Summary

Double Mont entier hybridation in situ d'embryons de poulet début

Published: October 27, 2008
doi:

Summary

Cette vidéo montre deux couleurs monter toute l'hybridation in situ, une méthode par laquelle le profil d'expression spatiale et temporelle des deux gènes différents peuvent être visualisées dans des embryons de poulet jeunes. Cette méthode a été initialement présenté par David Wilkinson, Domingos Henrique, Phil et David Ingham Ish-Horowicz.

Abstract

L'embryon de poulet est un outil précieux dans l'étude du développement embryonnaire précoce. Sa transparence, l'accessibilité et la facilité de manipulation, en font un outil idéal pour étudier l'expression des gènes dans le cerveau, le tube neural, et le cœur somite primordia formation. Cette vidéo montre les différentes étapes de 2-couleurs monter toute l'hybridation in situ; d'abord, l'embryon est disséquée de l'oeuf et fixés dans du paraformaldéhyde. Deuxièmement, l'embryon est traité pour préhybridation. L'embryon est ensuite hybridée avec deux sondes différentes, l'un couplé à creuser, et un couplé au FITC. Après hybridation pendant la nuit, l'embryon est incubée avec DIG couplé anticorps. Réaction colorée pour le substrat DIG est effectuée, et la région d'intérêt apparaît en bleu. L'embryon est ensuite incubée avec l'anticorps couplé au FITC. L'embryon est traitée pour une réaction de couleur avec le FITC, et la région d'intérêt apparaît en rouge. Enfin, l'embryon est fixe et traitées pour phtograph et le sectionnement. Un guide de dépannage est également présentée.

Protocol

Partie 1: Fixation des embryons Remplissez-vaisselle dissection avec de la glace froide DEPC PBS. Restez sur la glace. Ouvrez l'œuf en tapant la coquille avec une pince et retirez les morceaux de coquille. Retirer épaisse d'albumine avec une pince. Inclinez le sac vitellin avec une pince afin que les embryons grossière tournée vers le haut. Avec des ciseaux, couper un carré de vitellus autour de l'embryon. Aide d'une cuillère, retirer l'em…

Discussion

Le support 2-couleur d'ensemble de méthode d'hybridation in situ est utilisée pour déterminer à la fois la répartition spatiale et temporelle de l'expression génique, en utilisant un ou deux gènes d'intérêt. Les applications incluent l'évaluation des profils d'expression génique de nouveaux gènes (par exemple 1,2, ainsi que des changements dans l'expression des gènes insulte suivantes (manipulations d'embryons 3, 4 perles, et l'électroporation d'ADN ou d'ARN des…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par la Fondation Margaret M. Alkek au RHF.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Eggs Animal Charles River Premium Fertile  
Stereomicroscope Microscope Leica Microsystems MZ9.5  
Marsh Automatic Incubator Tool Lyon RX  
Hybridization Incubator Tool Hybaid Micro-4  
Adams Nutator orbital mixer Tool Fisher 14-062  
Curved Forceps (1) Tool Electron Microscopy Sciences 72991-4C  
Fine scissors Tool Fine Science Tools 14161-10  
Spoon Tool Fine Science Tools 10370-18  
Pasteur Capillary Pipette   Electron Microscopy Sciences 70950-12  
Microcapillary tube   Sigma P1049-1PAK Pull using vertical micropipette puller; blunt end with fine forceps
Microdissecting knife   Fine Science Tools 10056-12 Use to puncture cavities prior to in situ hybridization
Minuten pins 0.2mm diam   Fine Science Tools 26002-20 Keep pins together using a magnetic stirrer;
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base Reagent Dow Corning 0001986475 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
Diethylpyrocarbonate (depc) Reagent Acros Organics 10025025 Add 1ml depc to 1l PBS; shake; autoclave
16% PFA Reagent Electron Microscopy Sciences 15710  
Tween-20 Reagent Sigma P1379-100ML  
Proteinase K   Sigma P2308-5MG Stock at 10 mg/ml in depc-H2O in 10ul aliquots. Store at -20C.
Formamide, deionized Reagent Ambion 9342  
Yeast tRNA-25 mg Reagent Invitrogen 15401-011 Stock at 20 mg/ml in depc-H2O in 125ul aliquots. Store at -20C
Heparin Sodium salt Reagent Sigma H4784-250MG Stock at 50 mg/ml in depc-H2O in 100ul aliquots. Store at -20C.
SSC x20 pH5.5 Reagent Fisher PR-V4261  
EDTA (0.5M) PR-V4231 Fisher    
SDS Reagent Fisher BP166-100  
Maleic acid Reagent Fluka 63189  
Boehringer Blocking Reagent Reagent Roche Applied Sciences 11096176001 Use at 2% in MABT. To make, heat with MABT for 20 mn at 60C. Can make a stock and store in 1-5 ml aliquots at 20C.
Heat inactivated sheep serum Reagent Jackson Immuno 013-000-121 Dissolve in 10 ml H2O; heat 550C, 30 mn. Aliquot at 1ml, -20C.
Anti-Digoxigenin-AP, Fab fragments Reagent Roche Applied Sciences 11093274910  
NBT/BCIP stock solution Reagent Roche Applied Sciences 11681451001  
Anti-Fluorescein-AP, Fab fragments Reagent Roche Applied Sciences 11426338910  
2M Tris BP1759-500 Fisher    
Vector Red Alkaline Phosphatase Substrate Kit Reagent Vector Laboratories SK-5100  
1,2,3,4-tetrahydronaphthalene Reagent Sigma 429325-100ML Under hood

References

  1. Streit, A., Berliner, A. J., Papanayotou, C., Sirulnik, A., Stern, C. D. Initiation of neural induction by FGF signaling before gastrulation. Nature. 406, 74-78 (2000).
  2. Rodríguez Esteban, C., Capdevila, J., Economides, A. N., Pascual, J., Ortiz, A., Izpisúa Belmonte, J. C. The novel Cer-like protein Caronte mediates the establishment of embryonic left-right asymmetry. Nature. 401, 243-251 (1999).
  3. Psychoyos, D., Stern, C. D. Restoration of the organizer after radical ablation of Hensen’s node and the anterior primitive streak in the chick embryo. Development. 122, 3263-3273 (1996).
  4. Kawakami, M., Nakanishi, N. The role of an endogenous PKA inhibitor, PKIalpha, in organizing left-right axis formation. Development. 128, 2509-2515 (2001).
  5. Basch, M. L., Bronner-Fraser, M., Garcia-Castro, M. I. Specification of the neural crest occurs during gastrulation and requires Pax7. Nature. 441, 218-222 (2006).
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Citer Cet Article
Psychoyos, D., Finnell, R. Double Whole Mount in situ Hybridization of Early Chick Embryos. J. Vis. Exp. (20), e904, doi:10.3791/904 (2008).

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