaraknoidalblödning (SAH) orsakar hjärnans pericytdöd. Utvärdering av pericytkontraktilitet efter SAH kräver differentiering mellan livskraftiga och icke-livskraftiga pericyter i hjärnan. Därför har en procedur utvecklats för att märka livskraftiga och icke-livskraftiga pericyter i hjärnan samtidigt, vilket underlättar observation med hjälp av ett högupplöst konfokalmikroskop.
Pericyter är viktiga väggceller som ligger i hjärnans mikrocirkulation och som är avgörande för att aktivt modulera hjärnans blodflöde via kontraktilitetsjusteringar. Konventionellt mäts deras kontraktilitet genom att observera morfologiska förändringar och närliggande kapillärdiameterförändringar under specifika omständigheter. Ändå äventyras postvävnadsfixering, utvärdering av vitalitet och påföljande pericytkontraktilitet hos avbildade hjärnpericyter. På samma sätt misslyckas genetisk märkning av hjärnpericyter med att skilja mellan livskraftiga och icke-livskraftiga pericyter, särskilt vid neurologiska tillstånd som subaraknoidalblödning (SAH), där vår preliminära undersökning bekräftar hjärnans pericytdöd. Ett tillförlitligt protokoll har tagits fram för att övervinna dessa begränsningar, vilket möjliggör samtidig fluorescerande märkning av både funktionella och icke-funktionella hjärnpericyter i hjärnsnitt. Denna märkningsmetod möjliggör högupplöst visualisering av konfokalmikroskop, samtidigt som den markerar hjärnskivans mikrovaskulatur. Detta innovativa protokoll erbjuder ett sätt att bedöma hjärnans pericytkontraktilitet, dess inverkan på kapillärdiametern och pericytstrukturen. Att undersöka hjärnans pericytkontraktilitet inom SAH-kontexten ger en insiktsfull förståelse för dess effekter på hjärnans mikrocirkulation.
Hjärnans pericyter, som kännetecknas av sina smala utbuktningar och utskjutande cellkroppar, omger mikrocirkulationen 1,2. Medan cerebral blodflödesförstärkning främst drivs av kapillärutvidgning, uppvisar mindre artärer långsammare dilatationshastigheter3. Pericytkontraktilitet utövar inflytande över kapillärdiameter och pericytmorfologi, vilket påverkar vaskulär dynamik4. Sammandragning av hjärnans pericyter leder till kapillärsammandragning, och i patologiska scenarier kan överdriven kontraktion hindra erytrocytflödet5. Olika faktorer, inklusive noradrenalin som frigörs från locus coeruleus, kan inducera hjärnans pericytsammandragning i kapillärerna6. Med en reglerande roll i cerebralt blodflöde uppvisar pericyter 20-HETE-syntes och fungerar som en syresensor under hyperoxi7. Oxidativ-nitrativ stressutlöst sammandragning av hjärnans pericyter påverkar kapillärernanegativt 5. Trots både in vivo- och ex vivo-undersökningar av hjärnans pericytkontraktion8 kvarstår begränsad kunskap om avbildning av livskraftiga och icke-livskraftiga hjärnpericyter i hjärnskivor.
Avgörande är att avbildning av hjärnpericyter efter vävnadsfixering äventyrar deras vitalitet och efterföljande bedömning av kontraktilitet. Dessutom, i scenarier som neurologiska störningar (t.ex. subaraknoidalblödning – SAH), misslyckas transgen märkning av hjärnpericyter med att skilja mellan livskraftiga och icke-livskraftiga pericyter, vilket bekräftas av vår preliminära SAH-inducerade hjärnpericytdödsstudie9.
För att övervinna dessa utmaningar använde vi TO-PRO-3 för att märka levande pericyter, medan avlidna var färgade med propidiumjodid (PI). Vi använde högupplösta konfokala avbildningstekniker för att visualisera livskraftiga och icke-livskraftiga hjärnpericyter i hjärnskivor samtidigt som skivaktiviteten bevarades under avbildningen. Denna artikel syftar till att presentera en reproducerbar metod för avbildning av livskraftiga och icke-livskraftiga hjärnpericyter i hjärnskivor, vilket fungerar som ett värdefullt verktyg för att undersöka effekten av hjärnpericyter på cerebral mikrocirkulation efter SAH.
Utvecklade är högupplösta konfokala avbildningstekniker för att visualisera vitala hjärnpericyter, icke-vitala hjärnpericyter och mikrovaskulaturen i hjärnskivor. I akuta hjärnskivor hos råttor innebär processen initial märkning av pericyter med TO-PRO-311, följt av mikrovaskulära endotelceller med IB412; Därefter utförs identifiering av avlidna pericyter med hjälp av PI. Detta protokoll är enkelt, reproducerbart och mycket tillämpligt för funktionell for…
The authors have nothing to disclose.
Studien finansierades av anslag från National Natural Science Foundation of China (81960226,81760223); Naturvetenskapliga stiftelsen i provinsen Yunnan (202001AS070045,202301AY070001-011)
6-well plate | ABC biochemistry | ABC703006 | RT |
Adobe Photoshop | Adobe | Adobe Illustrator CS6 16.0.0 | RT |
Aluminium foil | MIAOJIE | 225 mm x 273 mm | RT |
CaCl2·2H2O | Sigma-Aldrich | C3881 | RT |
Confocal imaging software | Nikon | NIS-Elements 4.10.00 | RT |
Confocal Laser Scanning Microscope | Nikon | N-SIM/C2si | RT |
Gas tank (5% CO2, 95% O2) | PENGYIDA | 40L | RT |
Glass Bottom Confocal Dishes | Beyotime | FCFC020-10pcs | RT |
Glucose | Sigma-Aldrich | G5767 | RT |
Glue | EVOBOND | KH-502 | RT |
Ice machine | XUEKE | IMS-20 | RT |
Image analysis software | National Institutes of Health | Image J | RT |
Inhalation anesthesia system | SCIENCE | QAF700 | RT |
Isolectin B 4-FITC | SIGMA | L2895–2MG | Store aliquots at –20 °C |
KCl | Sigma-Aldrich | 7447–40–7 | RT |
KH2PO4 | Sigma-Aldrich | P0662 | RT |
MgSO4 | Sigma-Aldrich | M7506 | RT |
NaCl | Sigma-Aldrich | 7647–14–5 | RT |
NaH2PO4·H2O | Sigma-Aldrich | 10049–21–5 | RT |
NaHCO3 | Sigma-Aldrich | S5761 | RT |
Pasteur pipette | NEST Biotechnology | 318314 | RT |
Peristaltic Pump | Scientific Industries Inc | Model 203 | RT |
Propidium (Iodide) | Med Chem Express | HY-D0815/CS-7538 | Store aliquots at –20 °C |
Stereotaxic apparatus | SCIENCE | QA | RT |
Syringe pump | Harvard PUMP | PUMP 11 ELITE Nanomite | RT |
Thermostatic water bath | OLABO | HH-2 | RT |
Vibrating microtome | Leica | VT1200 | RT |