Name: Kemirgenler için Entegre Düşük Akışlı Anestezik Buharlaştırıcı, Ventilatör ve Fizyolojik İzleme Sisteminin Kullanımı (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-07-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 57 s
Description: Öğrenin, fareler için entegre düşük akışlı anestezi buharlaştırıcısı, ventilatör ve fizyolojik izleme sisteminin kurulumunu ve kullanımını. Bu yöntem, sınırlı alana sahip laboratuvarlarda güvenli anestezi uygulaması sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarların hiçbir bildirimi yok.

Tüm hayvan çalışmaları Purdue Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi tarafından onaylandı.
1. Düşük akışlı buharlaştırıcının kurulumu
<ol><li>Isoflurane veya sevoflurane teslimatı<ol>
<li>Bir taşıyıcı gaz kaynağı seçin. İç hava pompasını kullanmak için, sistemin arkadaki Giriş bağlantı noktasından kırmızı kapağı çıkarın ve sistemin oda havasını almasını sağlar. Sıkıştırılmış gaz kullanmak için, 15 PSI'a ayarlanmış bir basınç regülatörü veya basınç azaltıcı kullanın ve sistemin arkadaki Sıkıştırılmış Gaz bağlantı noktasına bağlanın.</li>
		<li>Kömür bidonlarını egzoz bağlantı noktasına bağlayın.</li>
		<li>Aksesuar Konnektörünü sistemin önündeki Inspiratory ve Expiratory bağlantı noktalarına bağlayın. İndüksiyon odasını mavi klipsli dallara ve burun konisini beyaz klipsli dallara bağlayın (Şekil 1).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Mekanik havalandırma için<ol>
<li>Entübasyon konnektörü boruyu sarı kodlu klipslere bağlayın (Şekil 2).</li>
		<li>Bir deadspace kalibrasyonu gerçekleştirerek ventilatörü kalibre edin. Havalandırma Çalıştırma Ekranı'ndan Kur'a ve ardından Calib & Tests 'edokunun. Deadspace Calibration'ı seçin ve B Tuşu 'yabasın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Darbe oksimetresi için<ol>
<li>Sensörü sistemin arkasında MouseSTAT etiketli bağlantı noktasına bağlayın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Isınma için<ol>
<li>Isınma yastığını sistemin önündeki 'Pad Power' bağlantı noktasına bağlayın.</li>
		<li>Bir sensörü "Gövde Sensörü" bağlantı noktasına, diğerini de 'Pad Sensörü' bağlantı noktasına bağlayın. Ped Sensör'lerini ısıtma yastığına sabitleyin.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. Ayarları yapılandırma
<ol><li>Anestezi için<ol>
<li>Anestezi sisteminin gücü. Anest Run Screen'den Kurulum 'adokunun.</li>
		<li>Anestezik ajanı seçin. Anest Türü'ne dokunun ve sonra Isoflurane veya Sevoflurane 'yi seçmek için B Tuşla 'yı çevirin. </li>
		<li>Şırınd boyutunu ayarlayın. Şırınd Boyutu 'nadokunun ve bir boyut seçmek için B Tuşla'yı çevirin.</li>
		<li>Anest Run Screen'e dönmek için Geri dokunun.</li>
		<li>Şişe üst adaptörünü kullanarak şırınnayı anestezi ile doldurun.</li>
		<li>Şırınnayı anestezi sistemine bağlayın. Gerekirse itici bloğunu geriye doğru hareket ettirmek için Kaldır'a dokunun.</li>
		<li>Şırınnayı hazırla. İtici bloğu şırıngan pistonunun tepesine temas edene kadar itici bloğu ileriye taşımak için Prime'a dokunup basılı tutun. Prime düğmesini tutarken B'nin dönmesi itici blok hızını düzenler.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Mekanik havalandırma için<ol>
<li>Havalandırma Çalıştırma Ekranı sekmesine ve ardından Kur'a dokunun.</li>
		<li>Vücut Ağırlığına dokunun ve hayvanın ağırlığını girin.</li>
		<li>Ses seviyesini veya basınç kontrollü havalandırmayı seçmek için Touch Priority. Vücut Ağırlığı ayarı otomatik olarak uygun solunum hızını ve gelgit hacimlerini ayarlar.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Darbe oksimetresi için<ol>
<li>Oxi Çalıştırma Ekranı sekmesine ve ardından Kur'a dokunun.</li>
		<li>İk'ya dokunun ve izin verilen minimum kalp atış hızı okumasını ayarlamak için B Tuşla'yı çevirin. Hazır ayarlar mevcuttur.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Isınma için<ol>
<li>Sıcak Çalıştırma Ekranından Kur'a dokunun. Bir ısınma yöntemi ve hedef sıcaklık ayarı seçin.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. Anestezi doğumuna başlayın
