Summary

Метилированный Иммунопреципитация ДНК

Published: January 02, 2009
doi:

Summary

Это видео демонстрирует протокол для метилированной иммунопреципитации ДНК (MeDIP). MeDIP является двухдневной процедуры, которые селективно экстракты метилированных фрагментов ДНК из генома образцов ДНК с использованием антител со специфичностью для 5-метилцитозин (анти-5 MC).

Abstract

Выявление закономерностей метилирование ДНК является обычной процедурой в изучении эпигенетика, как метилирование, как известно, оказывают значительное влияние на экспрессию генов, и участвует с нормальным развитием, а также болезни<sup> 1-4</sup>. Таким образом, способность различать метилированной ДНК и неметилированных ДНК имеет важное значение для создания профилей метилирования для таких исследований. Метилированный ДНК иммунопреципитации (MeDIP) является эффективным инструментом для извлечения метилированной ДНК из образца интерес<sup> 5-7</sup>. Образец всего за 200 нг ДНК достаточно для антитела или иммунопреципитации (IP), реакции. ДНК ультразвуком на фрагменты размером от 300-1000 б.п., и разделен на иммунопреципитации (IP) и ввода (IN) порциями. IP ДНК впоследствии тепла денатурированного и затем инкубировали с анти-5'mC, позволяя моноклональных антител связываться метилированную ДНК. После этого, магнитных гранул содержащих вторичные антитела с сродством к первичным антителом добавляются, и инкубировали. Эти бусины-связанными антителами будет связывать моноклональные антитела, используемые в первом шаге. ДНК связана с антителом комплекс (метилированной ДНК) отделен от остальной части ДНК, используя магнит тянуть комплексов из раствора. Несколько моет использованием IP-буфера Затем выполняется для удаления несвязанных, не метилированную ДНК. Метилированные ДНК / антитело затем переваривают протеиназы К переварить антитела, оставляя только метилированную ДНК нетронутой. ДНК, обогащенной очищают фенол: хлороформ добычи для удаления белка вещества и затем осаждаются и ресуспендировали в воде для дальнейшего использования. ПЦР методы могут использоваться для проверки эффективности MeDIP процедуры на основе анализа продуктов амплификации интеллектуальной собственности и В ДНК для регионов известны их недостаток и как известно, содержат метилированные последовательности. Очищенной метилированной ДНК может быть использована для локус-специфические (ПЦР) или генома (микрочипов и последовательности) метилирования исследований, и особенно полезен при использовании в сочетании с другими инструментами исследования, такие как ген профилирования выражения и массив сравнительной гибридизации генома ( CGH)<sup> 8</sup>. Дальнейшее расследование метилирование ДНК приведет к открытию новых эпигенетических цели, которая, в свою очередь, могут быть полезны в разработке новых терапевтических или прогностических инструментов исследования таких болезней, как рак, который характеризуется аберрантно метилированной ДНК<sup> 2, 4, 9-11</sup>.

Protocol

Выделения ДНК и подготовки проб ДНК из различных образцов (культивированных клеток свежемороженая, а также фиксированных формалином и залитые парафином ткани) может быть использован для MeDIP. Важно использовать высокоочищенного ДНК, не связанные белки, такие как гистоно?…

Discussion

Существует растущее осознание значительную роль метилирования ДНК играет в болезнь, поэтому развитие тесты для измерения этого изменения становятся все более важными 3, 12, 13. Техника MeDIP это поддается инструмент для скрининга на обоих целого генома и локус-определенного уровня <su…

Acknowledgements

Мы хотели бы поблагодарить членов Браун и Лам лабораторий для их участия в критике это видео и статьи. Работа выполнена при поддержке за счет средств от канадских институтов по исследованиям в области здравоохранения и Майкл Смит фонда исследований в области здравоохранения.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Biorupter sonicator Tool Diagenode UCD-200 TM  
1.7ml SafeSeal Microcentrifuge Tubes Other Sorenson BioScience 11510  
ND 3300 Spectrophotometer Tool NanoDrop    
Primary Antibody: Anti-5′-methylcytosine mouse mAb Reagent CalBiochem 162 33 D3  
Secondary Antibody: Dynabeads M-280 Sheep anti-mouse IgG Reagent Invitrogen 112-01D  
Magnetic Tube Rack Tool Invitrogen CS15000  
Mini LabRoller Tool Labnet International H5500  
IP Buffer       10 mM NaPO4 pH 7.0, 140 mM NaCl, 0.05% Triton X-100. Stored at room temperature
Digestion Buffer       10 mM Tris pH8.0, 100 mM EDTA, 0.5% SDS, 50 mM NaCl

References

  1. Beck, S., Rakyan, V. K. The methylome: approaches for global DNA methylation profiling. Trends Genet. 24, 231-237 (2008).
  2. Lu, Q., et al. Epigenetics, disease, and therapeutic interventions. Ageing research reviews. 5, 449-467 (2006).
  3. Zilberman, D., Henikoff, S. Genome-wide analysis of DNA methylation patterns. Development. 134, 3959-3965 (2007).
  4. Feinberg, A. P., Tycko, B. The history of cancer epigenetics. Nature reviews. 4, 143-153 (2004).
  5. Weber, M., et al. Distribution, silencing potential and evolutionary impact of promoter DNA methylation in the human genome. Nat Genet. 39, 457-466 (2007).
  6. Weber, M., et al. Chromosome-wide and promoter-specific analyses identify sites of differential DNA methylation in normal and transformed human cells. Nat Genet. 37, 853-862 (2005).
  7. Wilson, I. M., et al. Epigenomics: mapping the methylome. Cell Cycle. 5, 155-158 (2006).
  8. Gazin, C., Wajapeyee, N., Gobeil, S., Virbasius, C. M., Green, M. R. An elaborate pathway required for Ras-mediated epigenetic silencing. Nature. 449, 1073-1077 (2007).
  9. Karpinski, P., Sasiadek, M. M., Blin, N. Aberrant epigenetic patterns in the etiology of gastrointestinal cancers. Journal of applied. 49, 1-10 (2008).
  10. Maekawa, M., Watanabe, Y. Epigenetics: relations to disease and laboratory findings. Current medicinal chemistry. 14, 2642-2653 (2007).
  11. Vucic, E. A., Brown, C. J., Lam, W. L. Epigenetics of cancer progression. Pharmacogenomics. 9, 215-234 (2008).
  12. Egger, G., Liang, G., Aparicio, A., Jones, P. A. Epigenetics in human disease and prospects for epigenetic therapy. Nature. 429, 457-463 (2004).
  13. Jones, P. A., Baylin, S. B. The fundamental role of epigenetic events in cancer. Nat Rev Genet. 3, 415-428 (2002).
  14. Fraga, M. F., Esteller, M. DNA methylation: a profile of methods and applications. Biotechniques. 33, 632-649 (2002).
check_url/fr/935?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Thu, K. L., Vucic, E. A., Kennett, J. Y., Heryet, C., Brown, C. J., Lam, W. L., Wilson, I. M. Methylated DNA Immunoprecipitation. J. Vis. Exp. (23), e935, doi:10.3791/935 (2009).

View Video