Name: 어린 싹 센터의 높은 해결의 intravital 스트라이프 - 조명 현미경 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-04-09T21:20:00.000+00:00
Duration: 10 min 7 s
Description: 배우세요 다중초점 양광자 현미경을 이용한 고해상도 생체 내 영상 기법으로, 줄무늬 조명 패턴과 알고리즘을 활용하여 생쥐 림프접의 면역 반응을 정밀 관찰하는 방법입니다.

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우리는 C57BL / 6 B1-8 GFP 형질 전환 마우스를 제공하기위한 스트라이프 - 조명 방식, K. Rajewsky 및 A. Haberman의 개발 기간 동안 유익한 토론을위한 R. Heintzmann 감사합니다. 우리는 재정 지원에 대한 독일 부여 NI1167/3-1에서 Forschungsgemeinschaft (RN에), HA5354/4-1 및 SFB633, 프로젝트 A15 (AEH에) 부여 한 Rahel - 허쉬의 교제에서 샤리 (RN에)을 인정합니다. 우리는 특히 유익한 토론과 인프라 지원을위한 네트워크 JIMI을 인정

스트라이프 - 조명 TPLSM에 대한 멀티 빔 설치 여기서 사용 설치 이전 6,20 바와 같이, 특수한 멀티 빔 이광자 레이저 주사 현미경이다. 시스템은도 1에 도시되어있다. 접근법들은 단일 빔 주사를 수행하기 만 할 수있는 경우에도, galvoscanner 거울의 이동과 카메라의 획득을 동기화 할 수있는 다른 이광자 레이저 스캐닝 현미경에 적용 할 수있다 . 이 경우, 단점은 표준 PMT 기반 TPLSM의 수집 속도로 그러나 유사한 하부 수집 속도 일 것이다. 지금까지의 해상도와 콘트라스트 관한 한 최적의 품질을 달성하기 위해, 최저 및 광표백 광 손상 빠른 습득, 그것은 설치 프로그램의 다음 조정 단계를 참고하기를 권장합니다 : <ol><li> TISA 레이저의 레이저 파워를 확인 : 공장 출하 값과 previo과 비교, 100 %로 확인우리는 독서를 소유하고 범위 700-1,000 nm의에서 여기 파장 필요한 경우 그것이 그것을 사용합니다. </li><li> 티의 원격 제어 표시 테스트 : 사 빔 스플리터, 즉 0 %를 확인하고 100 % 설정. 100 % 남아있는 TISA 빔, 그리고 거기 확인하고 스테핑 모터 null의 위치를​​ 재설정합니다. TI는 : 사 빔 스플리터는 수직 빔의 경로에 수직 편광 레이저 빔 분할 하위 λ / 2 판과 편광판, 구성 하나가 여기에 대한 현미경으로 감독을, 다른 하나는 광 파라 메트릭 펌프하는 데 사용됩니다 발진기 (OPO). 자동으로 λ / 2 판, 티의 연속 조정 회전 : 사 및 OPO 전력을 각각 얻을 수있다. </li><li> 원하는 파장에 OPO를 조정하고, 출력 전력을 측정. 전원이 너무 낮은 경우 : 펌핑 파장을 최적화하고 일의 설정을 확인합니다 (티 W 4 사 레이저는 800 nm에서, 하나는 약 1,050-1,100 nm에서 OPO 빔의 W 0.8-1를 얻을 수 있어야합니다)전자 거울과 삼진 결정. OPO가 원하는 파장의 출력에서​​ 공진 전원이 증가 할 때까지 권장되는 최적의 차트 나 그래프를 자주 사용할 수있는 값, 다음 미세 조정을 선택합니다. <ol type="i"><li> 전원이 여전히 낮 으면, 넷 액세스 미러 조절 노브로 OPO의 접근이 거울을 조정한다. 아주 천천히, 그리고 아주 작은 움직임으로, 전면과 끝 거울 교대로이 단계를 수행합니다. </li></ol></li><li> 사 및 / 또는 OPO 빔이 적절한, 중앙 위치에서 항목 거울 조회수 : 티가 있는지 확인합니다. <ol type="i"><li> 사 광선 : 백서 (! 매우 반짝 또는 반영하지 않음)의 조각과 OPO 빔을 관찰하기위한 적외선 뷰어 및 더 높은 파장 티를 사용합니다. <ol type="i"><li> NIR 티 작업을 할 때 보호 안경을 착용 : 사 광선 (일반적으로 720-750 나노 미터까지의 평균 사람을 볼 수 있습니다). </li></ol></li><li> 미시간하도록 정렬 절차를위한 가능한 낮은 레이저 출력 (들)을 설정잠재적 인 눈 손상을 nimize. </li><li> 동공이 수축되도록 항상에 실내의 주변 조명을 유지합니다. </li><li> 사 빔이 스캔 헤드를 입력 : 레이저 파워 미세 조절 티 때 아직 적용되지 λ / 2 판과 편광판, 밖으로 구성된 감쇠기가 있음을 유의하십시오! </li></ol></li><li> 엔트리 포인트 다이어프램은 티타늄에 의해 중간에 명중되어 있는지 확인 : 사 및 / 또는 OPO 빔; 없는 경우, 레이저 빔이 스캔 헤드 들어가기 전에, 마지막 두 개의 거울을 조정한다. <ol type="i"><li> IR 뷰어 및 흰색 (반사 / 만 반짝하지!) 종이의 작은 조각을 사용합니다. </li><li> 레이저 빔의 위치가보다 정확하게 판단 할 수 있도록 항상 현미경 진입에 진동판을 닫는다. 중요 : 6 단계로 진행하기 전에 다이어프램을 다시하는 것을 잊지 마세요! </li></ol></li><li> 따라서 현미경에 반사 된 레이저 빔의 빛 경로를 조정합니다. 작은 세그먼트에서이 작업을 수행하고 반복적 인 빔 워싱턴을 수행lking. <ol type="i"><li> 대물 렌즈의 광 출력이 충분하지 않은 경우 전체 빛의 경로를 확인합니다. </li><li> 긴 유휴 기간, 주요 수리, 광학 요소의 교체 후 처음으로 시스템을 사용할 때는 항상 빛의 경로를 확인하거나 문제는 출력이 존재하는 것으로 의심되는 경우. </li></ol></li><li> 그들은 먼지 특히 것을, 모든 활성 광학 표면이 깨끗한 지 확인하십시오! 표면이 먼지 층으로 피복하는 경우, 파면 심지어 대물 렌즈를 입력하기 전에 왜곡 및 결과 레이저 빔은 샘플의 선명한 이미지를 제공하지 않을 것이다! <ol type="i"><li> 필요한 경우, 에탄올, 이소프로판올에 적신 렌즈 종이의 접힌 부분으로 거울을 청소합니다. </li></ol></li><li> 빔이 광 경로를 설정 한 후, 프리즘 기반 펄스 압축기의 끝에 직접 진입 미러 위에 위치 미러로 다시 도착한 것을 확인한다. 여기에서, 빔이 반사되어 나광 멀티플렉서 (BM) n을. </li><li> 레이저 빔은 광대역 50 % 투과 및 50 %의 반사를위한 요구에 맞도록 레이저 빔의 편광을 변경하는, 직접 λ / 2 판 전에 빔 멀티플렉서의 입구에 위치되어 다이어프램 나가면 체크 BM 내. <ol type="i"><li> 먼저 빔 위치를보다 정확하게 판단 할 수 있도록 조리개를 닫고 BM 항목에서 현미경 및 기타에 항목의 하나, 즉 두 개의 다이아 프램 사이 빔 산책을 수행합니다. 