<ol><li>Fareyi uyuşturun<ol>
<li>Anest Run Ekranından,hava akışına başlamak için İndüksiyonu Başlat'a dokunun. Varsayılan İndüksiyon akış hızı 500 mL/dk'dır.</li>
		<li>Fareyi kapağı sıkıca kapatarak indüksiyon odasına yerleştirin. Anestezik Ajan Konsantrasyon kadranını izofluran için %3 olarak ayarlayın.</li>
		<li>Fare istenen anestezik düzleme ulaşana kadar izleyin, solunum hızında bir azalma ve oda devrildiğinde sağ refleks kaybı ile belirlenir. Anestezik Ajan Konsantrasyon kadranını gerektiği gibi ayarlayın.</li>
		<li>Hayvan sağ refleksini kaybettikten ve yeterince uyuşturulduktan sonra, Dur İndüksiyonunadokunun.</li>
		<li>İstenirse, artık anestezik gaz odasını boşaltmak için Flush Chamber'a dokunun.</li>
		<li>Burun konisine giden kelepçeleri açın ve odaya giden kelepçeleri kapatın.</li>
		<li>DokunmaTik Başlangıç Burun Konisi. Vücut Ağırlığı ayarı burun konisi akış hızını belirler, ancak A Tuşlama döndürülerek manuel olarak ayarlanabilir.</li>
		<li>Burun konisini hemen takın ve hayvanı kızılötesi ısıtma yastığına ortalanın.</li>
		<li>Hayvan Sensör'lü sensörü rektal prob olarak takın.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. Mekanik havalandırmaya başlayın
<ol><li>Hayvanı entübe edin.<ol>
<li>Hayvanı uyuştururken entübasyon aşamasına aktarın.</li>
		<li>Dikey entübasyon aşamasına sabitlenmiş bir iplik kullanarak hayvanı üst kesici dişlerinden askıya alın (Şekil 3).</li>
		<li>Hayvanın dilini yavaşça yana doğru yerleştirin ve entübasyon kitinde sağlanan ışıkları kullanarak nefes borusunun görselleştirilmesi.</li>
		<li>Trakeal tüpü dikkatlice yerleştirin ve küçük hava kesesini tüpe bağlayarak ve akciğerlerin şişip şişmedığını kontrol ederek doğru yerleşimi doğrulayın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Endotrakeal tüpü havalandırma tüpüne bağlayın.</li>
	<li>Burun Konisini Durdur'a dokunun ve ardından Ventilatörü Başlat 'adokunun. NOT: Vücut Ağırlığı ayarı, uygun solunum hızını ve gelgit hacimlerini otomatik olarak belirler. Basınç kontrollü havalandırma yapmak için hedef inspiratuar basıncı 15-18 cm H2O arasında ayarlayın.</li>
</ol>5. Fizyolojik izlemeye başlayın
<ol><li>Sensörü hayvanın arka pençesinin üzerine yerleştirin (Şekil 4). Pulse Oximeter, HR ve SpO2'yi otomatik olarak okumaya başlayacaktır. Darbe oksimetre verilerini görüntülemek için Oxi Çalıştırma Ekranı Sekmesine dokunun.</li>
</ol>

<ol><li>El-Attar, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guided+isoflurane+injection+in+a+totally+closed+circuit%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">Guided isoflurane injection in a totally closed circuit.</a> Anaesthesia. 46 (12), 1059-1063 (1991).</li>
<li>Lockwood, G., Chakrabarti, M. K., Whitwam, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+computer-controller+closed+anaesthetic+breathing+system%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">A computer-controller closed anaesthetic breathing system.</a> Anaesthesia. 48 (8), 690-693 (1993).</li>
<li>Lowe, H. J., Cupic, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dose-regulated+automated+anesthesia+%28Abstract%29%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+of+Clinical+Pharmacologyl%22%5BJournal%5D)">Dose-regulated automated anesthesia (Abstract).</a> British Journal of Clinical Pharmacologyl. 12 (2), 281-282 (1971).</li>
<li>Walker, T. J., Chackrabarti, M. K., Lockwood, G. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Uptake+of+desflurane+during+anaesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">Uptake of desflurane during anaesthesia.</a> Anaesthesia. 51 (1), 33-36 (1996).</li>
<li>Weingarten, M., Lowe, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+circuit+injection+technic+for+syringe-measured+administration+of+methoxyflurane%3A+a+new+dimension+in+anesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Anesthesia+%26+Analgesia%22%5BJournal%5D)">A new circuit injection technic for syringe-measured administration of methoxyflurane: a new dimension in anesthesia.</a> Anesthesia & Analgesia. 52 (4), 634-642 (1973).</li>
