Summary

माउस आंख के पूर्वकाल कक्ष में उत्कीर्ण यकृत स्फेरॉइड की विवो इमेजिंग में

Published: March 29, 2024
doi:

Summary

यहां, हम एक मंच का वर्णन करते हैं जो माउस आंख के पूर्वकाल कक्ष में उत्कीर्ण यकृत स्फेरॉइड के विवो इमेजिंग में गैर-इनवेसिव की अनुमति देता है। वर्कफ़्लो प्राथमिक यकृत कोशिकाओं से स्फेरॉइड उत्पन्न करने से लेकर माउस की आंख में प्रत्यारोपण तक और कॉन्फोकल माइक्रोस्कोपी द्वारा सेलुलर रिज़ॉल्यूशन पर विवो इमेजिंग में फैला है।

Abstract

स्तनधारियों में जिगर के जैव चिकित्सा अध्ययन सेलुलर संकल्प पर विवो noninvasive अनुदैर्ध्य इमेजिंग में के लिए तरीकों की कमी से बाधा उत्पन्न कर रहे हैं. अब तक, स्वस्थानी में यकृत की ऑप्टिकल इमेजिंग इंट्राविटल इमेजिंग द्वारा संभव है, जो सेलुलर स्तर पर उच्च-रिज़ॉल्यूशन इमेजिंग प्रदान करता है, लेकिन कई बार प्रदर्शन नहीं किया जा सकता है और इसलिए, एक ही जानवर में अनुदैर्ध्य रूप से। नॉनविनसिव इमेजिंग विधियों, जैसे कि बायोलुमिनेसेंस, एक ही जानवर पर बार-बार इमेजिंग सत्र की अनुमति देते हैं लेकिन सेल रिज़ॉल्यूशन प्राप्त नहीं करते हैं। इस पद्धति अंतर को संबोधित करने के लिए, हम माउस आंख के पूर्वकाल कक्ष में उत्कीर्ण जिगर spheroids के विवो इमेजिंग में noninvasive के लिए एक मंच विकसित किया है. इस अध्ययन में वर्णित कार्यप्रवाह में, प्राथमिक माउस जिगर spheroids इन विट्रो में उत्पन्न होते हैं और प्राप्तकर्ता चूहों की आंख के पूर्वकाल कक्ष में प्रत्यारोपित, जहां वे परितारिका पर engraft. कॉर्निया एक प्राकृतिक शरीर की खिड़की के रूप में कार्य करता है जिसके माध्यम से हम पारंपरिक कॉन्फोकल माइक्रोस्कोपी द्वारा उत्कीर्ण स्फेरॉइड की छवि बना सकते हैं। स्फेरॉइड आंखों में महीनों तक जीवित रहते हैं, जिसके दौरान कोशिकाओं का स्वास्थ्य और बीमारी के संदर्भ में अध्ययन किया जा सकता है, साथ ही उचित फ्लोरोसेंट जांच का उपयोग करके बार-बार इमेजिंग सत्रों पर विभिन्न उत्तेजनाओं के जवाब में निगरानी की जा सकती है। इस प्रोटोकॉल में, हम इस इमेजिंग सिस्टम को लागू करने के लिए आवश्यक कदमों का टूटना प्रदान करते हैं और समझाते हैं कि इसकी क्षमता का सबसे अच्छा उपयोग कैसे करें।

Introduction

स्वास्थ्य और बीमारी के दौरान स्तनधारियों में यकृत समारोह की निगरानी विवो इमेजिंग तकनीकों में उच्च-रिज़ॉल्यूशन, गैर-इनवेसिव की कमी से सीमित है। इस अंग का दृश्य इसके दुर्गम स्थान से बाधित है, और सेलुलर प्रक्रियाओं को एक साथ जोड़ने के लिए, विवो अध्ययनों में अलग-अलग समय बिंदुओं पर जानवरों के बलिदान पर भरोसा करते हैं। इस इमेजिंग सीमा को दरकिनार करने के लिए, बहुत काम इन विट्रो मॉडल पर निर्भर करता है, जिसमें यकृत की तरह microtissues कल्पना कर रहे हैं और एक नियंत्रित वातावरण में अध्ययन कर रहे हैं.

हाल के वर्षों में, त्रि-आयामी संस्कृति प्रणालियों का विकास, जैसे कि यकृत स्फेरॉइड्स, ने यकृत अनुसंधान को सहायता और उन्नत किया है। जिगर spheroids बहुकोशिकीय समुच्चय है कि माइक्रोएन्वायरमेंट और एक निश्चित सीमा तक जिगर के ऊतकों की जटिल सेल सेल बातचीत की नकल कर रहे हैं1 और पारंपरिक मोनोलेयर संस्कृतियों 2,3 पर स्पष्ट लाभ प्रदान करते हैं. जिगर spheroids भी विभिन्न जिगर रोगों 4,5,6 के लिए मॉडल के रूप में प्रयोग किया जाता है और रोग तंत्र को समझने के लिए महत्वपूर्ण भूमिका निभाई है. फिर भी, इन विट्रो जिगर मॉडल में वर्तमान की प्रमुख सीमाएं विवो परिवेश में एक शारीरिक की कमी और संस्कृति में सीमित उपयोग समय (लगभग 20 दिन)3हैं। लिवर स्फेरॉइड को पहले विवो में विभिन्न साइटों पर प्रत्यारोपित किया गया है, जैसे कि किडनी कैप्सूल7 या इंट्रापेरिटोनली8 के तहत, जो ऑप्टिकल इमेजिंग के लिए सुलभ नहीं हैं। इंट्रावाइटल लिवर इमेजिंग एक अत्याधुनिक तकनीक है जो सेल-रिज़ॉल्यूशन रीयल-टाइम इमेजिंग की पेशकश करती है। वर्तमान में, यह सीटू यकृत इमेजिंग में केवल बाहरी अंग पर संभव है, जो अत्यधिक आक्रामक और अक्सर टर्मिनल9 है। यद्यपि पेट की खिड़की की फिटिंग बार-बार यकृत इमेजिंग सत्रों की अनुमति देगी, लेकिन इसमें जटिल सर्जरी और बाद की देखभाल शामिल है।

सेलुलर संकल्प पर अनुदैर्ध्य निगरानी प्रदर्शन करने के लिए, हम चूहों की आंख (एसीई) के पूर्वकाल कक्ष में जिगर spheroids के प्रत्यारोपण का पता लगाया, जहां जिगर की तरह ऊतक एक शारीरिक मील का पत्थर में engrafted है, शरीर उत्तेजनाओं से जुड़ा हुआ है, और ऑप्टिकल इमेजिंग के लिए सुलभ. कॉर्निया एक पारदर्शी ऊतक है और एक खिड़की के रूप में कार्य करता है जिसके माध्यम से आईरिस पर उत्कीर्ण सूक्ष्म ऊतकों को गैर-आक्रामक और अनुदैर्ध्य रूप से कॉन्फोकल माइक्रोस्कोपी द्वारा चित्रित किया जा सकता है। यहाँ, हम जिगरspheroids 10 के विवो इमेजिंग में के लिए इस नव विकसित मंच का एक कार्यप्रवाह प्रस्तुत करते हैं. यह प्रोटोकॉल इसके कार्यान्वयन के लिए एक कदम-दर-चरण मार्गदर्शिका है, (1) प्राथमिक माउस यकृत कोशिकाओं के निष्कर्षण और यकृत स्फेरॉइड के इन विट्रो गठन में, (2) प्राप्तकर्ता चूहों के एसीई में यकृत स्फेरॉइड का प्रत्यारोपण, और (3) संवेदनाहारी चूहों में उत्कीर्ण यकृत स्फेरॉइड के विवो इमेजिंग में। इसके अलावा, हम इस इमेजिंग प्लेटफॉर्म की कुछ संभावनाओं और अनुप्रयोगों का प्रदर्शन करेंगे।