다른 하나의 빔 스캐닝 현미경 다이어프램은 XY 스캐너의 진입에 위치해야한다. </li><li> 빔 폐쇄 다운 개구의 중심에 충돌하지 않으면, BM 엔트리 조임 바로 앞에 배치 된, 상기 언급 된 거울을 조정한다. 중요 : 10 단계로 진행하기 전에 다이어프램을 다시하는 것을 잊지 마십시오. </li></ol></li><li> 다이어프램이 재개으로 레이저 빔이 BM 거울에 안타 있는지 확인자신의 중간 지점. BM의 복잡한 빛 경로의​​ 다른 부분을 차단하지 않도록 종이의 좁은 스트립을 사용하십시오! </li><li> 평행 편광에 대한 최고 거울 &quot;P&quot;, 수직 편광 &quot;S&quot;에 대한 바닥 거울 : 빔 출구 거울의 중앙을 명중 있는지 확인합니다. 그렇지 않으면, BM 전에 엔트리 거울을 조정한다. </li><li> &quot;S&quot;와 &quot;P&quot;는 편광 빔 그룹 편광판 큐브를 입력하고 XY 스캐너에 항목에서 적절하게 중첩 할 수 있는지 확인합니다. 경우에 다음과 같이 단일 빔 스캐닝 현미경을 사용하는 건너 뛰기. </li><li> 레이저 광은 중앙에서 스캔 및 튜브 렌즈를 통과하여 대물 렌즈 &#39;초점면의 중간을 통해 얻을 수 있는지 확인합니다. 중요 :이 단계는없는 주차 위치에서 중심 위치에 레이저 광을 수행되어야! <ol type="i"><li> 목표 도구 ( &quot;황소의 눈&quot;)와 대물 렌즈를 장착하고 레이저 빔이 중간에 대상을 안타 확인하고 있는지 여부조명도 있습니다. </li><li> 이 경우 것으로 보인다 경우, BM 전에 조리개를 닫고 원형의 간섭 패턴이 나타나는 경우 중간 (간섭 최소)에서 검은 색 원으로 확인합니다. <ol type="i"><li> 황소의 눈의 중심을 기준에 상당한 변화가있을 경우 항목의 미러를 조정합니다. </li></ol></li></ol></li><li> 지금 20X 물 침지 렌즈로 예를 들어 대물 렌즈와 황소의 눈을 교체합니다. <ol type="i"><li> 흰색 종이로 출력 광 필드를 확인합니다. 이 밝고 균일하고 중앙에 위치해야합니다. </li><li> 출력 전력을 측정 : 100 % 티타늄을 펌핑 100 % OPO에 : 사 (4 W), 하나는 약 얻어야한다. (여기에 사용 된 현미경) 1,100 nm에서의 렌즈 후 100 ~ 150 mW의. 낮은 레이저 힘은 멀티 빔 SI-TPLSM을 수행하기에 충분하지 않습니다. 단일 빔 주사 SI-TPLSM의 경우, 5 ~ 10 ㎿가 충분합니다. 레이저 빔은 scanne 않고, 중앙 위치에 남아 있어야D! </li></ol></li><li> MB-SI-TPLSM을 수행하는 경우 다음과 같이 BM에 거울을 맞 춥니 다 : <ol type="i"><li> 무대에서 균일하게 형광 샘플, 예를 들어 적색 형광 슬라이드를 놓고 샘플 내부 만 (대물 렌즈 &#39;앞에 즉, 닫기) 표면 근처의 레이저 빔을 초점을 맞추고있다. </li><li> 멀티 빔 모드로 현미경을 설정하고 시작 부분에 빔의 수, 바람직하게는 하나의 빔, 편광, 예를 들어, &quot;P&quot;를 선택합니다. <ol><li> 형광 슬라이드 촬상하여 레이저 빔을 찾기 : 오픈 &quot;P&quot;셔터를 설정하고 빔을 포커싱하는 동안 연속적으로 CCD 카메라를 실행. </li><li> 빔이 중앙 위치에 있고, 스캐너의 전원이 꺼져있는 것을 확인하십시오. 빔이 검색되지 않습니다 있는지 확인합니다! </li><li> 카메라 칩의 중앙 부근에 밝은 반점을 찾아 빔을 찾을 수 있습니다. </li><li> 스폿이 화상면의, 즉 밝고 선명해질 때까지 상기 빔을 초점현미경은 카메라 칩의 위치에 대응하고; 스폿이 포화되지 않도록 레이저 출력을 감소시킨다. 잘 정렬 된 시스템이 레이저 전원이 한 빔 모드 (약 0.6 mW의 레이저 전원이 작동합니다)에서 작업 할 때 인근 이상이어야한다는 것을 의미한다. </li><li> 그 자리는 센터 떨어져 크게 경우, 앞의 BM (또는 단일 빔 스캔 스캐너를) 미러를 조정하여 가까운 센터로 이동합니다. </li><li> 또한, 즉 &quot;S&quot;빔 다른 편광을 정렬 할 때, 이제, 2 - 빔 모드로 전환 &quot;S&quot;셔터를 열고 만 &quot;S&quot;셔터가 열려있는 경우 (하나의 빔이 볼 수있는 빔의 위치를 검사 ). </li><li> 완료되면, 4 빔 모드로 전환하고 &quot;P&quot;편광 모드 ( &quot;P&quot;셔터 개방)를 사용합니다. 이제 두 빔릿가 나타납니다. </li><li> 두 빔릿 완벽하게 카메라의 뷰의 아래쪽 가장자리에 평행하고, 떨어져 2.8 μm의 수를 설정할 수 있도록 준비. <ol type="i"&gt; <li> 이들이 적절하게 정렬되지 않으면, BM의 제 1 미러를 조정한다. </li><li> 두 개의 빔이 음 분리와 완벽하게 수평으로 배열 2.8가 될 때까지 대신 거울을 이동하는 두 개의 주변 장치 나사를 사용, 중간에 나사를 정렬하지 마십시오. </li></ol></li><li> 이제 &quot;P&quot;편광의 8 - 빔 모드로 전환하고, 4 빔릿 2.8 UM에서 등거리이고, 이미지의 하부 에지에 평행하게 배치 될 때까지 제 BM 밀러 (도 빨간 점없이)를 조정한다. </li><li> 각각 32 빔 모드, 3, 4 BS 거울을 조정 - 16에서 반복합니다. SI-알고리즘, 간단한이 최소 - 최대 (힐로) 알고리즘되고,이 가정에 기초하기 때문에 빔릿 등거리이어야하는 것은 중요하다. </li></ol></li></ol></li><li> 불균일 한 구조, 예를 들어 크로스 스테인드 Convallaria 뿌리와 균일하게 형광 샘플을 교체합니다. <ol type="i"><li> w, 여기 빔의 주차 위치로 이동HICH는 일반적으로 스캐너 좌표, 예를 들어 (10,000 10,000)의 큰 값에 배치됩니다. </li><li> CCD 카메라와 함께 (멀티 빔) 이미지를 스캔합니다. 이미지가 선명한 유니폼과 직선이 나타나는지 확인합니다. </li><li> 이미지를 회전 것 같으면 카메라를 조정 : 이미지가 정리 될 때까지 (! 온유) 손으로 축 방향으로 수직 축을 중심으로 카메라 본체를 비틀어. </li></ol></li><li> 여기 패턴, 즉 줄무늬 화상을 생성하기 위해 스캐닝 프로세스를 제어하기 위하여 XY 스캐너를 시작. <ol type="i"><li> 멀티 빔 주사의 경우, 즉, Y 스캐너의 미러를 이동. 