<li>Enlund, M., Wiklund, L., Lambert, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+device+to+reduce+the+consumption+of+a+halogenated+anaesthetic+agent%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">A new device to reduce the consumption of a halogenated anaesthetic agent.</a> Anaesthesia. 56 (5), 429-432 (2001).</li>
<li>Kelly, J. M., Kong, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accuracy+of+ten+isoflurane+vaporisers+in+current+clinical+use%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">Accuracy of ten isoflurane vaporisers in current clinical use.</a> Anaesthesia. 66 (8), 682-688 (2011).</li>
<li>Matsuda, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NARCOBIT+-+A+newly+developed+inhalational+anesthesia+system+for+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Animals%22%5BJournal%5D)">NARCOBIT - A newly developed inhalational anesthesia system for mice.</a> Experimental Animals. 56 (2), 131-137 (2007).</li>
<li>Soro, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+accuracy+of+the+anesthetic+conserving+device+%28Anaconda%29+as+an+alternative+to+the+classical+vaporizer+in+anesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Anesthesia+%26+Analgesia%22%5BJournal%5D)">The accuracy of the anesthetic conserving device (Anaconda) as an alternative to the classical vaporizer in anesthesia.</a> Anesthesia & Analgesia. 111 (5), 1176-1179 (2010).</li>
<li>Ward, C. S. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWard%2C+CS+%22Physical+principles+and+maintenance.+Anaesthetic+equipment%22">Physical principles and maintenance. Anaesthetic equipment</a>. , W. B. Saunders. London. (1985).</li>
<li>Ambrisko, T. D., Klide, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+isoflurane+and+Sevoflurane+vaporizers+over+a+wide+range+of+oxygen+flow+rates%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Veterinary+Research%22%5BJournal%5D)">Evaluation of isoflurane and Sevoflurane vaporizers over a wide range of oxygen flow rates.</a> American Journal of Veterinary Research. 67 (6), 936-940 (2006).</li>
<li>Damen, F. W., Adelsperger, A. R., Wilson, K. E., Goergen, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+traditional+and+integrated+digital+anesthetic+vaporizers%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Association+for+Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Comparison of traditional and integrated digital anesthetic vaporizers.</a> Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 54 (6), 756-762 (2015).</li>
<li>Adelsperger, A. R., Bigiarelli-Nogas, K. J., Toore, I., Goergen, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+a+Low-flow+Digital+Anesthesia+System+for+Mice+and+Rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Use of a Low-flow Digital Anesthesia System for Mice and Rats.</a> Journal of Visualized Experiments. (115), e54436(2016).</li>
<li>Flecknell, P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFlecknell%2C+P+%22Laboratory+animal+anaesthesia%22">Laboratory animal anaesthesia</a>. , Academic Press, Elsevier. London, UK. (2009).</li>
<li>Mapleson, W. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+elimination+of+rebreathing+in+various+semiclosed+anaesthetic+systems%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+of+Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">The elimination of rebreathing in various semiclosed anaesthetic systems.</a> British Journal of Anaesthesia. 26 (5), 323-332 (1954).</li>
<li>Chakravarti, S., Basu, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modern+Anaesthesia+Vapourisers%5BTitle%5D)+AND+%22Indian+Journal+of+Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">Modern Anaesthesia Vapourisers.</a> Indian Journal of Anaesthesia. 57 (5), 464-471 (2013).</li>