Protocol

जानवरों पर की गई सभी प्रक्रियाओं को करोलिंस्का इंस्टीट्यूट में पशु प्रयोग आचार समिति द्वारा अनुमोदित किया गया था। 1. प्राथमिक माउस जिगर कोशिकाओं के निष्कर्षण और इन विट्रो में जिगर spheroids की पीढ़ी तैयारीकैन्युलेशन, यकृत लकीर, और प्राथमिक यकृत कोशिकाओं के अलगाव के लिए, सीरोलॉजिकल पिपेट और अपकेंद्रित्र ट्यूबों (चित्रा 1ए)के अलावा निम्नलिखित बाँझ या एकल-उपयोग सामग्री तैयार करें: क्रमिक वृत्तों में सिकुड़नेवाला पंप, स्विंग-बाल्टी अपकेंद्रित्र, शोषक पैड, विच्छेदन चटाई, दो घुमावदार-टिप संदंश, सर्जिकल कैंची, एक 27 जी तितली सुई, एक 70 माइक्रोन सेल छलनी, एक सेल लिफ्टर, एक 100 मिमी पेट्री डिश, सेल-गिनती कक्ष, और 96-अच्छी तरह से, यू-आकार-नीचे माइक्रोप्लेट्स। तालिका 1में सूचीबद्ध के रूप में जिगर छिड़काव, प्राथमिक जिगर कोशिकाओं के अलगाव, और जिगर spheroids की पीढ़ी में इस्तेमाल समाधान तैयार करें.नोट: पाचन बफर और ढाल समाधान ताजा तैयार किया जाना चाहिए। एक क्रमिक वृत्तों में सिकुड़नेवाला पंप से मिलकर छिड़काव प्रणाली स्थापित करें, जो 42 डिग्री सेल्सियस पानी के स्नान से यकृत (चित्रा 1 ए) तक समाधान आयोजित करता है। पानी के स्नान का उच्च तापमान यह सुनिश्चित करता है कि बफर 37 डिग्री सेल्सियस के इष्टतम तापमान पर यकृत तक पहुंचें। ट्यूब की लंबाई और कमरे के तापमान (आरटी) के आधार पर इसे अनुकूलित करें। कैनुलेशन के लिए, ट्यूब के अंत में 27 ग्राम तितली सुई फिट करें। 4 डिग्री सेल्सियस पर अंतिम अलगाव चरणों में इस्तेमाल चढ़ाना मीडिया रखें. प्रक्रिया50 एमएल अपकेंद्रित्र ट्यूबों में 42 डिग्री सेल्सियस पानी के स्नान में निम्नलिखित समाधानों को प्री-हीट करें: पीबीएस के 40 एमएल, छिड़काव बफर के 20 एमएल, और पाचन बफर के 12 एमएल। पंप ट्यूबों को साफ और गर्म करने के लिए, पूर्व-गर्म पीबीएस के लगभग 20 एमएल प्रसारित करें। छिड़काव बफर के लिए टयूबिंग बदलें, ट्यूब और तितली सुई प्रधानमंत्री, और 4 एमएल / मिनट के लिए प्रवाह दर सेट. प्रोटोकॉल भर में बफर परिवर्तन के दौरान टयूबिंग में कोई बुलबुले सुनिश्चित करें. गर्भाशय ग्रीवा अव्यवस्था द्वारा माउस Euthanize और विदारक बोर्ड के लिए अंगों को ठीक करने के लिए सुइयों का उपयोग करें. 70% इथेनॉल के साथ पेट फर गीला और पाचन अंगों तक पहुँचने के लिए यह काटना. पोर्टल शिरा और अवर वेना कावा(चित्रा 1बी)का पर्दाफाश करने के लिए आंतों को दाईं ओर ले जाएं। एक क्षैतिज स्थिति में सुई के साथ इसकी लंबाई के लगभग आधे रास्ते पर वेना कावा को कैनुलेट करें, सुनिश्चित करें कि यह स्थिर है, और पंप शुरू करें। जिगर फुलाना शुरू होता है, या सफेद डॉट्स करीब पालियों में दिखाई देते हैं, रक्त और छिड़काव बफर बाहर नाली की अनुमति देने के लिए पोर्टल नस में कटौती. लीवर को तुरंत ब्लैंचिंग शुरू कर देनी चाहिए। 5 एस अंतराल पर पोर्टल नस दबाना करने के लिए घुमावदार संदंश का उपयोग समाशोधन को प्रोत्साहित करें. दोहराएँ कदम 1.2.9 जब जिगर पीला और रक्त (छिड़काव बफर के लगभग 15-20 एमएल) की मंजूरी दे दी है. पाचन बफर के लिए टयूबिंग बदलने के लिए क्रमिक वृत्तों में सिकुड़नेवाला पंप बंद करो और पंप पुनः आरंभ. जब पाचन बफर यकृत तक पहुंचता है, तो प्रवाह दर को 2.5 एमएल / मिनट तक कम करें।नोट: पाचन बफर में फिनोल लाल यकृत में इसके आगमन को भेदभाव करने की अनुमति देता है और उपचार के दौरान पंप मापदंडों के समायोजन को सक्षम बनाता है। बफर को सभी यकृत पालियों तक पहुंचने और उचित पाचन सुनिश्चित करने के लिए प्रोत्साहित करने के लिए, चरण 1.2.9 को कई बार दोहराएं। क्रमिक वृत्तों में सिकुड़नेवाला पंप के प्रवाह को बंद करो जब पाचन बफर समाप्त हो जाता है या जिगर पर्याप्त रूप से पच जाता है।नोट: पाचन की डिग्री नेत्रहीन संदंश के साथ जिगर पालियों चुटकी और ऊतक पर छोटे निशान दिखाई देते हैं अगर जाँच द्वारा नजर रखी जा सकती है. लीवर भी कमजोर हो जाएगा। जिगर निकालने के लिए, पेट की गुहा के भीतर यकृत स्नायुबंधन और कनेक्शन काट लें, इसे पूरी तरह से हटाने का लक्ष्य रखें, और इसे पेट्री डिश में रखें जिसमें 10 एमएल ठंडा चढ़ाना माध्यम(तालिका 1)हो। पित्ताशय की थैली को हटाने के बाद, संदंश का उपयोग कर पालियों पर छोटे चुटकी बनाने, हल्के से यकृत कैप्सूल फाड़. पकवान में जिगर मिलाते हुए, माध्यम में बाहर डालने का कार्य कोशिकाओं का निरीक्षण. संदंश के साथ जिगर स्थिर पकड़े, धीरे कोशिकाओं को रिलीज करने के लिए पालियों के साथ सेल लिफ्टर खींचें.नोट: सही इंटरलोबुलर पाचन मीडिया में सेल निलंबन का कारण बनेगा, ऊतक टुकड़े नहीं। एक सीरोलॉजिकल पिपेट का उपयोग करके, पेट्री डिश से सेल निलंबन इकट्ठा करें और 50 एमएल अपकेंद्रित्र ट्यूब पर रखे 70 माइक्रोन सेल स्ट्रेनर के माध्यम से फ़िल्टर करें। पचा जिगर कोशिकाओं के पकवान धोने के लिए और उन्हें फिल्टर करने के लिए स्थानांतरित ताजा चढ़ाना मीडिया का प्रयोग करें. कोशिकाओं को गोली देने के लिए 4 डिग्री सेल्सियस पर 5 मिन के लिए 50 x ग्राम पर अपकेंद्रित्र। सतह पर तैरनेवाला निकालें, सेल गोली को कवर करने के लिए लगभग 1 एमएल छोड़कर, कोशिकाओं को फिर से निलंबित करने के लिए ट्यूब को घुमाएं, और फिर धीरे-धीरे ठंड चढ़ाना माध्यम के 10 एमएल जोड़ें। सेल निलंबन के लिए ढाल समाधान के 10 एमएल जोड़ें और धीरे ट्यूब 10 बार पलटना. 4 डिग्री सेल्सियस पर 10 मिनट के लिए 200 x ग्राम पर अपकेंद्रित्र। गोली में हेपेटोसाइट्स के लिए समृद्ध व्यवहार्य यकृत कोशिकाएं होती हैं, जबकि सतह पर तैरनेवाला में मृत कोशिकाएं और मलबे होते हैं। एक सीरोलॉजिकल विंदुक का उपयोग करके सतह पर तैरनेवाला त्यागें, लगभग 1 एमएल छोड़कर, और कोमल घूमता द्वारा गोली को फिर से निलंबित करें। ढाल समाधान को धोने के लिए 4 डिग्री सेल्सियस पर 5 मिन के लिए सेल निलंबन और 50 x ग्राम पर ठंड चढ़ाना मध्यम के 20 एमएल जोड़ें। सतह पर तैरनेवाला निकालें, गोली के ऊपर लगभग 1 एमएल छोड़कर, और ठंड चढ़ाना माध्यम के 20 एमएल में कोशिकाओं को फिर से निलंबित करें।नोट: यहां, सेल गोली को कॉम्पैक्ट किया जा सकता है, इसलिए यदि आवश्यक हो, तो कोशिकाओं को धीरे से अलग करने के लिए 10 एमएल सीरोलॉजिकल पिपेट का उपयोग करें। मैन्युअल रूप से सेल नंबर और व्यवहार्यता एक सेल गिनती कक्ष और Trypan ब्लू का उपयोग कर निर्धारित करें.नोट: हेपेटोसाइट कोशिकाएं ट्यूब में जल्दी से अवक्षेपित हो जाएंगी; उन्हें फिर से निलंबित करने के लिए धीरे ट्यूब को कुछ बार उल्टा करें। 1200 कोशिकाओं पर चढ़ाना माध्यम के 200 माइक्रोन/अच्छी तरह से यकृत कोशिकाओं को 96-अच्छी तरह से अल्ट्रा-कम पालन प्लेटों में बीज दें।नोट: प्रति अच्छी तरह से मीडिया की इष्टतम मात्रा 200 माइक्रोन है; हालांकि, 100 माइक्रोन/वेल में कोशिकाओं को बीज देना संभव है। कुओं के केंद्र में कोशिकाओं को इकट्ठा करने के लिए 3 मिनट के लिए 200 x ग्राम पर प्लेटें स्पिन करें। कोशिकाओं (37 डिग्री सेल्सियस, 5% सीओ2) को इनक्यूबेट करें और उन्हें स्वाभाविक रूप से 5 दिनों (चित्रा 1सी) के लिए स्फेरॉइड बनाने के लिए छोड़ दें। 5 दिन, ध्यान से अच्छी तरह से मीडिया के आधे हटा दें और इसे सीरम मुक्त रखरखाव मीडिया (तालिका 1) के साथ बदलें। इस चरण को हर 48 घंटे में 10 दिन तक दोहराएं, जब लीवर स्फेरॉइड प्रत्यारोपित होने के लिए तैयार हो जाते हैं।नोट: सुसंस्कृत जिगर spheroids में एक कैप्सूल की तरह संरचना के गठन अच्छा एकत्रीकरण और व्यवहार्यता से पता चलता है. 