이차 줄무늬 화상을 생성하는 방식으로 빔릿 라인에 수직. </li><li> 단계 17.1에 설명 된대로 시야가 발생합니다. 빔 렛 라인이 두 배로 빔릿은 전체 라인을 따라 등거리되는 것을 보장하는 위치로 x-스캐너의 미러를 이동하여 스캔 루틴을 연장 너무 작다. 정확한 움직임을 반복합니다x-스캐너 미러는 스트라이프 확대 화상을 생성하는 이동 Y 스캐너 미러의 전후. </li><li> 원하는 스트라이프 화상을 생성 - 과학자에 의해 정의 - 단일 빔 주사의 경우, 등거리의 위치에 반복적으로 x-스캐너 미러 움직임-Y 스캐너 미러의 움직임을 번갈아. </li><li> 일정 속도 (감소 가속 / 감속)에 대한 Y-스캐너 거울 명령의 움직임과 최대 속도 (최대 가속 / 감속)의 X-스캐너 거울 하나에 사용할 수 있는지 확인하십시오. </li></ol></li><li> 자동으로 획득하고 카메라 (현장 검출기)와 스트라이프 이미지를 저장합니다. 따라서, 스캐너와 카메라를 동기화 및 마스터 트리거로 스캐너를 사용한다. </li><li> 줄무늬 화상을 취득 반복은 다음과 같이 다른 위치에서 x-스캐너의 미러를 이동하여 (프로토콜 17에 기재된 주사 프로토콜) <ol type="i"><li> 충분히 반복 단계 사이의 적절한 단계 길이 선택두 개의 연속 된 빔릿 (이 경우 2.8 μM 및 스캐너 미러의 하나의 단계가 25 nm의 동일) 사이의 거리를 커버하는 두 개의 연속 스트라이프 이미지; 조금 중복을 허용하는 것이 바람직 할 수 있으며, 추가로 0.3 ~ 0.4 μm의 즉. </li><li> 주어진 파장에서 측 방향 해상도 한계와 일치 값 x-시프트를 설정한다. 예를 들어, 이동, 12 또는 13 교대 당 X-스캐너 거울의 10 단계를 사용하여지도에 가장 축이 시스템의 측면 해상도 결과 모두. 번호가 사용되는 시스템에 가장 적합한 구조화 된 슬라이드, 예를 들면 Convallaria 뿌리 슬라이드, 확인하십시오. </li><li> Convallaria 이미지가 선명해질 때까지이 두 값을 최적화 : 계산 된 SI 이미지에서 라인 프로파일 도구를 사용하여 라인 프로파일 (Convallaria 세포벽에서 형광 신호이다)의 폭과 비교. </li><li> 스캐너의 움직임과 동기화 각 스트라이프 이미지를 획득하여 따로 저장, 예를 들어, </EM&gt; TIFF 또는 이진 파일로. </li></ol></li><li> 평가 루틴의 행렬, 즉 3 차원 매트릭스로 줄무늬 이미지의 전체 집합을 열고 고해상도 SI-이미지의 2D 매트릭스를 생성하는 최소 - 최대 알고리즘 또는 푸리에 변환 알고리즘 중 하나를 사용합니다. 알고리즘은 이전에 세부 (20)에 설명했다. </li></ol> 의 intravital 이미징 마우스 예방 접종 및 준비 동물 실험은 동물 복지 (LAGeSo, Landesamt FÜR 아퍼 싶게 Soziales, 베를린)에 해당하는 국가위원회에 의해 승인되었고, 현재의 지침과 규정 (동물 실험 라이센스 G0153/08)에 따라 수행되었다. <ol start="21"><li> 4 전에 설명한대로 오금 림프절 및 이미징 필드의 제조에서 본원 중심 응답 유도를 수행 하였다. immunomagnetically의 비장에서 B 세포를 정화 B1-8 + / + Jκ - / -와 B1-8 + / + Jκ의 B 세포 - / - GFP + 마우스. </li><li> / - + / - + Jκ ⅛ B1-8을 사용하여&gt; 95 %의 순도로 정맥 3 × 106 NP 특정 B 세포를 주입 GFP + 및 ⅞ 비 형광 B1-13 + / + Jκ - / - C57BL / 6받는 소재 . </li><li> 셀 전송 후 어느 날 NP-CGG 오른쪽 뒷다리 음식 패드에 완전 프로 인트 아쥬 반트 (CFA) 유화 (니트로 페닐 - 닭 ɣ 글로불린)의 10 μg과받는 사람 면역. </li><li> ATTO590 - 숙신 에스테르와 anti-CD21/CD35 항체의 라벨 Fab 단편. <ol type="i"><li> , 생체 내에서 싹 센터에서 여포 수지상 세포의 네트워크 (FDC)을 강조의 intravital 분석이 수행되기 전에 쥐 12 ~ 24 시간의 오른쪽 뒷다리 발바닥에 형광 색소 표지 Fab 단편의 10 μg을 주입합니다. </li></ol></li></ol> 다음 단계는 conside해야의 intravital 이미징을위한 오금 림프절 (하루 8 ~ 10 예방 접종 후)의 준비를 위해 빨간색 : <ol start="25"><li> 케타민 / 자일 라진의 IP 주입, 자신의 체중에 따라 양에 마우스를 마취. </li><li> 전체적인 촬상 기간 동안 마취 깊이를 모니터링하기 위해 테스트 반사. </li><li> 다시 다리, 엄격한 마우스의 오른쪽 측면을 면도하고 완전하게 남아있는 머리카락을 제거하기 위해 제모 크림을 사용합니다. </li><li> 주요 우측 대퇴 전자 수정 : 손가락 뼈 칩을 찾은 작은 흰색 삼각형 모양의 밴드가 나타날 때까지 가위로 작은 피부 절개를 설정합니다. </li><li> 제한 기의 날카로운 핀셋이 근막 아래 뼈 칩을 클램프. </li><li> 이빨 핀셋을 사용하여 요추 영역에서 척추를 고정합니다. </li><li> 제한 수단을 마우스 오른쪽 뒷다리를 고정하고 나사를 조입니다. </li><li> 올바른 위치에있는 다리를 유지하는 테이프의 꼬리. </li><li> 허벅지의 꼬리 측면에서, 지역 유명 슬와 정맥 차가운 제품으로, 피부에 절개를 만들RS 조직, 무딘 핀셋 기본 조직으로부터 피부를 분리하고 말단에 인접한에서 슬와 정맥을 따르십시오. </li><li> 무딘 집게를 사용 림프절을 노출 (노출 동안 PBS에서 림프절을 계속) 미세 림프관을 보호하기 위해 절단 피하려고. </li><li> 림프절 주위에 진공 그리스의 원형을 만들어, PBS에이 웅덩이를 입력합니다. </li><li> 그 위치에 커버 슬립을 넣고 온도계 프로브 (그렇지 않으면 셀 속도가 극적으로 변화 할 것이다, 37 ° C 온도에서 보관) 놓습니다. </li><li> 커버 슬립의 위쪽 가장자리를 따라 진공 그리스의 원을 추가합니다. </li><li> , 진공 그리스에서의 위치에 가열 코일을 넣어 이전과 비슷한 방식으로 실을 만들고 목표로 찍어 유리 커버 슬립에 물 / PBS를 추가합니다. </li><li> 치사량에 케타민 / 자일 라진의 투여 량을 증가하고있는 동안 촬영 한 후, 마우스는 자궁 경부 전위 다음으로, 마취에 보관됩니다. </li></ol>

