Summary

Sanntids polymerasekjedereaksjonsbasert deteksjon og kvantifisering av hepatitt B-virus DNA

Published: December 15, 2023
doi:

Summary

Sanntids polymerasekjedereaksjon (PCR)-basert påvisning og kvantifisering av hepatitt B-virus (HBV) DNA er en sensitiv og nøyaktig metode for diagnostisering og overvåking av HBV-infeksjon. Her presenterer vi en protokoll for HBV DNA-deteksjon og virusbelastningsmåling av en prøve.

Abstract

Hepatitt B-virus (HBV) er en betydelig årsak til leversykdom over hele verden. Det kan føre til akutte eller kroniske infeksjoner, noe som gjør individer svært utsatt for dødelig skrumplever og leverkreft. Nøyaktig påvisning og kvantifisering av HBV DNA i blodet er avgjørende for diagnostisering og overvåking av HBV-infeksjon. Den vanligste metoden for å oppdage HBV DNA er sanntids PCR, som kan brukes til å oppdage viruset og vurdere virusbelastningen for å overvåke responsen på antiviral terapi. Her beskriver vi en detaljert protokoll for påvisning og kvantifisering av HBV DNA i humant serum eller plasma ved bruk av et IVD-merket sanntids PCR-basert sett. Settet bruker primere og prober som retter seg mot den svært konserverte kjerneregionen i HBV-genomet og kan nøyaktig kvantifisere alle HBV-genotyper (A, B, C, D, E, F, G, H, I og J). Settet inneholder også en endogen internkontroll for å overvåke mulig PCR-hemming. Denne analysen går i 40 sykluser, og avskjæringen er 38 Ct. For kvantifisering av HBV DNA i kliniske prøver, følger et sett med 5 kvantifiseringsstandarder med settet. Standardene inneholder kjente konsentrasjoner av HBV-spesifikt DNA som er kalibrert mot 4. WHOs internasjonale standard for HBV DNA for nukleinsyretesten (NIBSC-kode 10/266). Standardene brukes til å validere funksjonaliteten til den HBV-spesifikke DNA-amplifiseringen og for å generere en standardkurve som tillater kvantifisering av HBV-DNA i en prøve. HBV DNA så lavt som 2,5 IE / ml ble detektert ved hjelp av PCR-settet. Den høye følsomheten og reproduserbarheten til settet gjør det til et kraftig verktøy i kliniske laboratorier, og hjelper helsepersonell med å effektivt diagnostisere og håndtere HBV-infeksjoner.

Introduction

Hepatitt B-virus (HBV) er et delvis dobbeltstrenget DNA-virus fra slektene Orthohepadnavirus og Hepadnaviridae-familien 1. Det kan utløse en kronisk infeksjon som vedvarer gjennom hele livet, som potensielt fører til levercirrhose og hepatocellulært karsinom 2,3,4. Ifølge Verdens helseorganisasjon (WHO) levde en estimert befolkning på 296 millioner mennesker med kronisk hepatitt B-infeksjon i 2019, og 1,5 millioner mennesker ble nylig smittet hvert år5.

Identifisering og måling av HBV DNA i serum- eller plasmaprøver tjener som en verdifull metode for å oppdage personer med en pågående hepatitt B-infeksjon, vurdere effekten av antiviral behandling og forutsi sannsynligheten for behandlingssuksess 6,7,8,9,10,11. Høy viral belastning er forbundet med økt risiko for progresjon av leversykdom, inkludert skrumplever og leverkreft 12,13. Derfor er presis måling av virusbelastning avgjørende for å spore utviklingen av HBV-infeksjon og informere beslutninger om behandling.

Kvantitative sanntids PCR-analyser har høyere sensitivitet, bredere dynamisk område og mer nøyaktig kvantifisering av HBV DNA enn konvensjonelle PCR-teknikker 14,15,16,17. Flere kommersielle sanntids PCR-baserte molekylære diagnostiske sett for kvantifisering av HBV DNA i serum eller plasmaprøver er tilgjengelige i markedet. Her beskriver vi en detaljert arbeidsflyt for påvisning og kvantifisering av HBV DNA i humant serum eller plasma ved hjelp av et kommersielt tilgjengelig, IVD-merket sanntids PCR-basert sett. Settet er en mye brukt18,19, rimelig, men svært følsom analyse, og ytelsesegenskapene er sammenlignbare med andre kommersielt tilgjengelige CE-merkede sett(er)18. Bortsett fra HBV-målområdeamplifikasjonen, er et endogent internkontrollgen også inkludert i settet for å verifisere kvaliteten på prøver, kvaliteten på ekstrahert DNA, PCR-amplifikasjon og mulig PCR-hemming.

