Isolamento di cellule con informazioni morfologiche e spaziali da campioni di fibrosi sottomucosa orale mediante microdissezione a cattura laser
Summary
La microdissezione a cattura laser dei tessuti di fibrosi sottomucosa orale consente l’estrazione precisa di cellule dalle regioni istologiche di interesse per l’analisi di dati multi-omici con informazioni morfologiche e spaziali.
Abstract
La fibrosi sottomucosa orale (OSF) è un tipo comune di disturbo potenzialmente maligno nella cavità orale. L’atrofia dell’epitelio e la fibrosi della lamina propria e della sottomucosa si riscontrano spesso sui vetrini istopatologici. È stato proposto che la displasia epiteliale, l’atrofia epiteliale e i fibroblasti senescenti siano associati alla trasformazione maligna della OSF. Tuttavia, a causa dell’eterogeneità delle malattie orali potenzialmente maligne e del carcinoma orale a cellule squamose, è difficile identificare i meccanismi molecolari specifici della trasformazione maligna nella OSF. Qui, presentiamo un metodo per ottenere un piccolo numero di cellule epiteliali o mesenchimali che trasportano dati morfologici e informazioni spaziali mediante microdissezione a cattura laser su vetrini di tessuto fissati in formalina e inclusi in paraffina. Utilizzando un microscopio, possiamo catturare con precisione il tessuto epiteliale displastico o atrofico su microscala (~500 cellule) e il tessuto subepiteliale fibrotico. Le cellule estratte possono essere valutate mediante sequenziamento del genoma o del trascrittoma per acquisire dati genomici e trascrittomici con informazioni morfologiche e spaziali. Questo approccio rimuove l’eterogeneità del sequenziamento di tessuti OSF e l’interferenza causata dalle cellule in aree non lesionate, consentendo un’analisi spazio-omica precisa del tessuto OSF.
Introduction
La fibrosi sottomucosa orale (OSF) è una malattia cronica e insidiosa che si sviluppa principalmente nella mucosa vestibolare e provoca una limitazione dell’apertura della bocca1. Mentre l’OSF è una malattia multifattoriale, la masticazione della noce di areca o della noce di betel è la causa principale dell’OSF 2,3. A causa di questa abitudine geograficamente specifica, l’OSF è prevalentemente concentrata nelle popolazioni del sud-est e del sud dell’Asia3. Le caratteristiche istologiche comuni dell’OSF includono la deposizione anomala di collagene nel tessuto connettivo sotto l’epitelio della mucosa orale, la stenosi vascolare e l’occlusione1. Il tessuto epiteliale OSF può presentarsi con manifestazioni di atrofia o iperplasia e persino displasia se concomitante con leucoplachia orale 4,5.
L’OSF è definita dall’Organizzazione Mondiale della Sanità come una comune malattia orale potenzialmente maligna (OPMD) che presenta il potenziale per progredire verso il carcinoma orale a cellule squamose con un tasso di trasformazione maligna del 4%-6%6,7,8,9. Il meccanismo alla base della trasformazione maligna di OSF è complesso10. La crescita anormale dell’epitelio, inclusa la displasia e l’atrofia, aumenta il potenziale di cancerogenesi e i fibroblasti senescenti nello stroma possono essere coinvolti nella progressione maligna dell’OSF inducendo la transizione epiteliale-mesenchimale (EMT) attraverso le specie reattive dell’ossigeno (ROS) e altre molecole10.
Le tecnologie per le analisi spazio-omiche hanno generato dati multi-omici con informazioni morfologiche e spaziali che hanno fornito approfondimenti sui meccanismi del cancro11,12,13. Qui, presentiamo un protocollo per catturare popolazioni cellulari correlate alla morfologia da tessuti OSF inclusi in paraffina fissati in formalina mediante microdissezione laser. Le analisi multi-omiche di questi campioni possono superare le sfide dell’eterogeneità intratissutale e aumentare la comprensione della patologia molecolare e dei meccanismi di trasformazione maligna in OSF14.
Protocol
Representative Results
Discussion
Questo protocollo ha riportato una pipeline per catturare campioni di tessuto OSF con informazioni morfologiche e spaziali per ulteriori analisi spazio-omiche attraverso la microdissezione laser. Dai risultati rappresentativi, abbiamo identificato diversi modelli CNA tra vari campioni correlati alla morfologia.
L’OSF, un tipo di OPMD, è una condizione precancerosa comune del carcinoma orale a cellule squamose6. È stato riportato che l’instabilità genomica è associat…
Divulgations
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Questo lavoro è stato supportato da sovvenzioni di ricerca della National Nature Science Foundation of China (81671006, 81300894), CAMS Innovation Fund for Medical Sciences (2019-I2M-5-038), National clinical key discipline construction project (PKUSSNKP-202102), Innovation Fund for Outstanding Doctoral Candidate of Peking University Health Science Center (BMU2022BSS001).
Materials
| Adhesion microscope slides | CITOTEST | REF.188105 | |
| Div-haematoxylin | YiLi | 20230326 | |
| Eosin solution | BASO | BA4098 | |
| Ethanol | PEKING REAGENT | No.32061 | |
| Harris hematoxylin dye solution | YiLi | 20230326 | |
| Hot plate | LEICA | HI1220 | |
| Laser capture microdissection system | LEICA | LMD7 | Machine |
| Laser microdissection microsystem | LEICA | 8.2.3.7603 | Software |
| Micromount mounting medium | LEICA | REF.3801731 | |
| Microscope cover glass | CITOTEST | REF.10212450C | |
| Microtome | LEICA | RM2235 | |
| PCR tubes | AXYGEN | 16421959 | |
| PEN-membrane slides | LEICA | No.11505158 | |
| Re-blue solution | YiLi | 20230326 | |
| Ultrapure distilled water | Invitrogen | REF.10977-015 | |
| Xylene | PEKING REAGENT | No.33535 |
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