<li>Mullin, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+anesthesia+carrier+gas+on+in+vivo+circulation+times+of+ultrasound+microbubble+contrast+agents+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Contrast+Media+%26+Molecular+Imaging%22%5BJournal%5D)">Effect of anesthesia carrier gas on in vivo circulation times of ultrasound microbubble contrast agents in rats.</a> Contrast Media & Molecular Imaging. 6 (3), 126-131 (2011).</li>
<li>Flores, J. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+anesthetic+agent+and+carrier+gas+on+blood+glucose+and+tissue+uptake+in+mice+undergoing+dynamic+FDG-PET+imaging%3A+sevoflurane+and+isoflurane+compared+in+air+and+in+oxygen%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Imaging+and+Biology%22%5BJournal%5D)">The effects of anesthetic agent and carrier gas on blood glucose and tissue uptake in mice undergoing dynamic FDG-PET imaging: sevoflurane and isoflurane compared in air and in oxygen.</a> Molecular Imaging and Biology. 10 (4), 192(2008).</li>
<li>Carroll, G. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCarroll%2C+G+%22Small+Animal+Anesthesia+and+Analgesia%22">Small Animal Anesthesia and Analgesia</a>. , Blackwell Publishing. Ames, IO. (2008).</li>
<li>Thomas, J., Lerche, P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aThomas%2C+J+%22Anesthesia+and+Analgesia+for+Veterinary+Technicians%2C+4th+ed%22">Anesthesia and Analgesia for Veterinary Technicians, 4th ed</a>. 335, Mosby. St. Louis, MI. (2011).</li>
<li>McKelvey, D. H. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMcKelvey%2C+DH+%22Veterinary+Anesthesia+and+Analgesia%22">Veterinary Anesthesia and Analgesia</a>. , Mosby. St. Louis, MI. (2003).</li>
<li>Tranquilli, W. J., Thurmon, J. C., Grimm, K. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aTranquilli%2C+WJ+%22Lumb+and+Jones%27+veterinary+anesthesia+and+analgesia%22">Lumb and Jones' veterinary anesthesia and analgesia</a>. , John Wiley & Sons. Hoboken, NJ. 23-86 (2013).</li>
<li>Matsuda, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+newly+developed+inhalation+anesthesia+system+and+intraperitoneal+anesthesia+on+the+hemodynamic+state+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Biological+and+Pharmaceutical+Bulletin%22%5BJournal%5D)">Comparison of newly developed inhalation anesthesia system and intraperitoneal anesthesia on the hemodynamic state in mice.</a> Biological and Pharmaceutical Bulletin. 30 (9), 1716-1720 (2007).</li>
<li>Garber, J., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGarber%2C+J+%22Guide+for+the+Care+and+Use+of+Laboratory+Animals.+8th+edn%22">Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. 8th edn</a>. , The National Academic Press. Washington DC. (2011).</li>
<li>Zarndt, B. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+a+far-infrared+active+warming+device+in+Guinea+pigs+%28Cavia+porcellus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Association+for+Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Use of a far-infrared active warming device in Guinea pigs (Cavia porcellus).</a> Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 54 (6), 779-782 (2015).</li>
<li>Wolforth, J., Dyson, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flushing+induction+chambers+used+for+rodent+anesthesia+to+reduce+waste+anesthetic+gas%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Animal%22%5BJournal%5D)">Flushing induction chambers used for rodent anesthesia to reduce waste anesthetic gas.</a> Lab Animal. 40 (3), 76-83 (2011).</li>
</ol>

Bu proje Kent Scientific Corporation tarafından ekipman ve finansman ile desteklendi. Yazarlar Krista Bigiarelli ve Dave FitzMiller, bu makalede kullanılan ekipmanları üreten Kent Scientific Corporation'ın çalışanlarıdır. Bu makalenin açık erişimli yayını Kent Scientific Corporation sponsorluğunda yayınlanmıştır.

Bu dijital düşük akışlı anestezi sistemi anestezi, havalandırma, ısınma ve fizyolojik izleme sistemlerini tek bir ekipmana entegre eder. Ek olarak, sistem bir iç pompa içerir, bu da taşıyıcı gaz olarak kullanılmak üzere ortam havasına çekilmesine izin verir ve basınçlı gaz kaynağı ihtiyacını ortadan kaldırır.