2. आंख के पूर्वकाल कक्ष (एसीई) में यकृत स्फेरॉइड का प्रत्यारोपण तैयारीएसीई में यकृत स्फेरॉइड के प्रत्यारोपण के लिए, निम्नलिखित संसाधनों (चित्रा 2ए) की व्यवस्था करना सुनिश्चित करें: स्टीरियोमाइक्रोस्कोप, आइसोफ्लुरेन संज्ञाहरण इकाई, प्रेरण कक्ष, आइसोफ्लुरेन, हीटिंग पैड, कस्टम-निर्मित धातु बेस प्लेट, माउस हेड-धारक और गैस मास्क, ठोस सार्वभौमिक संयुक्त से जुड़े संदंश, हैमिल्टन 500 माइक्रोन थ्रेडेड सवार सिरिंज, सिलिकॉन, पॉलीथीन और पंप टयूबिंग, कस्टम-निर्मित कुंद ग्लास प्रवेशनी या 24 जी कैथेटर, इथेनॉल 70%, बाँझ खारा, बाँझ 23 जी सुई, आंख मरहम (तरल पैराफिन और वैसलीन 1: 1 अनुपात में), डिस्पोजेबल 1 एमएल सिरिंज, और सेल निलंबन पकवान 35 मिमी। 70% इथेनॉल और खारा पारित करके हैमिल्टन सिरिंज, टयूबिंग और प्रवेशनी को साफ करें। खारा के साथ हैमिल्टन सिरिंज, टयूबिंग, और कांच प्रवेशनी भरें और टेप (चित्रा 2 ए) के साथ एक क्षैतिज स्थिति में बेंच को हैमिल्टन सिरिंज को ठीक करें। एक कस्टम-निर्मित ब्लंट ग्लास कैनुला का उपयोग करें।स्फेरॉइड की आकांक्षा की अनुमति देने के लिए >300 माइक्रोन के आंतरिक व्यास के लिए दोहरे चरण माइक्रोपिपेट पुलर का उपयोग करके एक बोरोसिलिकेट ग्लास केशिका को बढ़ाएं। बेवल और एक microelectrode beveler का उपयोग टिप कुंद और किनारों नरम करने के लिए कुछ सेकंड के लिए एक लौ के लिए प्रवेशनी टिप बेनकाब.नोट: माइक्रोइलेक्ट्रोड बेवेलर में एक घूर्णन सैंडिंग पत्थर होता है जो मैन्युअल रूप से संचालित होता है; इसलिए, विशिष्ट सेटिंग्स गैर-लागू हैं। वैकल्पिक रूप से, एक 24 जी कैथेटर(चित्रा 2बी)के प्लास्टिक हिस्से का उपयोग कर एक प्रवेशनी का निर्माण. संज्ञाहरण isoflurane इकाई तैयार करें और 37 डिग्री सेल्सियस के लिए हीटिंग पैड गर्म. एक पाश है, जो आंख को स्थिर करने में मदद करता है बनाने के लिए पॉलीथीन टयूबिंग का एक टुकड़ा के साथ ठोस सार्वभौमिक संयुक्त से जुड़े संदंश की युक्तियों को कवर. एक विंदुक और 200 माइक्रोन टिप का उपयोग कर रखरखाव मीडिया के साथ एक 35 मिमी सेल निलंबन पकवान में 96 अच्छी तरह से थाली से जिगर spheroids स्थानांतरण. प्रक्रियाप्रेरण कक्ष में माउस को 2.5% आइसोफ्लुरेन और 280 एमएल/मिनट हवा की खुराक का उपयोग करके एनेस्थेटाइज करें। जब माउस बेहोश है, संज्ञाहरण 1.8% isoflurane और 280 एमएल / मिनट हवा के लिए संज्ञाहरण कम, सिर धारक संज्ञाहरण ट्यूब कनेक्ट, और जल्दी से हीटिंग पैड पर पशु हस्तांतरण, सिर धारक के अंदर नाक स्थिति. शिकंजा के साथ सिर को स्थिर करें, धीरे से सॉकेट से आंख को पॉप करें और इसे संदंश के साथ सुरक्षित करें और सूखने से रोकने के लिए दोनों आंखों पर खारा की एक बूंद रखें। स्टीरियोस्कोप के तहत, हैमिल्टन सिरिंज का उपयोग महाप्राण और प्रवेशनी की नोक में जिगर spheroids इकट्ठा करने के लिए और उन्हें एक साफ सतह पर क्षैतिज आराम करने के लिए छोड़ दें.नोट: जिगर spheroids के साथ मीडिया महाप्राण उन्हें प्रवेशनी दीवारों से चिपके से रोकने में मदद करता है. ध्यान से एक 23 जी सुई का उपयोग कॉर्निया पंचर और एक ऊतक के साथ रिसना जलीय हास्य सूखी. यदि आवश्यक हो, चीरा व्यापक बनाने के लिए, ध्यान से कॉर्निया टुकड़ा करने के लिए सुई बग़ल में स्लाइड.नोट: कॉर्नियल पंचर करने के लिए एक एकल-उपयोग बाँझ सुई का उपयोग किया जाता है, इसलिए चीरा से पहले कॉर्निया कीटाणुरहित नहीं होता है। सूखने से बचने के लिए आंखों में खारा बूंदों को जोड़ें। यकृत स्फेरॉइड युक्त प्रवेशनी लें और इसे लंबवत पकड़ें ताकि गोलाकार प्रवेशनी की नोक की ओर गुरुत्वाकर्षण कर सकें। धीरे छेद में प्रवेशनी डालें, और पुतली की ओर निर्देशित बेवल के साथ, धीरे-धीरे ऐस (चित्रा 2सी) में जिगर spheroids बाहर निकालने के लिए हैमिल्टन सिरिंज का उपयोग करें.नोट: प्रवेशनी को हटाने से पहले, आंख के अंदर और बाहर तरल दबाव के लिए कुछ सेकंड प्रतीक्षा करने के लिए समायोजित करने और आंख से वापस भागने वाले स्फेरॉइड से बचने की सिफारिश की जाती है। कॉर्निया के बाहर से, पुतली के चारों ओर और धीरे प्रवेशनी (चित्रा 2सी) की नोक के साथ कॉर्निया prodding द्वारा चीरा से दूर स्थिति. जिगर spheroids संदंश से आंख जारी करने से पहले परितारिका पर बसने के लिए ~ 5-10 मिनट रुको. संचालित आंख पर वैसलीन आई मरहम लगाएं, जो कॉर्निया को चिकनाई और ठीक करने में मदद करता है। यदि वांछित है, तो उसी विधि का पालन करते हुए दूसरी आंख पर काम करने के लिए आगे बढ़ें। माउस जागृति से पहले, उदाहरण के लिए, बाँझ खारा में 0.1 मिलीग्राम / किग्रा buprenorphine से बचने के लिए एक एनाल्जेसिक प्रशासन, चमड़े के नीचे प्रशासित.नोट: एनाल्जेसिक की केवल एक खुराक चूहों को प्रशासित किया गया था क्योंकि वे इस छोटी प्रक्रिया से जल्दी से ठीक हो गए थे और दर्द या परिवर्तित व्यवहार के कोई संकेत नहीं दिखाते थे। चूंकि यह प्रक्रिया बहुत जल्दी है (10 मिनट से कम समय लेना) और केवल मामूली असुविधा का कारण बनता है, चूहों को पशु को जगाने से पहले प्रशासित पोस्ट-ऑपरेटिव एनाल्जेसिया के अलावा कोई पोस्ट-ऑपरेटिव देखभाल की आवश्यकता नहीं होती है। 3. एसीई में उत्कीर्ण जिगर spheroids के विवो इमेजिंग में तैयारीएसीई(चित्रा 3ए)में उत्कीर्ण यकृत स्फेरॉइड के विवो इमेजिंग में गैर-इनवेसिव के लिए निम्नलिखित सामग्री और उपकरण तैयार करें: ईमानदार कॉन्फोकल माइक्रोस्कोप, लंबी कामकाजी दूरी की पानी-डुबकी उद्देश्य, आइसोफ्लुरेन संज्ञाहरण इकाई, प्रेरण कक्ष, आइसोफ्लुरेन, हीटिंग पैड, कस्टम-निर्मित धातु बेस प्लेट, माउस हेड-धारक और गैस मास्क, ठोस सार्वभौमिक संयुक्त, कृत्रिम-आंसू जेल, आंख मरहम (तरल पैराफिन और वैसलीन 1: 1 अनुपात में) से जुड़ा संदंश। वैकल्पिक सामग्री इंजेक्शन फ्लोरोसेंट जांच, डिस्पोजेबल सीरिंज, और पूंछ अंतःशिरा इंजेक्शन के लिए 27 जी सुइयों में शामिल हैं। प्रक्रियाप्रेरण कक्ष में माउस को 2.5% आइसोफ्लुरेन और 280 एमएल/मिनट हवा की खुराक का उपयोग करके एनेस्थेटाइज करें। जब माउस बेहोश है, संज्ञाहरण 1.8% isoflurane और 280 एमएल / मिनट हवा के लिए संज्ञाहरण कम, सिर धारक संज्ञाहरण ट्यूब कनेक्ट, और जल्दी से हीटिंग पैड पर पशु हस्तांतरण, सिर धारक के अंदर नाक स्थिति. शिकंजा का उपयोग करके सिर धारक में सिर को स्थिर करें। सूखने से रोकने के लिए दोनों आंखों पर कृत्रिम आंसू जेल की एक बूंद रखें। इस बिंदु पर, अंतःशिरा तुरंत बाद पूंछ नस और छवि के माध्यम से फ्लोरोसेंट जांच इंजेक्षन. सिर झुकाव, धीरे सॉकेट से बाहर आंख पॉप, और उद्देश्य के तहत स्थिति में संदंश के साथ यह सुरक्षित. कॉर्निया और उद्देश्य के बीच की जगह को भरने के लिए कृत्रिम आंसू जेल की एक उदार राशि लागू करें और ऐपिस के माध्यम से यकृत गोलाकार पर ध्यान केंद्रित करें।नोट: यदि संभव हो तो, गैर बढ़ाया दृष्टि प्राप्त करने के लिए नेत्र में से एक की ऐपिस को हटा दें और अधिक आसानी से परितारिका पर गोलाकार का पता लगाएं. जानवर की सांस लेने की गतिविधियों के बावजूद उच्च-रिज़ॉल्यूशन इमेजिंग प्राप्त करने के लिए, 25x उद्देश्यों और निम्नलिखित इमेजिंग सेटिंग्स का उपयोग करें: प्रारूप 512 x 512 पिक्सेल, 600 हर्ट्ज की स्कैन गति, और 3 माइक्रोन की जेड-स्टैक मोटाई। तालिका 2 में विस्तृत इमेजिंग सेटिंग्स देखें।नोट: इमेजिंग के दौरान, संज्ञाहरण एकाग्रता को उथले, नियंत्रित श्वास लय प्राप्त करने के लिए 1.6-2.2 एमएल/एच आइसोफ्लुरेन से समायोजित किया जाता है और इस तरह जानवर की गति को कम किया जाता है। इमेजिंग सत्र के अंत में, isoflurane को हटाने और जानवर जागृति से पहले वैसलीन आंख मरहम के साथ imaged आंखों का इलाज.