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</ol>

폴커 안드레 독일 LaVision 바이오텍 GmbH의 빌레펠트의 주주입니다. 다른 저자는 이익의 충돌이 없습니다.

의 intravital 광학 영상의 목적은 동적으로 기능적 조직과 건강과 질병 5 장기의 기능을 이해하기 위해 세포 운동성 및 상호 작용을 시각화하는 것입니다. 이러한 다중 광자 레이저 주사 현미경을 달성하기 위해 가장 강력한 기술은, 아직, 그 공간 해상도를 제한 전면 왜곡 산란 느린 취득 photobleaching에 및 광 손상을 거절 관련된 한계를 극복 대조뿐만 아니라 시간 해상도를 가지고 . 이 성공적인 나은 여진을 달성하기 해법 (및 발광) 깊은 조직보다 공간적 해상도에 이르는, 콘트라스트 증가 (증가 된 신호에 증가 된 신호 - 대 - 잡음 비) 및, 따라서, 감소 광표백 및 광 손상에 광자 관리가있다 : 적응 광학 방식과 더 이상 여기 파장의 사용 - 조정 가능한 적외선 여기 6. 지난 10 년, 파면 대응의 개념적응 광학으로 ction의 다중 광자 현미경으로도 바이오 광학 영상에 천문학에서 전송하고있다. 처음 적응 광학은 ...