Bu prosedürde, sistem anestezik buharlaştırıcı, mekanik ventilatör, darbe oksimetresi ve ısıtma yastığını değiştirmek için tek bir ekipman parçası olarak kullanılır. Daha önce 100mL / dk2akış hızında anestezik teslimat gösterdik. Akış hızı, kullanılan sıvı anestezinin hacmini doğrudan kontrol ettiği için bu anestezik teslimat tekniği için kritik öneme sahiptir. Ayrıca daha önce düşük akış hızlarının kullanılmasının anestezik sıvı1,2. Geleneksel bir buharlaştırıcı mekanik bir ventilatöre bağlandığında, ventilatör gaz akışından numune alırken buharlaştırıcı sürekli olarak çalışmalıdır. Entegre ventilatörlü dijital buharlaştırıcı durumunda, sadece havalandırma için gerekli gaz ventilatör tarafından çıkar. Bu, anestezik sıvı, taşıyıcı gazlar ve kömür filtreleri ile ilgili maliyetleri azaltır.
Düşük akışlı bir dijital buharlaştırıcı kullanmanın birçok avantajı olsa da, sınırlamalar da vardır. Bu sistem kemirgenler ve diğer küçük memeliler için ideal olan düşük akış hızlarında çalışmak üzere tasarlanmıştır, ancak 1000 mL / dk akış hızlarının üzerinde anestezi sağlamaz. Bu nedenle bu özel sistem sadece küçük hayvan türleri için uygundur. Entegre darbe oksimetresi sadece pençe kullanımı için bir sensör içerir. Sensör kuyrukta kullanılması önerilmez, bu da belirli cerrahi prosedürler için bir sınırlama olabilir. Ayrıca, solunum hızı pençe sensörü aracılığıyla bu sistem üzerinden izlenebiliyorken, uzun bir süre boyunca tutarlı solunum kayıtları elde etmek zor olabilir. Son olarak, geleneksel bir buharlaştırıcının aksine, bu dijital sistem elektrik gerektirir. Piller, elektrik gücünün kullanılamadığı durumlarda veya elektrik kesintisi durumunda kullanılabilir ve sisteme birkaç saatlik kullanım yoluyla güç sağlayabilir.
Bu kurulum ve protokol, entegre ventilatör ve fizyolojik izleme modülleri ile dijital, düşük akışlı anestezi sisteminin güvenli ve etkili kullanımını göstermektedir. Bu kurulum, sınırlı tezgah alanına sahip veya cerrahi bir alanın yakınında birden fazla ekipman ve boru parçası barındırmanın mümkün olmadığı laboratuvarlar için yararlı olacaktır. Sıkıştırılmış gaz tanklarının ve ayrı fizyolojik izleme ekipmanlarının ortadan kaldırılması da dahil olmak üzere hepsi bir arada sistemin sayısız faydası vardır. Genel olarak, bu entegre sistem, geleneksel bir buharlaştırıcı kullanımının ideal olmadığı gruplar tarafından düşünülebilir.

Hayvan modellerini içeren araştırmalar genellikle özel veri toplama ekipmanı gerektirir. Küçük hayvan cerrahisi için yaygın olarak kullanılan iki yaygın anestezik buharlaştırıcı türü vardır. Geleneksel anestezik buharlaştırıcılar, atmosferik basınç ve gaz akışına dayalı uçucu anesteziklerin pasif buharlaşmasına dayanır 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10. 0,5 L/dk ila 10 L/dk akış hızlarında çalışacak şekilde tasarlanmıştır, bu da onları büyük hayvan modelleri11için ideal hale getirir.
Son zamanlarda geleneksel bir buharlaştırıcı ile karşılaştırıldığında düşük akışlı bir dijital buharlaştırıcının etkilerini gösterdik12,13. Düşük akışlı dijital anestezi sistemi, burun konisi üzerindeki bir hayvanı, hayvanın dakika hacmi 14 , 15,16'nın1,5-2,2katı çok düşük akış hızlarında tutmak için kullanılabilir.