Representative Results

प्राथमिक यकृत कोशिकाओं, हेपेटोसाइट्स के लिए समृद्ध, माउस जिगर से दो-चरण कोलेजन छिड़काव द्वारा अलग किया गया था, सभी कोशिकाओं को पृथक्करण एंजाइम देने के लिए अंग के वास्कुलचर का लाभ उठाते हुए यकृत के माध्यम से गर्म बफ़र्स प्रसारित करने के लिए एक क्रमिक वृत्त विज्ञान पंप का उपयोग करके(चित्र 1क)। इसके लिए, अवर वेना कावा को कैनुलेट किया गया था, और पोर्टल शिरा को बफ़र्स के प्रवाह-थ्रू(चित्रा 1बी)की अनुमति देने के लिए छीन लिया गया था। सबसे पहले, रक्त को साफ करने के लिए यकृत के माध्यम से एक एचबीएसएस-आधारित बफर को फ्लश किया गया था। यदि कैनुलेशन सफल होता है और रक्त के थक्के नहीं होते हैं, तो यकृत ब्लैंच हो जाता है और कुछ सेकंड के भीतर पीला हो जाता है। दूसरे, लिबरेज़ एंजाइम मिश्रण युक्त एक पाचन बफर को यकृत के माध्यम से ऊतक को एकल-कोशिका निलंबन में अलग करने के लिए परिचालित किया गया था। कोशिकाओं को मैन्युअल रूप से गिना गया और 96-अच्छी तरह से अल्ट्रा-लो-पालन (यूएलए) प्लेटों में वरीयता दी गई, जो कुछ दिनों के भीतर स्व-विधानसभा को स्फेरॉइड में सक्षम बनाती हैं। 5 दिन, स्फेरॉइड बनते हैं, और स्फेरॉइड की सीमा पर पतला कैप्सूल सफल एकत्रीकरण(चित्रा 1सी)को इंगित करता है। हम प्रत्यारोपण के लिए 10 दिन तक प्रतीक्षा करते हैं, जिस बिंदु पर स्फेरॉइड कॉम्पैक्ट होते हैं और मजबूत सेल-सेल कनेक्शन विकसित किए होते हैं। अच्छी तरह से प्रति वरीयता प्राप्त कोशिकाओं की संख्या 1000, 1200, और 1500 कोशिकाओं/अच्छी तरह से उपज देने वाले स्फेरॉइड के साथ 238 माइक्रोन ± 10 माइक्रोन, 248 माइक्रोन ± 17 माइक्रोन, और 298 माइक्रोन ± 19 माइक्रोन (एसडी ± माध्यम) व्यास, क्रमशः (चित्रा 1सी, डी)। प्रत्यारोपण के लिए, हम निम्नलिखित कारणों से लगभग 250 माइक्रोन व्यास के स्फेरॉइड का चयन करते हैं: (1) हाइपोक्सिया और नेक्रोटिक कोर से बचने के लिए स्फेरॉइड का आकार बहुत बड़ा नहीं होना चाहिए, लेकिन सेल-सेल संचार का समर्थन करने और आंखों में ग्राफ्ट रीमॉडेलिंग की अनुमति देने के लिए पर्याप्त कोशिकाएं होनी चाहिए, (2) इस आकार के स्फेरॉइड का वजन उन्हें आईरिस की ओर गुरुत्वाकर्षण करने और उनके एनग्राफ्टमेंट में सुधार करने की अनुमति देता है, (3) यह आकार माउस आंख प्रति 5-10 spheroids प्रत्यारोपण के संबंध में उपयुक्त है. प्रत्यारोपण सर्जरी के लिए एक ग्लास प्रवेशनी (चित्रा 2 ए) से जुड़े एक मैनुअल-थ्रेडेड सिरिंज की आवश्यकता होती है। ग्लास प्रवेशनी में एक बोरोसिलिकेट ग्लास केशिका होती है जिसे घर में संशोधित किया जाता है ताकि माइक्रोपिपेट पुलर और बेवेलर का उपयोग करके एक महीन कुंद टिप हो। एक सरल वैकल्पिक प्रवेशनी सिरिंज टयूबिंग से जुड़े एक व्यावसायिक रूप से उपलब्ध प्लास्टिक कैथेटर का उपयोग कर बनाया जा सकता है और एक विंदुक टिप (चित्रा 2 बी) में स्थिर. सर्जरी में कॉर्निया (चित्रा 2 सी) में एक चीरा के माध्यम से एसीई में यकृत स्फेरॉइड का टीकाकरण होता है। स्फेरॉइड को पुतली की सीमाओं पर तैनात किया गया था ताकि उन्हें इमेजिंग के लिए बेहतर सुलभ बनाया जा सके और उन्हें ओकुलर कोण में जाने से बचाया जा सके। अल्बिनो चूहों का उपयोग प्रत्यारोपण के लिए किया गया था, क्योंकि उनके गैर-रंजित आईरिस उत्कीर्ण यकृत स्फेरॉइड के विवो इमेजिंग में अनुमति देते हैं। प्राप्तकर्ता चूहों को 7-10 स्फेरोइड्स / आंख के साथ दोनों आंखों में प्रत्यारोपित किया गया था, और कॉर्निया हीलिंग और स्फेरॉइड एनग्राफ्टमेंट सफलता(चित्रा 2डी)का दस्तावेजीकरण करने के लिए 3 दिनों के पोस्ट-ट्रांसप्लांटेशन (पोस्ट-टीएक्स) के साथ-साथ 1 सप्ताह और 1 महीने के पोस्ट-टीएक्स में स्टीरियोस्कोपिक छवियां ली गई थीं। ध्यान दें, ताजा प्रत्यारोपित और पूरी तरह से engrafted जब के बीच एसीई में जिगर spheroids की उपस्थिति में परिवर्तन परितारिका पर भ्रष्टाचार के निपटान के कारण है, साथ ही साथ गोलाकार पर परितारिका कोशिकाओं के एक मोनोलेयर के विकास के लिए है. एसीई में यकृत स्फेरॉइड की एनग्राफ्टमेंट सफलता दर 70% (नर और मादा चूहों दोनों में एन = 9 आंखें)(चित्रा 2ई)है। टीएक्स के बाद के पहले दिन जीवित रहने और एनग्राफ्टमेंट के लिए सबसे महत्वपूर्ण होते हैं, संभवतः प्राप्तकर्ता जानवर द्वारा अपनी आंखों को रगड़ने और कॉर्निया के ठीक होने से पहले स्फेरॉइड को हटाने के कारण। जिगर spheroids के आकार काफी बाद Tx अलग नहीं है और आकार में परिवर्तन भ्रष्टाचार रीमॉडेलिंग और engraftment (चित्रा 2F) के लिए जिम्मेदार ठहराया जाता है. 1 महीने के बाद टीएक्स में, आईरिस पर मौजूद सभी उत्कीर्ण स्फेरॉइड संवहनी और संक्रमित थे, जैसा कि इम्यूनोफ्लोरेसेंस धुंधला(चित्रा 2जी)द्वारा दिखाया गया है। विवो इमेजिंग में Noninvasive एक ईमानदार confocal माइक्रोस्कोप और लंबी दूरी की सूई उद्देश्य (चित्रा 3 ए, तालिका 2) का उपयोग कर संवेदनाहारी प्राप्तकर्ता चूहों पर किया जाता है. एसीई में प्रतिदीप्ति इमेजिंग विभिन्न दृष्टिकोणों के माध्यम से प्राप्त की जा सकती है, जैसा कि चित्रा 3 बी में दर्शाया गया है। प्राप्तकर्ता माउस के संचलन में फ्लोरोसेंट जांच का इंजेक्शन स्फेरॉइड के भीतर विभिन्न सेल प्रकारों और संरचनाओं के दृश्य की अनुमति देता है। हमने रक्त वाहिकाओं (चित्रा 3 सी), सीएमएफडीए को पित्त कैनालिकुली नेटवर्क(चित्रा 3डी)और फ्रोडो-एलडीएल का निरीक्षण करने के लिए लेक्टिन का इस्तेमाल किया, जिसने स्फेरॉइड कोशिकाओं(चित्रा 3ई)में सक्रिय एलडीएल-तेज की पुष्टि की। रिपोर्टर माउस मॉडल से उत्पन्न लिवर स्फेरॉइड का भी उपयोग किया जा सकता है। एल्ब्यूमिन-क्रे: टीडीटोमेटो स्फेरॉइड्स ने हेपेटोसाइट्स(चित्रा 3एफ)की लेबलिंग और ट्रैकिंग की अनुमति दी, और फ्लोरोसेंट यूबिकिटिन सेल साइकिल इंडिकेटर (एफयूसीसीआई) बायोसेंसर को व्यक्त करने वाले स्फेरॉइड का उपयोग एकल-कोशिका संकल्प(चित्रा 3जी)पर सेल चक्र गतिशीलता की कल्पना करने के लिए किया गया था। अंत में, यकृत स्फेरॉइड को प्रत्यारोपण से पहले इन विट्रो में आनुवंशिक रूप से संशोधित किया