두 광자 레이저 스캐닝 현미경 (TPLSM)는 적외선 초단 펄스 여기 1 관련 깊은 조직 이미징을위한 장점과 함께, 각종의 운동과 상호 작용 패턴을 공개하여 단일 세포 수준에서 중요한 프로세스에 대한 우리의 관점을 혁명 동물에게 2-5 살아있는 세포의 부분 집합. 그러나, 현재의 기술은 건강과 질병에있는 조직 내에서 세포 반응의 분자 기초에 대한 전용 스파 스 정보를 렌더링하기 때문에, 새로운 치료 전략을 개발하기위한 전제 조건으로 장기의 기능과 장애의 메커니즘을 규명하는 것은 여전히​​ 불충분하다. 현재의 기술은 산란에 의한 수백 미크론의 공간 만 창을 가능하게하고, 공간 해상도 및 성인 동물의 매우 컴팩트 한 조직에서 특히 명백하다 신호대 잡음비 (6), 프런트 왜곡 효과 거절. 이러한 산란 및 파면 왜곡 효과는 매우 이질적인에 기인3D 공간 해상도의 깊이 의존 열화에 대한 첫 번째 단계에서 주요한 조직의 굴절률 이방성의 디 분포, 그리고 마지막 탄도 여진 광자, 신호 대 잡음비의 손실이 예에서 발생 된 신호의 총 손실이다. bioscientific 의치 깊은 조직 애플리케이션의 관점에서, 이는 신호 대 잡음비의 감소가 시스템을 간과하는 결과가 발생하는 반면 해상 불량 거짓 양성 상호 작용을 초래할 것이기 때문에 현재의 기술이 명백하게 셀룰러 통신을 공개 할 수없는 것을 의미 희미한 구조 사이의 상호 작용. 명백하게 동적 방식으로 셀룰러 상호 작용을 검출하기 위해, 높은 공간 해상도 향상 깊은 조직 내에서 필요하다. 예 특수 수치 알고리즘 제 여기 상태의 고갈에 예를 들면 구조 조명 접근법에 기초하여 현재 도입 강력한 nanoscopy 기법 </em&gt; STED, RESOLFT, 또는 분자 현지화에, 예를 들면 dSTORM, PALM은 고정 된 세포뿐만 아니라 라이브 세포 배양 7에서 여러 응용 프로그램을 발견했다. 그러나, 조직 섹션, 생체 조직과 유기체에 이러한 응용 프로그램을 확장하기 위해 우리는 여전히 심각​​한 기술적 인 어려움을 극복해야합니다. 이광자 여기에서는 서로 다른 파장으로뿐만 아니라 여기에 대한 단일 파장 (sw2PE-STED)로 STED 및 배출 동일에서 각각 매립 셀 09과 뇌 조각 8 또는 인공 매트릭스에서 측 방향 해상도를 향상시키기 위해 적용된 자극 표준 TPLSM으로 축 해상도. 하나의 광자 STED를 사용하여, 돌기 쪽의 역학은 67 내지 10 nm의 해상도에서 생활 Thy1 EGFP 마우스의 뇌 피질 (최대 15 μm의 깊이)의 표면에 이미지가 될 수있다. 발달 생물학을위한 다양한 도구를 두 배 향상 차원을 제공하는 다 초점 구조화 조명 현미경에 의해 제공됩니다해상도. 그러나,이 기술은 단지 이러한 제브라 피쉬 배아 (11)로서 광 산란 낮은 성향 유기체에서 사용될 수있다. 그러나 이러한 기술 중 어느 것도 출산 후 증상과 질병의 생물 의학 및 임상 연구에 중요한 모델입니다 마이크로 미터의 수백에서 성인 동물의 높은 산란 조직에 적용 할 수 없습니다. 점 분포 함수 (PSF), 즉 회절 한정 파면 형상을 계산하는 데 사용되는 근사 독립, 렌즈를 포커싱 한 후, 광축 (축선 방향 해상도)을 따라 PSF의 폭보다 적어도 세 배 더 크다 광축 (측 방향 해상도) (12)에 수직 인 PSF 폭. 상당히, 특히 눈을 따라 훨씬 더 큰 PSFS, 선도 깊은 조직 이미징에 초점을 맞춘 전자파의 파면 형상을 수정 니케 계수에 의해 정량화 다른 순서의 앞에 왜곡 웨이브알은 13 ~ 15 축. 따라서, 회절 법 및 파면 왜곡 효과 모두는 깊은 조직 이미징 제한 요소로서, 광축을 따라 해상도를 가리. nanoscopy 기술이 회절 한계를 반작용 초점 반면 만, 축 방향 해상도 및 회절 파면 왜곡 효과를 모두 반작용에 의해 콘트라스트를 향상시키는 기술은 고해상도의 intravital 이미징을 위해 필요하다. 이상적으로,이 기술은 충분히 빨리 세포 역학의 모니터링을 허용 할 수도 있어야한다. PSF의 수차 및 TPLSM에 적응 광학을 사용하여 대비 손실의 실시간 보정이 광범위하게 연구 및 지난 십 13,14,16-18 개선하고 따라서 탄도 여기의 더 나은 관리에 이르는 최선의 현재의 선택을 한 14 광자. 아직도 인해 대부분의 전면 수정이 적응 광학에 사용되는 접근법 파도는 사실을 반복하고 그들이 하 것이있다인해 조직의 굴절률의 높은 이질성으로 작은 면적 (거의 없음 10 × 10 ㎛ 2)을 반복 할 적이, 수집 속도는 촬상 세포 운동성 및 통신을 위해 필요한 것보다 훨씬 낮다. 또한, 적응 광학의 물리적 한계는 TPLSM 여전히 회절에 의해 결정됩니다 향상. 조명 (SPIN) 및 검출 측 (SPADE)의 시간적 공간적으로 변조 된 변조 이론적 해상도를 향상시키기 위해 레이저 주사 현미경에 적용하는 것이 제안되어왔다. 의 intravital 영상에서의 실용적인 응용 프로그램은 여전히 19을 입증 할 수 남아 있습니다. 이와 함께, 성인 살아있는 동물의 깊은 조직 영상의 해상도 향상 기술의 개발에 대한 높은 수요가있다. 본 연구에서, 우리는 멀티 빔 스트라이프 - 조명 다중 광자 레이저들에서 스캐닝 과정을 제어함으로써, 여기 패턴의 공간 변조를 달성통조림 현미경 (MB-SI-MPLSM) 20. 여기 빔 단면이 공간적으로 변조 된 구조화 된 조명 방식, 반대로, 우리는 여기의 공간 변조를 달성하기 위해 단지 스캐닝 과정을 사용한다. 긴 파장으로 여기를 확장하여, 우리는 독립적으로 광 중에서, 높은 조직 (예, 림프절, 자유 산란 경로 47 μM 6) 비산 깊은 조직에서의 공간적 해상도 및 신호대 잡음비를 모두 향상시킬 수있다 우리가 감지 비선형 신호, 예를 들어, 형광, 두 번째 고조파 발생 또는 다른 주파수 현상을 혼합. 900 nm의 최대 여기 파장에서이 방법을 사용하여 우리는 마우스 림프절의 싹 센터에서 몇 분자의 규모에 동적으로 이미지 세포 단백질 구조 할 수 있습니다. 따라서, 우리는 더 나은 항 프로빙 프로세스에 모낭 수지상 세포 및 B 세포의 표면에서 항원 운반 유닛 간의 상호 작용을 시각화 할차 림프 기관의 면역 반응 중에 세대.