Dijital anestezi sistemi kullanmanın sayısız faydası vardır. Taşıyıcı gaz olarak kullanmak için ortam havasını çeken dahili bir pompa içerir. Bu, kullanıcının sıkıştırılmış gaz kullanmadan anestezi uygulaymasını sağlar. Son çalışmalar17,18, taşıyıcı gaz olarak oksijen yerine hava kullanmanın birçok prosedür için faydalı olabileceğini öne sürmektedir.
Fizyolojik izleme ve ısınma yetenekleri dijital düşük akışlı anestezi sistemine de kurulabilir. Çoğu kurumda, kurumsal hayvan bakım ve kullanım komiteleri 19 , 20,21,22tarafından hayvan ısıtma ve fizyolojik izlemegereklidir. Anestezik ajanların fizyolojik etkilerini karşılaştıran çalışmalar, vücut ısısı, kardiyak fonksiyon ve solunum fonksiyonu23 , 24,25. Normal bir vücut sıcaklığını izlemek ve korumak için hayvanı bir ısıtma yastığına yerleştirmek genellikle gereklidir. Ilık su ısıtıcıları, elektrikli ısıtma pedleri ve ısı lambaları gibi birçok hayvan ısıtma yöntemi vardır, ancak bunların her birinin önemli dezavantajları vardır. Hayvan ısınmasının farklı yöntemlerini karşılaştıran çalışmalarda, uzak kızılötesi ısınmanın en faydalı olduğu bulunmuştur26. Dijital buharlaştırıcı, belirli bir hayvan vücut sıcaklığını korumak için yerleşik homeotermik uzak kızılötesi ısınma içerir. Bu, ek ısıtma pedi kontrolörlerinin ihtiyaçlarını ortadan kaldırır.
Vücut sıcaklığını izlemenin yanı sıra, nabız oksimetresi hayvanın kalp atış hızını ve oksijen doygunluğunu izlemek için popüler bir yöntemdir. Bu noninvaziv yöntem basit, doğrudur ve hayvanın kan oksijenlenme seviyelerini düzenleme yeteneğinin genel bir değerlendirmesini sağlar. Nabız oksimetresi için bir pençe sensörü, daha önce gösterdiğimiz gibi anestezi sistemine bağlanabilir2.
Mekanik havalandırma genellikle hayvan daha uzun anestezi süreleri altında olduğunda veya hayvanın solunum düzeninin kontrol edilmesi gerektiğinde gereklidir. Düşük akışlı dijital buharlaştırıcı, basınç veya hacim kontrolünde kontrollü nefes alma yeteneğine sahiptir. Entegre ventilatör, harici bir ventilatör ihtiyacını ve fazla boru kurulum gereksinimlerini ortadan kaldırır.
Tüm bu ortak monitörler ve özellikler tek bir ekipman parçasında birleştirildiğinden, boru kurulumu önemli ölçüde basitleştirilmiştir. Bu protokolün amacı, hepsi bire bir dijital anestezi sisteminin kurulumunu ve kullanımını göstermektir.

<table><tbody><tr><td>Entübasyon Kiti</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>ETM-MSE</td><td>Entübasyon aşaması, entübasyon tüpü, LED ışık</td></tr><tr><td>İzofluran Sıvı İnhalasyon %99,9</td> <td>içerirHenry Schein, Inc.</td><td>1182097</td><td>Cam şişe 250 mL</td></tr><tr><td>MouseSTAT Nabız Oksimetresi</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SS-03</td><td>SomnoSuite Oksijen Tankına Entegre</td></tr><tr><td></td><td>Indiana Oksijen Şirketi</td><td>23-160246</td><td>Tıbbi Sınıf O2 %99</td></tr> <tr><td>RoVent Otomatik Vantilatör</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SS-04</td><td>SomnoSuite Düşük Akışlı Dijitale Entegre</td></tr> Edildi <tr><td> Anestezi Sistemi</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SS-01</td>, <td>RightTemp Homeotermik Isıtma kontrolü, ped ve sıcaklık sensörlerini içerir</td></tr><tr><td>SomnoSuite Fare Başlangıç Kiti</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SOMNO-MSEKIT</td><td>Burun konisi, şırıngalar, indüksiyon odası ve kömür tenekesi içerir</td></tr></tbody></table>

kemirgenler için entegre düşük akışlı anestezik buharlaştırıcı, ventilatör ve fizyolojik İzleme sisteminin kullanımı

Use of an Integrated Low-Flow Anesthetic Vaporizer, Ventilator, and Physiological Monitoring System for Rodents

Düşük akışlı dijital buharlaştırıcılar genellikle uçucu anestezikleri taşıyıcı gaz akışına doğrudan uygulamak için bir şırınna pompası kullanırlar. Hayvan refahı önerilerine göre, hayvanlar anestezi gerektiren işlemler sırasında ısıtılır ve izlenir. Yaygın anestezi ve fizyolojik izleme ekipmanları arasında gaz tankları, anestezik buharlaştırıcılar ve standlar, ısıtma kontrolörleri ve pedleri, mekanik ventilatörler ve darbeli oksimetreler bulunur. Veri toplama ve ekipman yazılımını çalıştırmak için bir bilgisayar da gereklidir. Daha küçük alanlarda veya saha çalışması yaparken, tüm bu ekipmanı sınırlı alanda yapılandırmak zor olabilir.