जा सकता है, और, एडेनो-जुड़े वायरस (एएवी) -जीएफपी पारगमन के मामले में, अभिव्यक्ति 6 महीने से अधिक (चित्रा 3एच) के लिए विवो में देखी गई थी। चित्रा 1: प्राथमिक माउस हेपेटोसाइट्स का अलगाव और यकृत स्फेरॉइड की पीढ़ी। (ए) प्राथमिक माउस हेपेटोसाइट्स के अलगाव के लिए उपयोग की जाने वाली सामग्री और उपकरण: 1. अलगाव बफर; 2. पानी स्नान; 3. पेरिस्टाल्टिक पंप; 4. पेट्री डिश; 5. सेल छलनी; 6. शोषक पैड; 7. विच्छेदन चटाई; 8. सेल लिफ्टर; 9. तितली सुई 27 ग्राम; 10. विच्छेदन उपकरण. (बी) सर्जरी के दौरान पेट की गुहा: वेना कावा cannulated और perfused है, और पोर्टल शिरा buffers के प्रवाह के माध्यम से अनुमति देने के लिए छीन लिया है. (सी)0 (डी0), 5 (डी5), और 10 (डी10) दिनों के बाद बीजारोपण, स्केल बार = 200 माइक्रोन पर इन विट्रो में यकृत गोलाकार के गठन की ब्राइटफील्ड छवियां। (डी) विभिन्न कोशिका-बोने वाली सांद्रता में यकृत गोलाकार आकार, एन = 21 स्फेरॉइड। कृपया इस चित्र का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहाँ क्लिक करें. चित्रा 2: प्रत्यारोपण और चूहों के एसीई में जिगर spheroids के engraftment. (ए) सामग्री और उपकरण एसीई में जिगर spheroids के प्रत्यारोपण (Tx) के लिए इस्तेमाल किया: 1. संस्कृति पकवान में जिगर spheroids; 2. बाँझ खारा; 3. आंख मरहम; 4. सुई 23 ग्राम; 5. प्रवेशनी; 6. हैमिल्टन सिरिंज; 7. संज्ञाहरण गैस ट्यूब; 8. सिर धारक और गैस मास्क; 9. हीटिंग पैड; 10. कस्टम-निर्मित धातु बेस प्लेट; 11. संदंश और ठोस सार्वभौमिक संयुक्त। (बी) प्रवेशनी और हैमिल्टन सिरिंज सेटअप: 1. पोर्टेक्स टयूबिंग और 27 जी सुई के माध्यम से हैमिल्टन सिरिंज से जुड़ा ग्लास प्रवेशनी; 2. ग्लास प्रवेशनी सिलिकॉन टयूबिंग और PharMed टयूबिंग के अतिरिक्त खंडों के माध्यम से पोर्टेक्स टयूबिंग से जुड़ा हुआ है; 3. वैकल्पिक इकट्ठे प्लास्टिक प्रवेशनी; 4. प्लास्टिक प्रवेशनी बनाने वाले भागों: 24G BD Insyte प्लास्टिक कैथेटर PharMed टयूबिंग के माध्यम से जुड़ा हुआ है और स्थिरता और पकड़ के लिए कट-ऑफ 10 μl विंदुक टिप में म्यान किया गया है। (सी) टीएक्स सर्जरी चरणों का चित्रण: 1. स्फेरॉइड प्रवेशनी में एकत्र किए जाते हैं; 2. कॉर्निया को सुई से पंचर किया जाता है; 3. प्रवेशनी चीरा में डाला जाता है, और spheroids एसीई में जारी कर रहे हैं; 4. आंख के बाहर से, गोलाकार पुतली के करीब और चीरे से दूर स्थित होते हैं। (डी)सर्जरी के दिन और 3-, 7-, और 30-दिन पोस्ट-टीएक्स पर माउस आंख में यकृत स्फेरॉइड (एसपीएच) की स्टीरियोस्कोपिक छवियां। तीर व्यवहार्य गोलाकार इंगित करते हैं। (ई) यकृत गोलाकार (1200 कोशिकाओं/अच्छी तरह से का आकार) टीएक्स के बाद की दर, 6 प्राप्तकर्ता चूहों में एन = 9 आंखें। (एफ)संस्कृति में जिगर spheroids के आकार, प्रत्यारोपण से पहले (इन विट्रो में, एन = एकल तैयारी से 20 spheroids) और एसीई में 1 महीने के बाद Tx पर (vivo में, एन = 3 प्राप्तकर्ता चूहों में 16 spheroids), ऊर्ध्वाधर और क्षैतिज व्यास औसत द्वारा गणना. (जी) टीएक्स के बाद 2 महीने में उत्कीर्ण यकृत स्फेरॉइड के इम्यूनोफ्लोरेसेंस धुंधला, संवहनी (सीडी 31, गुलाबी, धराशायी रेखा अंडाकार द्रव्यमान को चित्रित करती है) और सहानुभूति संक्रमण (टायरोसिन हाइड्रॉक्सिलस (टीएच), नारंगी), स्केल बार = 100 माइक्रोन। पैनल एफ के लिए डेटा Lazzeri-Barcelo एट al.10 से अनुमति के साथ अनुकूलित किया गया है. कृपया इस चित्र का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहाँ क्लिक करें. चित्रा 3: उत्कीर्ण यकृत स्फेरॉइड के विवो इमेजिंग में noninvasive intraocular। (ए) विवो एसीई इमेजिंग में उपयोग की जाने वाली सामग्री और उपकरण: 1. ईमानदार लेजर स्कैनिंग कॉन्फोकल माइक्रोस्कोप; 2. डार्क बॉक्स; 3. मोटर चालित XYZ चरण; 4. डुबकी-उद्देश्य; 5. सिर धारक और गैस मास्क; 6. संदंश और ठोस सार्वभौमिक संयुक्त; 7. हीटिंग पैड; 8. कस्टम-निर्मित धातु बेस प्लेट। (बी) आंखों में उत्कीर्ण यकृत स्फेरॉइड में फ्लोरोसेंट रीडआउट के विवो इमेजिंग में उपयोग किए जाने वाले विभिन्न दृष्टिकोणों को दर्शाने वाला आरेख। (सी-एच) कन्फोकल माइक्रोस्कोपी द्वारा विवो इमेजिंग के दौरान एसीई-लीवर स्फेरॉइड की प्रतिनिधि छवियां। बैकस्कैटर सिग्नल का उपयोग गोलाकार मात्रा और संरचना का निरीक्षण करने के लिए किया जाता है; (सी) फ्लोरोसेंट लेक्टिन के आईवी इंजेक्शन द्वारा लेबल की गई रक्त वाहिकाएं, स्केल बार = 100 माइक्रोन; (डी) फ्लोरोसेंट सीएमएफडीए के इंजेक्शन द्वारा लेबल किए गए पित्त कैनालिकुली नेटवर्क, स्केल बार = 50 माइक्रोन; (ई) फ्लोरोसेंट पीएचरोडो-एलडीएल जांच के इंजेक्शन द्वारा एलडीएल तेज, स्केल बार = 100 माइक्रोन; (एफ) टीडी-टमाटर-व्यक्त हेपेटोसाइट्स, एरोहेड नाभिक को इंगित करते हैं और तारांकन इंट्रा-स्फेरॉइड वास्कुलचर, स्केल बार = 50 माइक्रोन का संकेत देते हैं; (जी)एफयूसीसी-व्यक्त यकृत स्फेरॉइड्स, स्केल बार = 50 माइक्रोन (मुख्य छवि) और 20 माइक्रोन (ब्लो-अप) में सेल चक्र गतिशीलता की निगरानी। (एच) जिगर spheroids टीएक्स से पहले AAV8-GFP के साथ इन विट्रो में transduced और 6 महीने के बाद Tx, स्केल बार = 50 माइक्रोन पर आंख में imaged. पैनल जी में छवि Lazzeri-Barcelo एट al.10 से अनुमति के साथ अनुकूलित किया गया है. कृपया इस चित्र का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहाँ क्लिक करें. तालिका 1: प्राथमिक माउस हेपेटोसाइट्स के अलगाव के लिए उपयोग किए जाने वाले समाधान। माउस हेपेटोसाइट अलगाव के लिए आवश्यक समाधान और बफ़र्स की संरचना। पाचन बफर और ढाल समाधान घटकों को अलगाव के दिन ताजा मिलाया जाना चाहिए। कृपया इस तालिका को डाउनलोड करने के लिए यहाँ क्लिक करें. तालिका 2. कन्फोकल लीका एसपी 5 माइक्रोस्कोप सेटिंग्स यकृत स्फेरॉइड के विवो इमेजिंग में इंट्राओकुलर के लिए उपयोग की जाती हैं। तालिका Lazzeri एट al.10 से अनुमति के साथ अनुकूलित किया गया है. कृपया इस तालिका को डाउनलोड करने के लिए यहाँ क्लिक करें.