<table><tbody><tr><td>ATTO590 &ndash; 커플 링을위한 NSH</td><td>ATTO Tec, 독일</td><td>AD-590-35</td><td></td></tr><tr><td>CD21 / 35 &ndash; 팹 조각 &ndash; ATTO590</td><td>DRFZ, 베를린</td><td></td><td>커플링 반응은 우리 기관의 중앙 실험실에서 수행되었습니다.</td></tr><tr><td>B1-8 Jk-/- EGFP+</td><td>Prof. Anne Habermann, Yale Univ., CA, US</td><td></td><td>Jackson Laboratories(JAX)에서도 찾을 수 있습니다.</td></tr><tr><td>EasySep 음성 선택 마우스 B 세포 농축&nbsp;</td><td>StemmCell Technologies, 독일</td><td>19854</td><td></td></tr><tr><td>폴리스티렌 비즈 (605), 0.2 &마이크로; m</td><td>Life Technologies, 독일</td><td>F8803</td><td></td></tr><tr><td>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>TriMScope I</td><td>LaVision Biotec, Bielefeld, Germany</td><td></td><td></td></tr><tr><td>OPO (manual version)</td><td>APE, Berlin, Germany</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ti:Sa Laser Chameleon Ultra II</td><td>Coherent, Duisburg, Germany</td><td></td><td></td></tr><tr><td>수침 대물 렌즈, 20X, NA 0.95, IR, WD 2 mm</td><td>Olympus Germany, 함부르크, 독일</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

어린 싹 센터의 높은 해결의 intravital 스트라이프 - 조명 현미경

Highly Resolved Intravital Striped-illumination Microscopy of Germinal Centers

의 intravital 깊은 조직 다 광자 현미경으로 세포 통신을 모니터링하는 것은 건강과 질병에있는 두꺼운 조직 샘플 및 기관 내에서 면역 세포의 운명을 이해하기위한 열쇠입니다. 다 광자 현미경의 주사 패턴을 제어하고 적절한 수치 알고리즘을 적용하여, 우리는 더 나은 축 해상도 및보다 향상된 신호대 잡음비, 즉 콘트라스트를 3 배 달성 저희 활성화하는 스트라이프 - 조명 방식을 개발 표준 다 광자 현미경에 비해 높은 림프 기관의 조직을 산란 내에서 100 μm의 조직 깊이. 촬상 깊이 인해 전계 감지기의 사용에 약간 낮았다 반면 수집 속도뿐만 아니라 광표백 광 손상 및 효과는 표준 광 곱셈기 기반의 기술과 유사했다. 스트라이프 - 조명 방식을 사용함으로써, 우리는 보조 모낭 수지상 세포에 면역 복합체 침착의 역학을 관찰 할 수있다 ̵1; 본원 센터에서 몇 가지 단백질 분자의 수준에서.

림프절의 공간 해상도 효과적인 점 확산 함수 (EPSF)의 치수는 현미경 (12)의 공간 해상도에 대응한다. 우리는 (CCD 카메라에 의한) 설립이 광자 레이저 스캐닝 현미경 기술, 즉, 전계 검출 TPLSM에 비해 트립 MB-SI-TPLSM 의해 림프절에서 콜라겐 섬유의 제 고조파 발생 신호를 획득하여이 삼차원 함수를 측정하고, 포인트 검출 TPLSM (PMT의에 의해). 이러한 측정으로부터, 시료의 표면에서, 양 측 방향 및 축 방향의 해상도가 회절 이론 (20)에 의해 예측 된 기대 값과 일치하는 것이 명백해진다. 그러나, 증가하는 촬상 깊이로함으로써 매우 다양한 굴절률을 가진 매체를 통해 여기 및 방출 방사선 양자의 광로가 증가함에 따라, 공간 해상도는 앵드 상당히 저하화질 등 고용 설정의 (그림 2). MB-SI-TPLSM으로 우리는 독...

성체 마우스의 림프절에서 120 ㎛의 깊이까지의 향상된 콘트라스트와 높은 해상도의 intravital 촬상 공간적 다중 초점 이광자 현미경의 여기 패턴을 변조함으로써 달성된다. 100 μm의 깊이에서 우리는 따라서 산란 및 회절 한계를 우회, 487 ㎚의 해상도 (측면) 및 551 nm의 (축 방향)을 측정 하였다.

Monitoring cellular communication by intravital deep-tissue multi-photon microscopy is the key for understanding the fate of immune cells within thick ...