Bu protokolün amacı, kemirgenler için ideal olan her şey dahil anestezi ve fizyolojik izleme paketi olarak entegre mekanik ventilatör, darbe oksimetresi ve uzak kızılötesi ısınma ile birlikte hem basınçlı oksijen hem de oda havası kullanarak düşük akışlı bir dijital buharlaştırıcının kullanımı için en iyi uygulamaları göstermektir.

Bu çalışma için 25,41 ± 0,8 g ağırlığında on haftalık, erkek, yabani tip C57Bl6j fareler kullanılmıştır. Fareler bir burun konisi üzerinde uyuşturuldu ve bakımı yapıldı veya entübe edildi ve kalp atış hızı ve oksijen doygunluğu izlenirken% 1.5-2.5 izofluran ile entegre bir mekanik ventilatörde muhafaza edildi. Hayvanlar mikroisolasyon kafeslerinde grup halinde barındırıldı ve standart kemirgen chow ve suya şişe ile ücretsiz erişim sağladı.
Kalp atış hızı ve SpO2, bakım sırasında nabız oksimetresi(Şekil 5, Şekil 6ve Şekil 7, ) ile izlendi. Vücut ısısı kızılötesi ısıtma yastığı ve ısı lambası ile 36,5-37,5 °C'de korundu. Havalandırılan hayvanlar entegre burun konisi ile entübasyon standı ile entübasyon işlemi sırasında sürekli izofluran teslimatı aldı. Her fare, 15 dakika boyunca oda havasının (RA) veya oksijenin (O2)141 mL/dk'sını geçmeyen düşük akış hızlarında bir burun konisi üzerinde başarıyla havalandırıldı veya bakımı yapıldı. Hayvanların kalp atış hızları ve kan oksijen doygunluğu, tüm gruplar için her iki ölçümde de birkaç önemli değişiklikle sabit kaldı. SPO2<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61311/61311fig01.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61311/61311fig01large.jpg" target="_blank"></a><img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61311/61311fig02.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61311/61311fig02large.jpg" target="_blank"></a><img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61311/61311fig03.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61311/61311fig03large.jpg" target="_blank"></a><img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61311/61311fig04.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61311/61311fig04large.jpg" target="_blank"></a><img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61311/61311fig05.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61311/61311fig05large.jpg" target="_blank"></a><img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61311/61311fig06.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61311/61311fig06large.jpg" target="_blank"></a><img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61311/61311fig07.jpg"> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61311/61311fig07large.jpg" target="_blank"></a>

Burada, entegre ventilatör ve fizyolojik izleme modüllerine sahip dijital, düşük akışlı bir anestezi sistemi kullanarak farelere anestezik gazı güvenli ve etkili bir şekilde uygulamak için bir protokol sunuyoruz.

Kemirgenler için Entegre Düşük Akışlı Anestezik Buharlaştırıcı, Ventilatör ve Fizyolojik İzleme Sisteminin Kullanımı

Low-flow digital vaporizers commonly utilize a syringe pump to directly administer volatile anesthetics into a stream of carrier gas. Per animal welfare ...