Discussion

यह प्रोटोकॉल एसीई में उत्कीर्ण यकृत स्फेरॉइड के विवो इमेजिंग में इंट्राओकुलर के लिए एक उपन्यास मंच का वर्णन करता है। एसीई पहले इस तरह के अग्नाशय आइलेट्स11,12 के रूप में अन्य अंग व्युत्पन्न microtissues के एक प्रत्यारोपण साइट के रूप में इस्तेमाल किया गया है, अपने अद्वितीय engraftment microenvironment के कारण, वाहिकाओं, नसों, और ऑक्सीजन, और कॉर्निया के माध्यम से इमेजिंग के लिए उपयोग किया जा रहा है. जबकि इंट्राविटल लीवर इमेजिंग सीटू में कोशिकाओं और प्रक्रियाओं के दृश्य को सक्षम बनाता है, अनुदैर्ध्य निगरानी संभव नहीं है। पेट की खिड़की के माध्यम से लिवर इमेजिंग जटिल सर्जरी पर जोर देती है, और शरीर के भीतर अंग की गति समय के साथ एकल-कोशिका ट्रैकिंग को मुश्किल बनाती है। इसलिए, यह उपन्यास इमेजिंग विधि एकल-कोशिका संकल्प पर यकृत कोशिकाओं की गैर-आक्रामक, अनुदैर्ध्य निगरानी को सक्षम बनाती है।

इस प्रोटोकॉल को तीन भागों में बांटा गया है। सबसे पहले दो-चरण कोलेजन छिड़काव के माध्यम से प्राथमिक हेपेटोसाइट्स का अलगाव है, जो चर्नी-नातन एट अल.13से अनुकूलित है, इस अंतर के साथ कि हम संवेदनाहारी जीवित जानवरों के बजाय मृत माउस पर यकृत छिड़काव करते हैं। यह भिन्नता कुछ फायदे लाती है, जैसे कि कम नैतिक विचार और जीव में संज्ञाहरण अवशेषों से बचना। इस काम में, हम अलगाव के हेपेटोसाइट समृद्ध अंश से जिगर spheroids उत्पन्न, लेकिन यह विविध संरचना14,15 के coculture spheroids बनाने के लिए अन्य विशेष प्रोटोकॉल का उपयोग कर अन्य nonparenchymal सेल आबादी को अलग करने की क्षमता को बाहर नहीं करता है.