이 절차의 전반적인 목표는 고해상도 생체 내 이미징을 위해 표준 이광자 현미경을 준비하는 것입니다. 이는 먼저 레이저 조절을 포함한 현미경 정렬을 통해 수행됩니다. 다음으로, 완벽한 빔 형태와 빔 리팅 배치를 구현하기 위해 빔 멀티플렉서를 정렬합니다.멀티빔 스캐닝의 경우, 줄무늬 조명 패턴으로 시료를 스캔하여 원본 이미지를 획득합니다. 마지막으로, 알고리즘을 적용하여 고해상도의 최종 이미지를 계산합니다. 궁극적으로, 줄무늬 조명 현미경법은 이전의 생체 내 현미경으로는 접근할 수 없었던 생쥐 림프절 내 생식 중심에서의 면역 체계 행동의 세부 사항을 보여주는 데 사용됩니다.구조광 조명이나 국소화 현미경과 같은 기존 방법과 비교했을 때 이 기술의 주요 장점은 살아있는 샘플의 매우 깊은 조직 깊이까지 적용할 수 있다는 점입니다. 레이저 빔 모양을 수정할 필요가 없으므로, 모든 다광자 현미경에 매우 간단하고 쉽게 구현할 수 있습니다. 광퇴색 수준을 최소화하고 획득 속도를 최대화하면서 최적의 해상도와 대비 품질을 달성하기 위한 다중 빔 이광자 줄무늬 조명 현미경의 구성이 여기에 제시되어 있습니다.텍스트 프로토콜에 설명된 대로 설정을 조정하십시오. 조정을 마친 후, 빔이 프리즘 기반 펄스 압축기 끝단에 있는 진입 거울 바로 위에 위치한 거울로 다시 돌아오는지 확인하십시오. 여기서 광 경로가 설정되면, 빔은 빔 멀티플렉서로 반사됩니다.스캐너를 끈 상태에서 다광자 현미경으로 다중 빔 스트라이프 조명을 수행하는 경우, 균일하게 형광을 띠는 시료를 스테이지 위에 놓고 레이저 빔을 시료 내부의 상단 표면 근처, 즉 대물렌즈 전면 렌즈와 가까운 곳에 초점을 맞추어 빔 멀티플렉서의 미러를 정렬하십시오.현미경을 멀티 빔 모드로 설정하고 빔의 수와 편광을 선택하십시오. 예를 들어, 형광 슬라이드를 이미징하여 P 빔을 찾으려면 P 셔터를 열고 빔의 초점을 맞추는 동안 CCD 카메라를 연속적으로 작동시켜 빔이 중앙 위치에 있는지 확인하십시오. P 빔을 정렬할 때는 64 빔 모드로 전환하고 해당 셔터를 여십시오.빔의 위치를 확인합니다. 1번부터 5번까지의 빔 멀티플렉서 거울을 조정하여 빔 조명 간의 거리가 동일하도록 맞춥니다. 줄무늬 조명 알고리즘은 이러한 가정을 기반으로 하므로, 균일하게 형광을 띠는 샘플을 불균일한 구조의 샘플로 교체합니다.예를 들어, 뿌리 샘플의 Conval 영역을 채취하고 멀티빔 이미지를 스캔합니다. 이미지가 선명하고 균일하며 직선으로 나타나는지 확인하십시오. 불균질 샘플을 균질 샘플로 교체합니다.스캔 과정을 제어하기 위해 XY 스캐너를 시작하십시오. 멀티빔 스캐닝을 위한 스트라이프 이미지 여기 패턴을 생성하려면, 빔 조사 라인에 수직 방향으로 Y 스캐너 미러를 이동시키십시오.직사각형 스트라이프 이미지를 생성하기 위해, 여기서 블록 시프트라고 불리는 X 스캐너 미러를 이동시켜 여기에 표시된 블록 수만큼 생성된 패턴을 반복합니다. 불균질 시료를 다시 배치하고 스캐너를 마스터 트리거로 사용하십시오. 카메라를 스캐너와 동기화하여 스트라이프 이미지를 자동으로 획득 및 저장함으로써 스트라이프 이미지를 반복적으로 획득하십시오.충분한 반복 단계 수, 이동 횟수 및 적절한 단계 길이를 선택하여 X 스캐너 거울을 서로 다른 위치로 이동시킵니다. 두 개의 연속적인 스트라이프 이미지 사이의 이동 단계는 두 개의 연속적인 빔 폭 사이의 거리를 커버해야 합니다. X 이동 값은 주어진 여기 파장에서의 가로 분해능 한계보다 낮은 값으로 설정하십시오.예를 들어, 시프트당 X 스캐너 미러를 10단계로 사용하고 12회 또는 13회 시프트를 수행하면 최상의 공간 해상도를 얻을 수 있습니다. conval 영역 루트 슬라이드를 사용하여 conval 영역 이미지가 가장 선명해질 때까지 이 두 값을 최적화하십시오. 기존 CCD 이미지와 계산된 스트라이프 조명 이미지에 라인 프로파일 도구를 사용하십시오.이 예시에서는 회복기 세포벽의 형광 신호인 라인 프로파일의 너비를 비교하십시오. 스캐너의 움직임에 동기화하여 각 로우 스트라이프 이미지를 획득하고, 이를 TIFF 또는 바이너리 파일 등으로 각각 저장하십시오. 고해상도 스트라이프 조명 이미지의 2차원 행렬을 생성하려면, 분석 루틴에서 로우 스트라이프 이미지 전체 세트를 행렬로 여십시오.심부 조직에서 줄무늬 조명, 다중 빔, 다광자 현미경 관찰을 수행하기 위해, 이전에 상세히 설명한 대로 최소-최대 알고리즘 또는 푸리에 변환 기반 알고리즘 중 하나를 사용하십시오. 살아있는 생물체에서 시간에 따라 서로 다른 조직 깊이의 줄무늬 이미지를 획득하고 이전에 설명한 대로 이를 평가하여, 생식 중심, B 세포 및 여포 수지상 세포 간의 동적인 상호작용을 보여주는 고해상도 3D 영상을 생성하십시오. 유효 점 퍼짐 함수(point spread function)의 차원은 현미경의 공간 해상도에 해당합니다.우리는 mion 림프절에서 콜라겐 섬유의 제2고조파 생성 신호 또는 515 nm에서 발광하는 100 nm 폴리스티렌 비드의 형광 신호를 획득하여 이 3차원 함수를 측정하였습니다. CCD 카메라를 이용한 필드 검출 T-P-L-S-M 및 포인트 검출 T-P-L-S-M과 같은 기존의 이광자 레이저 주사 현미경 기술과 비교하여, 당사의 다중 빔 스트라이프 조명 T-P-L-S-M을 사용하였습니다. 이러한 측정 결과, 시료 표면에서 가로 및 세로 해상도 모두 회절 이론에 의해 예측된 예상 값과 일치함이 분명하게 나타났습니다.하지만 이미징 깊이가 깊어짐에 따라, 굴절률 변화가 심한 매질을 통과하는 여기광과 방출광의 광학 경로가 길어지면서, 사용된 설정과 관계없이 공간 분해능이 상당히 저하됩니다. 이미징 깊이에 관계없이 M-B-S-I-T-P-L-S-M을 사용함으로써, 표준 T-P-L-S-M 방식과 비교하여 횡방향 분해능은 약 20%, 축 방향 분해능은 220% 향상된 결과를 얻었습니다.성체 생쥐의 2차 림프 기관 내 면역 반응 중 일어나는 B 세포의 클론 선택은 이들이 기억 B 세포 또는 형질 세포로 분화되는 과정의 첫 단계입니다. 이 과정에서 생식 중심 내 면역 복합체 구조 수준에서 일어나는 여포 수지상 세포와 B 세포 사이의 매우 역동적인 상호작용이 중추적인 역할을 하는 것으로 알려져 있습니다. 고해상도 생체 내 현미경 기술을 사용해야만 이러한 세포 간 통신과 그것이 면역 반응에 미치는 영향을 분석할 수 있으며, 본 영상에서는 여포 수지상 세포에 anti CD 2135 FAB ATO five 90을 표지하여 이를 보여줍니다.M-B-S-I-T-P-L-S-M은 팝콘 림프절의 생식 중심 내 최대 120 micron 깊이까지 면역 복합체 침착물 클러스터의 크기를 생체 내에서 시각화하고 정량화할 수 있는 가능성을 최초로 제공합니다. 이 이미지들은 기존의 PMT 기반 방식과 M-B-S-I-T-P-L-S-M으로 획득한 생식 중심 내 면역 복합체 침착물의 3D 형광 이미지를 직접 비교하여 보여줍니다. 또한, 면역 복합체 침착물과 생식 중심 B 세포 간의 상호작용을 고해상도로 구현할 수 있으며, 이제 증식, 분화 또는 세포 사멸을 위한 생체 내 기능성 프로브와 결합하여 연구할 수 있습니다.이 절차를 수행할 때, 카메라 검출 기반 기술은 표준 광전증배관 기반 다광자 현미경에 비해 획득 속도가 약 8배 더 빠르지만, 최대 이미징 깊이는 약 25% 더 낮다는 점을 유의하는 것이 중요합니다. 이 영상을 시청하고 나면 현미경 광로 조정, 빔 래티스 정렬, 스캐닝 파라미터 계산, 그리고 최종 고해상도 이미지를 계산하는 방법을 포함하여, 스트라이프 조명법을 사용하여 다중 폴드 현미경을 설정하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다. 이는 생체 내 심부 조직 실험을 위한 것입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

Neisseria meningitidis (NM), g 부정적인 인간 특정 호흡기 병원체가 인간 α - actinin에 바인딩할 수 있습니다. 여기 우리는 인간의 뇌 microvascular 내피 세포 (HBMECs)에 세균 입국 후 α - actinin 세포와 세균의 colocalisation의 시각화를위한 프로토콜을 제시한다.