Protocol

Denne studien involverte ingen menneskelige deltakere eller kliniske prøver. Det eneste biologiske materialet som ble brukt var den 4. WHO internasjonale standarden for HBV DNA for nukleinsyretest (NIBSC-kode 10/266). Denne standarden er et offentlig tilgjengelig referansemateriale som ikke inneholder personlig informasjon eller identifiserbare data. Som sådan var det ikke nødvendig med etisk godkjenning for denne studien. 1. DNA-ekstraksjon Ekstraher v…

Representative Results

Et skjematisk diagram over arbeidsflyten for å påvise og kvantifisere HBV DNA fra humant plasma/serum er vist i figur 1. Et forsterkningsplott av Standard 2 (brukt som PC) og NTC for både HBV og IC er vist i figur 2. Figur 3 viser amplifikasjonskurvene for en HBV-positiv prøve, en HBV-negativ prøve og en prøve med PCR-hemming. Forsterkningskurven, Ct-verdi for HBV og oppnådd HBV-konsentrasjon i internasjonale enheter per mikr…

Discussion

NIBSC-kode 10/266 har blitt tildelt en enhet på 9,55,000 IE/ml når den rekonstitueres i 0,5 ml nukleasefritt vann i henhold til leverandørinformasjonen21. Dette kan betraktes som en HBV-positiv prøve med høy belastning. HBV-virusmengden bestemt av virusbelastningssettet som ble brukt i denne studien, var 6,65,900 IE / ml (figur 4). Siden DNA-ekstraksjonseffektiviteten til et DNA-ekstraksjonssett ikke er 100%, går noe DNA ofte tapt under renseprosessen. Selv om v…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi anerkjenner Praveen, Kusum, Chandan, Isha, Rashmi, Babli, Shivani, Ankita og Shikha for deres tekniske assistanse.

Materials

4th WHO International Standard for hepatitis B virus DNA NIBSC NIBSC code: 10/266 The 4th WHO International Standard for hepatitis B virus (HBV) DNA, NIBSC code 10/266, is intended to be used for the calibration of secondary reference reagents used in HBV nucleic acid amplification techniques (NAT).
ABI real-time PCR machines  ThermoFisher Scientific ABI 7500; QuantStudio 5 This is a real time PCR machine 
HBV, HCV and HIV Multiplex 14/198 NIBSC NIBSC code: 14/198 This is a very low positive triplex reagent for NAT assays containing hepatitis B (HBV), hepatitis C (HCV) and human immunodeficiency virus-1 (HIV-1)
QIAGEN real-time PCR machine Qiagen Rotor-Gene Q This is a real time PCR machine 
TRUPCR HBV Viral Load kit  Kilpest India Limited 3B294 This is a real time PCR based kit used in this study for the HBV DNA detection and viral load determination
TRUPCR Viral Nucleic Acid Extraction Kit Kilpest India Limited 3B214 This is a DNA extraction kit used for the extraction of HBV viral DNA from NIBSC:10/266 and NIBSC:14/198