इस प्रोटोकॉल के दूसरे भाग प्राप्तकर्ता चूहों की ऐस में जिगर spheroids के प्रत्यारोपण शामिल. यह एक त्वरित (10 मिनट से कम) और सरल सर्जरी है जो एनेस्थेटाइज्ड चूहों में की जाती है और इसके लिए किसी भी पोस्ट-ऑपरेटिव उपचार की आवश्यकता नहीं होती है। कॉर्निया पंचर स्व-सील और 3-5 दिनों में ठीक हो जाता है। कभी-कभी, उपचार प्रक्रिया के दौरान, चीरे के आसपास कुछ धुंधला देखा जाता है, लेकिन यह कुछ दिनों के भीतर साफ हो जाता है। हमने संचालित जानवरों की आंखों में पूर्वकाल सिनेचिया के मामलों का अनुभव नहीं किया है। हम एक स्वच्छ लेकिन खुली हवा में प्रयोगशाला में और संचालित आंखों में संक्रमण के मुद्दों के बिना प्रत्यारोपण प्रक्रियाएं करते हैं। आंखों में स्फेरॉइड का टीकाकरण और एनग्राफ्टमेंट दृष्टि से समझौता नहीं करता है या प्राप्तकर्ता जानवर के व्यवहार को नहीं बदलता है। इस प्रोटोकॉल में, हम प्रत्यारोपण सर्जरी और विवो इमेजिंग दोनों के लिए आइसोफ्लुरेन संज्ञाहरण का उपयोग करते हैं, जो चूहों में अच्छी तरह से सहन किया जाता है। इसकी खुराक पर निर्भर प्रभाव के कारण, इसे पूरी प्रक्रियाओं में आसानी से समायोजित किया जा सकता है और नींद और जागने के समय को कम करने का लाभ लाता है। हालांकि, वैकल्पिक इंजेक्शन एनेस्थेटिक्स का उपयोग किया जा सकता है। प्रत्यारोपण के बाद, हम आम तौर पर 1 महीने की अनुमति देते हैं स्फेरॉइड पूरी तरह से engraft करने के लिए, संवहनी हो जाते हैं, और innervated, उपचार हस्तक्षेप प्रदर्शन करने से पहले और vivo इमेजिंग में . हमने यह भी दिखाया है कि प्रत्यारोपण और engraftment मानव जिगर spheroids और immunocompromised प्राप्तकर्ता चूहों10 का उपयोग कर संभव है.

इस विधि का तीसरा भाग एसीई में उत्कीर्ण यकृत स्फेरॉइड की विवो इमेजिंग में है। यह प्रोटोकॉल विवो इमेजिंग सेटअप में वर्णन करता है, जो आमतौर पर अनुसंधान इमेजिंग सुविधाओं में पाए जाने वाले माइक्रोस्कोपी उपकरण का उपयोग करता है। इसके अलावा, विशेष सामग्री, जैसे माउस हेड-होल्डर और प्लास्टिक प्रवेशनी, अब व्यावसायिक रूप से उपलब्ध हैं। इस इमेजिंग सेटअप के साथ, हम जेड-वर्गों पर कब्जा करने और लेजर प्रवेश और प्रतिदीप्ति का पता लगाने की गहराई के आधार पर अंडाकार आकृति का त्रि-आयामी पुनर्निर्माण प्राप्त करने में सक्षम हैं। उत्कीर्ण यकृत स्फेरॉइड में सेलुलर फ़ंक्शन की निगरानी फ्लोरोसेंट प्रोटीन के दृश्य पर निर्भर करती है जो सेल प्रकार, सेलुलर कार्यों और गतिशीलता पर रिपोर्ट करती है। इस प्रकार, इस इमेजिंग प्लेटफॉर्म का उपयोग करके अकेले या संयोजन में विभिन्न तौर-तरीकों का उपयोग करके शोषण किया जा सकता है: (1) फ्लोरोसेंट जांच को अंतःशिरा रूप से प्रशासित किया जा सकता है, उदाहरण के लिए, लेबल और ट्रैक कोशिकाओं के साथ-साथ कार्यात्मक रंगों के लिए एंटीबॉडी; (2) लिवर स्फेरॉइड रिपोर्टर माउस मॉडल से अलग कोशिकाओं से उत्पन्न किया जा सकता है जो यकृत-विशिष्ट फ्लोरोसेंट प्रोटीन को व्यक्त करते हैं, उदाहरण के लिए, एफयूसीसीआई यकृत स्फेरॉइड जो सेल चक्र गतिशीलता पर रिपोर्ट करते हैं; (3) इन विट्रो में जिगर spheroids के गठन अभिकर्मक या पारगमन के साथ जोड़ा जा सकता है, फ्लोरोसेंट प्रोटीन और biosensors के साथ spheroids लैस करने के लिए. जैसे, एडेनो से जुड़े वायरस। हमारी प्रयोगात्मक सेटिंग्स में और उत्तेजना के लिए एक एकल फोटॉन का उपयोग करके, इमेजिंग गहराई है कि प्राप्त करने के लिए संभव है मोटे तौर पर 60-100 माइक्रोन है. हालांकि, यह लेजर शक्ति और मल्टीपोटन इमेजिंग उपलब्धता, प्रतिदीप्ति जांच उत्सर्जन विशेषताओं और डिटेक्टरों की संवेदनशीलता, साथ ही आंख के कोण जिसमें गोलाकार उत्कीर्ण है पर निर्भर है. इमेजिंग अधिग्रहण के बाद, डाउनस्ट्रीम छवि विश्लेषण छवि जे और इमारिस जैसे लोकप्रिय कार्यक्रमों का उपयोग करके किया जा सकता है। उदाहरण के लिए, एफयूसीसीआई रिपोर्टर के मामले में, हरे रंग में सेल-चक्र सक्रिय कोशिकाओं को गिना जा सकता है और उत्कीर्ण गोलाकार के भीतर सेल-चक्र गतिविधि का आकलन करने के लिए कुल लाल कोशिकाओं की संख्या के विपरीत किया जा सकता है। इसके अतिरिक्त, एसीई-इमेजिंग प्लेटफॉर्म पदार्थों को आंखों पर लागू करने की अनुमति देता है (आंखों की बूंदों के रूप में) या ग्राफ्ट का इलाज करने और इसकी प्रतिक्रिया की निगरानी करने के लिए सीधे एसीई में इंजेक्ट किया जाता है। पोस्ट-मॉर्टम, प्रत्यारोपित स्फेरॉइड को आसानी से मैनुअल माइक्रोडिसेक्शन द्वारा पुनर्प्राप्त किया जा सकता है और पूर्व विवो तकनीकों, जैसे इम्यूनोफ्लोरेसेंस धुंधला, ट्रांसक्रिप्टोमिक विश्लेषण, आदि10द्वारा बहुमूल्य जानकारी प्रदान कर सकता है।

इस तकनीक की कुछ सीमाएँ हैं। पहला यह है कि हमारे अनुभव से, प्राप्तकर्ता चूहों को अल्बिनो होना चाहिए, अर्थात, गैर-रंजित आईरिस होना चाहिए। एनग्राफ्टमेंट पर, लिवर स्फेरॉइड आईरिस कोशिकाओं के एक मोनोलेयर द्वारा कवर हो जाते हैं, जो स्फेरॉइड की व्यवहार्यता या कार्य को प्रभावित नहीं करता है, लेकिन आईरिस कोशिकाओं में वर्णक इमेजिंग को रोकता है। एक दूसरा विचार संवेदनाहारी चूहों में इंट्राओकुलर इमेजिंग के दौरान स्थिरता है। विवो इमेजिंग सत्र के दौरान, संज्ञाहरण एकाग्रता और जानवर की सांस लेने बारीकी से आंदोलन को कम करने के लिए निगरानी की जानी चाहिए. फिर भी, यहां इंगित इमेजिंग सेटिंग्स का उपयोग करके, हम एकल-सेल स्तर पर उच्च-रिज़ॉल्यूशन इमेजिंग प्राप्त करने में सक्षम हैं।

संक्षेप में, इस प्रोटोकॉल चूहों की आंखों में उत्कीर्ण जिगर की तरह ऊतक के विवो इमेजिंग मंच में एक noninvasive के कार्यान्वयन का वर्णन करता है. हम आसान प्रक्रियाओं, सामान्य उपकरणों और सस्ती सामग्री का उपयोग करते हैं, जिससे यह कई जांचकर्ताओं के लिए एक प्राप्य दृष्टिकोण बन जाता है। यह मॉडल इन विट्रो 3 डी-लिवर स्फेरॉइड के फायदों को इन विवो मील के पत्थर और एसीई द्वारा प्रदान की गई ऑप्टिकल पहुंच के साथ जोड़ता है ताकि बुनियादी अनुसंधान और पूर्व-नैदानिक सेटिंग्स में यकृत शरीर विज्ञान और विकृति विज्ञान का अध्ययन करने के लिए एक मूल्यवान मंच बनाया जा सके।