의 세포 상호 작용 Visualisation 및 부량 Neisseria meningitidis</em공촛점 이미징에 의해 α - actinin>과 인간

이 비디오는 컨포칼 현미경을 사용하여 형질전환 마우스에서 γδ 상피내 림프구(IEL)를 시각화하는 방법을 보여줍니다. 수술 절차에는 천공 라인을 만들고 장 점막과 융모를 노출시키기 위해 세로로 절개하는 것이 포함됩니다. 형질전환 마우스는 γδ IEL에서만 리포터 단백질을 발현하여 추적을 가능하게 합니다. Intravital 이미징은 장 상피 세포의 기저막을 따라 녹색 형광 표지된 γδ IEL의 동적 움직임을 캡처합니다.

Gamma Delta 상피내 림프구의 생체 내 시각화

여기에서 우리는 두 가지 색상 STED의 nanoscopy에 의해 유리에 효과적으로 요약 NK 세포의 세포 독성 면역 시냅스 이미징을위한 프로토콜을 보여줍니다. 이 방법을 사용하여 우리는 시냅스 단백질과 세포 골격의 하위 100 nm의 분해능을 얻을 수 있습니다.

이중 색깔 시간 게이트 자극 방출 고갈 (STED) Nanoscopy에 의한 면역 시냅스의 시각화

여기에서는 면역학적 시냅스를 형성하는 유리 지지 지질 이중층 기술과 STED(Stimulated Emission Depletion) 현미경의 초고해상도 이미징 기술의 조합을 설명합니다. 이 프로토콜의 목표는 이러한 두 가지 기술을 성공적으로 수행하는 데 필요한 지침을 사용자에게 제공하는 것입니다.

유리 - 지원 평면 지질 이중층에 자연 살해 세포 면역 시냅스의 슈퍼 해상도 이미징

속눈썹 개발 적절 한 organogenesis에 생명 이다입니다. 이 프로토콜 레이블을 하 고는 제 브라의 ciliated 셀을 시각화 하는 최적화 된 방법을 설명 합니다.

Multiciliated 셀 전체 마운트 형광 제자리에서 교 잡 및 면역 형광의 결합 된 프로토콜을 통해 Zebrafish에 시각화

Coverslips B 세포 수용 체에 항 체, 초기 단계에 대 한 모델 코팅에 확산 하는 B 세포에서 동시에 이미지 걸 구조, microtubules, 및 microtubule 플러스-엔드 바인딩 단백질에 호텔 위치 현미경 검사 법을 사용 하기 위한 프로토콜 소개 면역 시 냅 스 형성.

말라와 자극된 방출 소모 (호텔 위치) 현미경을 사용 하 여 B 세포 면역 냅에 Microtubule Cytoskeletons 시각화

여기, 선물이 빛 시트 현미경을 사용 하 여 3 차원 (3D) 콜라겐 매트릭스에 포함 된 면역 세포를 시각화 하는 프로토콜. 이 프로토콜은 또한 3d에서 셀 이동 추적 하는 방법 elaborates. 다른 유형의 3D 매트릭스에 현 탁 액 셀이이 프로토콜을 사용할 수 있습니다.

인간의 면역 세포의 3 차원 시각화를 위한 빛 시트 현미경

이 프로토콜 어떤 autoreactive 세포 photoactivatable 녹색 형광 단백질 (GFP PA) 기자를가지고 자연 면역 어린 싹 센터와 혼합된 murine 골 키메라의 생성을 설명 합니다. 이 다운스트림 분자 및 기능 분석 조직에 세포 위치를 연결 하는 기능을 제공 합니다.

면역의 혼합된 공상 모델에 Photoactivation에 의해 개별 Autoreactive 어린 싹 센터 질문

우리는 거꾸로 회전 디스크 공초점 현미경 검사법에 의해 뮤린 소장의 내장 영상을 사용하여 GFP 표지된 γδ IELs를 구상하는 방법을 기술합니다. 이 기술은 최대 4 시간 동안 점막 내의 살아있는 세포의 추적을 가능하게하고 장 내 면역 상피 상호 작용의 다양한 조사하는 데 사용할 수 있습니다.

뮤린 소장에서 상피 내 림프구의 활력 영상

이러한 프로토콜은 면역학적 시냅스 형성및 면역학적 시냅스를 향한 후속 편광 분비 트래픽을 모두 이미지화한다. 세포 접합체는 초항원 펄스 라지 세포 (항원 제시 세포역할을 함)와 Jurkat 클론 (이펙터 도우미 T 림프구로 작용)사이에 형성되었습니다.

인간 면역학적 시냅스 이미징

기저막은 발달 동안 조직 및 장기 형태 형성에 필수적입니다. 이 구조의 적절한 배치로 이어지는 메커니즘을 더 잘 이해하기 위해 제시된 프로토콜은 공초점 및 초분해능 현미경을 사용하여 상피 세포에서 기저막 단백질의 세포 내 밀매 및 분비를 시각화하고 특성화하는 방법을 설명합니다.

초 파리 Oogenesis 동안 양극화 된 세포 내 밀매 및 기저막 단백질의 분비의 공초점 및 수퍼 해상도 이미징

배우세요 다중초점 양광자 현미경을 이용한 고해상도 생체 내 영상 기법으로, 줄무늬 조명 패턴과 알고리즘을 활용하여 생쥐 림프접의 면역 반응을 정밀 관찰하는 방법입니다.

어린 싹 센터의 높은 해결의 intravital 스트라이프 - 조명 현미경

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