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Article de méthode

Obtention de cryosections de haute qualité d’œil de lapin entier

3.2K vues

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DOI :

10.3791/66115

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10 novembre 2023

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Dans cet article

Résumé

Ce protocole décrit une méthode fiable pour obtenir des cryosections de haute qualité d’yeux de lapin entiers. Il détaille les procédures de dissection, de fixation, d’intégration et de sectionnement de l’œil de lapin, qui peuvent être facilement adaptées pour être utilisées dans toute étude utilisant l’immunohistochimie dans des yeux plus grands.

Résumé

Ce protocole décrit comment obtenir des cryosections rétiniennes de haute qualité chez des animaux de grande taille, tels que les lapins. Après l’énucléation, l’œil est brièvement immergé dans le fixateur. Ensuite, la cornée et l’iris sont retirés et l’œil est laissé toute la nuit pour une fixation supplémentaire à 4 °C. Après la fixation, l’objectif est retiré. L’œil est ensuite placé dans un cryomoule et rempli d’un milieu d’enrobage. En retirant le cristallin, le milieu d’enrobage a un meilleur accès au vitré et conduit à une meilleure stabilité rétinienne. Il est important que l’œil soit incubé dans un milieu d’enrobage pendant la nuit pour permettre une infiltration complète dans tout le vitré. Après une nuit d’incubation, l’œil est congelé sur de la glace sèche et sectionné. Des coupes rétiniennes entières peuvent être obtenues pour une utilisation en immunohistochimie. Des protocoles de coloration standard peuvent être utilisés pour étudier la localisation des antigènes dans le tissu rétinien. Le respect de ce protocole permet d’obtenir des cryosections rétiniennes de haute qualité qui peuvent être utilisées dans toute expérience utilisant l’immunohistochimie.

Introduction

La rétine est composée de plusieurs couches de cellules spécialisées dans l’œil qui, ensemble, convertissent la lumière en signaux neuronaux. Parce que la rétine joue un rôle essentiel dans la vision, la compréhension de sa structure et de sa fonction peut fournir des informations précieuses sur certaines des causes les plus courantes de perte de vision, telles que la dégénérescence maculaire et la rétinopathie diabétique, entre autres.

Les lapins servent de modèle animal pratique dans la recherche rétinienne car ils offrent plusieurs avantages par rapport aux autres modèles. L’anatomie des yeux de lapin est relativement similaire à celle d....

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Protocole

Toutes les procédures ont été effectuées conformément et approuvées par le Comité institutionnel de protection et d’utilisation des animaux (IACUC) de l’Université de Californie du Sud. Quatorze (n = 14) lapins à ceinture hollandaise âgés de 4 à 6 mois ont été utilisés dans l’élaboration de ce protocole. Des animaux mâles et femelles ont été utilisés. Tous les animaux pesaient entre 2,0 et 2,5 kg. Tous les animaux étaient logés individuellement. Une liste des matériaux et équipements recommandés se trouve dans la Table des matériaux.

1. Préparation

  1. Préparation fixative.
    1. Préparez du paraform....

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Résultats

Après le traitement des tissus, un protocole d’immunofluorescence standard peut être utilisé pour étudier un certain nombre de processus biologiques dans la rétine. Les figures 3A-C illustrent des images de fluorescence représentatives d’une coupe de rétine obtenues par microscopie confocale. La coupe rétinienne a été immuno-colorée selon un protocole décrit précédemment12.

Les coupes rétiniennes représenta.......

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Discussion

Avant de mettre en œuvre le protocole ci-dessus, nous rencontrions constamment des difficultés avec le traitement tissulaire des yeux de lapin pour l’IHC. Nous avions adapté plusieurs protocoles à partir des yeux de petits animaux tels que les souris, mais nous avons constaté que ceux-ci entraînaient une fixation inadéquate et des difficultés de section des tissus. Il y a plusieurs considérations importantes qui permettent d’obtenir des sections cohérentes et de haute qualité de la rétine du lapin.

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à déclarer.

Remerciements

Merci à Rosanna Calderon, Dominic Shayler et Rosa Sierra pour leurs conseils techniques. Cette étude a été financée en partie par une subvention sans restriction au Département d’ophtalmologie de l’USC Keck School of Medicine de la Recherche sur la prévention de la cécité (AN), du NIH K08EY030924 (AN), de la Las Madrinas Endowment in Experimental Therapeutics for Ophthalmology (AN), d’un prix de développement de carrière de la Recherche pour prévenir la cécité (AN), de la Fondation des Templiers (AN), et la Edward N. and Della L. Thome Memorial Foundation (AN, KG).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Boîte de culture de 100 mmCorning353025Utilisée pour la dissection (étapes 1.3, 3 et 5)
Tube de 50 mLGenesee Scientific28-106Pour la fixation et la cryoprotection (étape 1)
CryostatLeicaCM1850Pour la cryosection (étape 7)
Ciseaux courbesOutils de science fine91500-09Utilisé pour la dissection (étapes 1.3, 3 et 5)
DAPIFisher ScientificD3571Dilué 1:1 000 dans un tampon bloquant
Microscope de dissectionZeissStemi 2000-CUtilisé pour la dissection (étapes 1.3, 3 et 5)
Donkey anti-Goat 488Fisher ScientificA-11055Dilué 1:1 000 dans un tampon bloquant
Donkey anti-Mouse 555Fisher ScientificA-31570Dilué 1:1 000 dans un tampon
bloquantPinceOutils de Fine Science91150-20Utilisé pour la dissection (étapes 1.3, 3 et 5)
Couvercle de diapositive en verreVWR48404-453Pour la cryosection (étape 7)
Anti-SOX2R& D SystemsAF2018Dilué 1:100 dans un tampon de blocage
Lames de cryostat jetables à profil élevéLeica Microsystems Inc.14035838926Pour la cryosection (étape 7)
KimwipeFisher Scientific06-666-AUtilisé pour essuyer l’excès de PBS ou d’OCT (étapes 3 et 6)
Anti-RPE65 pour sourisNovus BioNB100-355SSDilué 1:100 dans un tampon bloquant
OmniPur SucroseMillipore167117Utilisé pour cryoprotecteur (étape 1.2)
Solution de paraformaldéhyde à 20 %Microscopie électronique Sciences15713Utilisé comme fixateur de tissus (dilué à 4 % à l’étape 1.1)
Moule d’enrobage jetable Peel-A-Away (22 x 22 x 20 mm de profondeur)Polysciences, Inc.18646AUtilisé comme moule d’enrobage (étape 6)
Solution saline tamponnée au phosphate, 1xCorning21-030-CVUtilisé dans la préparation du fixateur (étape 1.1) et du cryoprotecteur (étape 1.2)
Lame de scalpel n° 15Plume08-916-5DUtilisé pour la dissection (étapes 1.3, 3 et 5)
Lames de microscope Superfrost PlusFisher Scientific12-550-15Pour la cryosection (étape 7)
Tissue-Tek O.C.T. CompoundSakura4583Utilisé comme support d’enrobage (étape 6)

Références

  1. Peiffer, R. L. Jr, Pohm-Thorsen, L., Corcoran, K. Chapter 19-Models in ophthalmology and vision research. American College of Laboratory Animal Medicine, The Biology of the Laboratory Rabbit. Manning, P. J., Ringler, D. H., Newcomer, C. E. , Academic Press. 409-433 (1994).
  2. Davis, F. A. T....

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Réimpressions et autorisations

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