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस काम स्वीडिश मधुमेह एसोसिएशन द्वारा समर्थित किया गया, Karolinska Institutet के फंड, स्वीडिश अनुसंधान परिषद, नोवो Nordisk फाउंडेशन, परिवार Erling-Persson फाउंडेशन, करोलिंस्का Institutet में मधुमेह में सामरिक अनुसंधान कार्यक्रम, परिवार Knut और ऐलिस Wallenberg फाउंडेशन, जोनास & क्रिस्टीना एएफ Jochnick फाउंडेशन, Diabetology और ERC-2018-AdG 834860-EYELETS के लिए स्वीडिश एसोसिएशन. आकृति चित्र FL-B द्वारा BioRender.com का उपयोग करके बनाए गए थे।

Materials

27 G butterfly needle Venofix 4056388
AAV8-CAG-GFP Charles River CV17169-AV9 Incubated with isolated hepatocytes at 1 µL/mL during liver spheroid formation
Absolute and 70% ethanol N/A N/A
Absorbent pad Attends 203903
Albumin-Cre;RCL-tdTomato (B6.Cg-Speer6-ps1Tg(Alb-cre)21Mgn/J ; B6.Cg-Gt(ROSA)26Sortm14(CAG-tdTomato)Hze/J) Jackson #003574 and #007914 Mice obtained from in-house breeding
B6 albino mice (B6(Cg)-Tyrc-2J/J) Jackson #000058 Mice obtained from in-house breeding
B6;129P2-Gt(ROSA)26Sor[tm1(CAG-Venus/GMNN,-Cherry/CDT1)Jkn]/JknH INFRAFRONTIER/EMMA EM:08395 Mice obtained from in-house breeding
BD Insyte IV Catheter 24 G x 0.75 in BD Medical 381212
Borosillicate standard glass cappilaries  World Precision Instruments 1B150-4
Cell lifter Corning 3008
Cell strainer, 70 µm Falcon 352350
Custom-made metal plate Hardware store N/A
Dexamethasone Sigma-Aldrich D4902
Dual-Stage Glass Micropipette Puller Narshige Model PC-100
EDTA Sigma-Aldrich E9884
Electric heating pad Hardware store N/A
FBS Gibco N/A
GlutaMAX Gibco 35050061
Green CMFDA Abcam ab145459 Reconstituted in DMSO, administered at 100 µg/mouse in PBS 10% FBS
Hamilton syringe Hamilton 81242 Model 1750 Luer Tip Threaded Plunger Syringe, 500 µL
HBSS; no calcium, no magnesium and no phenol red Gibco 14175095
HCX IRAPO L 25x/0.95 W objective Leica N/A
HEPES Gibco 15630080
Induction chamber 0.8 L Univentor 8329001
Insulin-Transferrin-Selenium (ITS-G) Gibco 41400045
Isoflurane Baxter N/A
Lectin DyLight-649 Invitrogen L32472 Administered at 1 mg/mL and 100 µL/mouse
Liberase TM Research Grade Sigma-Aldrich 5401127001
Microelectrode beveler World Precision Instruments Model BV-10
Mouse head-holder and gas mask Narshige Model SGM-4
Nunclon Sphera 96-Well, U-Shaped-Bottom Microplate Thermo Fisher 174929
Oculentum simplex APL N/A
PBS 10x Gibco 14080055
PBS 1x; no calcium, no magnesium Gibco 14190144
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140122
Percoll Sigma-Aldrich P1644
Peristaltic pump Ismatec Model ISM795
PharMed BPT Pump Tubing VWR VERN070540-07 Inner diameter 0.76 mm, outer diameter 2.46 mm
pHrodo Red-LDL Invitrogen L34356 Administered at 1 mg/mL and 100 µL/mouse
Portex Fine Bore Polyethylene Tubing Smiths Medical 800/100/140 Inner diameter 0.4 mm, outer diameter 0.8 mm
Silicone dissection mat Hardware store N/A
Sodium chloride 0.9% Braun N/A
Solid Universal Joint Narshige Model UST-2
Stereomicroscope Leica Model M80
Suspension culture dish 35 mm Sarstedt 833900500
Temgesic Indivor N/A Administered s.c. at 0.05 mg/mL and 2 µL/g mouse
Translucent Silicone Tubing VWR 228-1450 Inner diameter 1.5 mm, outer diameter 3 mm
Trypan Blue Sigma-Aldrich T8154
Univentor 400 Anesthesia unit  Univentor 8323001
Upright laser scanning confocal microscope Leica Model TCS SP5 II
Viscotears Novartis N/A
William's E Medium; no glutamine, phenol red Gibco 22551089

References

  1. Bell, C. C., et al. Characterization of primary human hepatocyte spheroids as a model system for drug-induced liver injury, liver function and disease. Sci Rep. 6, 25187 (2016).
  2. Lauschke, V. M., et al. Massive rearrangements of cellular MicroRNA signatures are key drivers of hepatocyte dedifferentiation. Hepatology. 64 (5), 1743-1756 (2016).
  3. Oliva-Vilarnau, N., Vorrink, S. U., Ingelman-Sundberg, M., Lauschke, V. M. A 3D cell culture model identifies Wnt/beta-catenin mediated inhibition of p53 as a critical step during human hepatocyte regeneration. Adv Sci (Weinh). 7 (15), 2000248 (2020).
  4. Hurrell, T., et al. Human liver spheroids as a model to study aetiology and treatment of hepatic fibrosis. Cells. 9 (4), 964 (2020).
  5. Kozyra, M., et al. Human hepatic 3D spheroids as a model for steatosis and insulin resistance. Sci Rep. 8 (1), 14297 (2018).
  6. Lauschke, V. M., Shafagh, R. Z., Hendriks, D. F. G., Ingelman-Sundberg, M. 3D primary hepatocyte culture systems for analyses of liver diseases, drug metabolism, and toxicity: Emerging culture paradigms and applications. Biotechnol J. 14 (7), e1800347 (2019).
  7. Shibuya, K., et al. The efficacy of the hepatocyte spheroids for hepatocyte transplantation. Cell Transplant. 30, 9636897211000014 (2021).
  8. Hamazaki, K., Doi, Y., Koide, N. Microencapsulated multicellular spheroid of rat hepatocytes transplanted intraperitoneally after 90% hepatectomy. Hepatogastroenterology. 49 (48), 1514-1516 (2002).
  9. Marques, P. E., et al. Imaging liver biology in vivo using conventional confocal microscopy. Nat Protoc. 10 (2), 258-268 (2015).
  10. Lazzeri-Barcelo, F., et al. Intraocular liver spheroids for noninvasive high-resolution in vivo monitoring of liver cell function. Nat Commun. 15 (1), 767 (2024).
  11. Speier, S., et al. Noninvasive in vivo imaging of pancreatic islet cell biology. Nat Med. 14 (5), 574-578 (2008).
  12. Leibiger, I. B., Berggren, P. O. Intraocular in vivo imaging of pancreatic islet cell physiology/pathology. Mol Metab. 6 (9), 1002-1009 (2017).
  13. Charni-Natan, M., Goldstein, I. Protocol for Primary Mouse Hepatocyte Isolation. STAR protocols. 1 (2), 100086 (2020).
  14. Baze, A., et al. Three-dimensional spheroid primary human hepatocytes in monoculture and coculture with nonparenchymal cells. Tissue Eng Part C Methods. 24 (9), 534-545 (2018).
  15. Mohar, I., Brempelis, K. J., Murray, S. A., Ebrahimkhani, M. R., Crispe, I. N. Isolation of nonparenchymal cells from the mouse liver. Methods Mol Biol. 1325, 3-17 (2015).
check_url/fr/66234?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Lazzeri-Barcelo, F., Ciardo, P., Leibiger, B., Leibiger, I. B., Berggren, P., Moruzzi, N. In Vivo Imaging of Liver Spheroids Engrafted in the Anterior Chamber of the Mouse Eye. J. Vis. Exp. (205), e66234, doi:10.3791/66234 (2024).

View Video