References

  1. Ryu, W. -. S. . Molecular Virology of Human Pathogenic Viruses. , (2016).
  2. Lin, X., et al. Chronic hepatitis b virus infection in the Asia-Pacific region and Africa: Review of disease progression. Journal of Gastroenterology and Hepatology. 20 (6), 833-843 (2005).
  3. Iloeje, U. H., et al. Predicting cirrhosis risk based on the level of circulating Hepatitis B viral load. Gastroenterology. 130 (3), 678-686 (2006).
  4. Huang, Y. -. T., et al. Lifetime risk and sex difference of hepatocellular carcinoma among patients with chronic Hepatitis B and C. Journal of Clinical Oncology. 29 (27), 3643 (2011).
  5. . World Health Organization fact sheet Available from: https://www.who.int/news-room/fact-sheets (2023)
  6. Watanabe, M., Toyoda, H., Kawabata, T. Rapid quantification assay of hepatitis b virus DNA in human serum and plasma by fully automated genetic analyzer mutaswako g1. PLoS One. 18 (2), e0278143 (2023).
  7. Chan, H. L. -. Y., et al. Viral genotype and Hepatitis B virus DNA levels are correlated with histological liver damage in HBeAg-negative chronic Hepatitis B virus infection. The American Journal of Gastroenterology. 97 (2), 406-412 (2002).
  8. Liu, C. J., et al. Viral factors correlate with Hepatitis B e antigen seroconverson in patients with chronic Hepatitis B. Liver International. 26 (8), 949-955 (2006).
  9. Liu, C. -. J., et al. Role of Hepatitis B viral load and basal core promoter mutation in hepatocellular carcinoma in Hepatitis B carriers. The Journal of Infectious Diseases. 193 (9), 1258-1265 (2006).
  10. Yeo, W., et al. Hepatitis B viral load predicts survival of HCC patients undergoing systemic chemotherapy. Hepatology. 45 (6), 1382-1389 (2007).
  11. Yim, H. J., et al. Levels of Hepatitis B virus (HBV) replication during the nonreplicative phase: HBV quantification by real-time PCR in korea. Digestive Diseases and Sciences. 52, 2403-2409 (2007).
  12. Noh, R., et al. Clinical impact of viral load on the development of hepatocellular carcinoma and liver-related mortality in patients with hepatitis c virus infection. Gastroenterology Research and Practice. 2016, 7476231 (2016).
  13. Mendy, M., et al. Hepatitis B viral load and risk for liver cirrhosis and hepatocellular carcinoma in the Gambia, West Africa. Journal of Viral Hepatitis. 17 (2), 115-122 (2010).
  14. Abe, A., et al. Quantitation of Hepatitis B virus genomic DNA by real-time detection PCR. Journal of Clinical Microbiology. 37 (9), 2899-2903 (1999).
  15. Pas, S. D., Fries, E., De Man, R. A., Osterhaus, A. D., Niesters, H. G. Development of a quantitative real-time detection assay for Hepatitis B virus DNA and comparison with two commercial assays. Journal of Clinical Microbiology. 38 (8), 2897-2901 (2000).
  16. Ronsin, C., Pillet, A., Bali, C., Denoyel, G. R. -. A. Evaluation of the cobas ampliprep-total nucleic acid isolation-cobas Taqman Hepatitis B Virus (HBV) quantitative test and comparison to the versant HBV DNA 3.0 assay. Journal of Clinical Microbiology. 44 (4), 1390-1399 (2006).
  17. Sum, S. S. M., Wong, D. K. H., Yuen, J. C. H., Lai, C. L., Yuen, M. F. Comparison of the cobas taqman™ HBV test with the cobas amplicor monitor™ test for measurement of Hepatitis B virus DNA in serum. Journal of Medical Virology. 77 (4), 486-490 (2005).
  18. Lall, S., Choudhary, M. C., Mahajan, S., Kumar, G., Gupta, E. Performance evaluation of TRUPCR® HBV real-time PCR assay for Hepatitis B virus DNA quantification in clinical samples: Report from a tertiary care liver centre. Virusdisease. 30 (2), 186-192 (2019).
  19. Garg, G., et al. Presence of entry receptors and viral markers suggest a low level of placental replication of Hepatitis B virus in a proportion of pregnant women infected with chronic Hepatitis B. Scientific Reports. 12 (1), 17795 (2022).
  20. NIBSC-Code:10/266. . Standard for Hepatitis B Virus (Hbv) DNA for Nucleic Acid Amplification Techniques (NAT). , (2016).
  21. Kim, H., Hur, M., Bae, E., Lee, K. A., Lee, W. I. Performance evaluation of cobas HBV real-time PCR assay on Roche cobas 4800 system in comparison with cobas Ampliprep/cobas Taqman HBV test. Clinical Chemistry and Laboratory Medicine. 56 (7), 1133-1139 (2018).
  22. Madihi, S., Syed, H., Lazar, F., Zyad, A., Benani, A. Performance comparison of the artus HBV QS-RGQ and the CAP/CTM HBV v2.0 assays regarding HEPATITIS B virus DNA quantification. BioMed Research International. 2020, 4159189 (2020).
  23. . Nibsc-14/198 Available from: https://www.nibsc.org/ (2023)
  24. Guvenir, M., Arikan, A. Hepatitis B virus: From diagnosis to treatment. Polish Journal of Microbiology. 69 (4), 391-399 (2020).
check_url/fr/66249?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Bag, S., Ghosh, S., Lalwani, R., Vishnoi, P., Gupta, S., Dubey, D. Real-Time Polymerase Chain Reaction-Based Detection and Quantification of Hepatitis B Virus DNA. J. Vis. Exp. (202), e66249, doi:10.3791/66249 (2023).

View Video