Bu protokol, Düşük Akışlı Elektronik Buharlaştırıcı, entegre ventilatör, nabız oksimetresi ve Uzak Kızılötesi Isıtma Pedi içeren her şey dahil anestezi ve fizyolojik izleme paketi için en iyi kullanımları vurgular. Bu metodoloji, sınırlı tezgah veya laboratuvar alanına sahip herhangi bir tesis için kullanışlıdır. Hepsi bir arada sistem, basınçlı gaz tanklarına ve ayrı fizyolojik izleme ekipmanlarına olan ihtiyacı da ortadan kaldırır.Prosedürü gösteren, Purdue Üniversitesi'nde Biyomedikal Mühendisliği doktora öğrencisi olan Luke Schepers olacak. Düşük Akışlı Buharlaştırıcıyı kurmak için bir taşıyıcı gaz kaynağı seçin ve sistemin oda havasını almasına izin vermek için sistemin arkasındaki giriş portundan kırmızı kapağı çıkarın. Sıkıştırılmış bir gaz kaynağı kullanıyorsanız, inç kare başına 15 pound'a ayarlanmış bir basınç regülatörü ve basınç düşürücü kullanın.Ve cihazı sistemin arkasındaki kompresör gaz portuna bağlayın. Kömür bidonunu egzoz portuna bağlayın. Aksesuar konektörünü sistemin ön tarafındaki inspiratuar ve ekspiratuar bağlantı noktalarına bağlayın.İndüksiyon odasını mavi klipsli dallara ve burun konisini beyaz klipsli dallara bağlayın. Entegre ventilatörü kurmak için entübasyon konektör borusunu sarı klipslerle dallara bağlayın. Havalandırma Çalıştırma Ekranında ventilatör ölü alanını kalibre etmek için, Kurulum ve Kalibrasyon ve Testler'e dokunun, ardından Ölü alanı ölç'ü seçin ve entegre nabız oksimetresini ayarlamak B.To Kadran'a basın, sistemin arkasındaki fare istatistik bağlantı noktasının sensörünü bağlayın.Uzak Kızılötesi Isıtma Pedini kurmak için, ısıtma pedini sistemin önündeki ped güç bağlantı noktasına bağlayın. Ardından bir sensörü gövde sensörü bağlantı noktasına ve diğerini ped sensörü bağlantı noktasına bağlayın ve ped sensörünü ısıtma pedine sabitleyin. Anest Çalıştırma Ekranında anestezi uygulaması için sistem ayarlarını yapılandırmak için Kurulum'a dokunun ve anestezik ajanı seçin.Dokunun, anest yazın ve izofluran veya sevofluranı seçmek için Kadran B'yi çevirin. Bu şırınga boyutunu ayarlamak için Şırınga boyutu'na dokunun ve bir boyut seçmek için Kadran B'yi çevirin. Anest Run Ekranına dönmek için Geri'ye dokunun ve şırıngayı anestezik ile doldurmak için şişe üstü adaptörü kullanın.Şırıngayı anestezi sistemine bağlayın ve itici bloğu gerektiği gibi geriye doğru hareket ettirmek için Çıkar'a dokunun. Şırıngayı doldurmak için, blok şırınga pistonunun üst kısmına değene kadar itici bloğu ileri doğru hareket ettirmek için prime düğmesini basılı tutun. Mekanik ventilasyonu ayarlamak için Havalandırma Çalıştırma Ekranı sekmesini açın ve Kurulum'a basın.Vücut ağırlığı'na basın ve hayvanın ağırlığını girin. Ardından ses veya basınç kontrollü ventilasyonu seçmek için Önceliğe basın. Uygun solunum hızı ve tidal hacimler otomatik olarak ayarlanacaktır.Nabız oksimetresi parametrelerini ayarlamak için Oxy run ekran sekmesini açın ve Setup'a basın. Minimum HR'ye basın ve izin verilen minimum kalp atış hızı okumasını ayarlamak için Kadran B'yi çevirin. Sıcak çalışma ekranında ısıtma parametrelerini ayarlamak için Setup (Ayarla) düğmesine basın ve bir ısıtma yöntemi ve bir hedef sıcaklık ayarı seçin.Fareyi Anest Run Ekranından uyuşturmak için, hava akışını başlatmak üzere İndüksiyon'a dokunun. Varsayılan indüksiyon akış hızı dakikada 500 mililitredir. Akış hızını gerektiği gibi ayarlamak için Kadran A'yı çevirin.Fareyi indüksiyon odasına yerleştirin ve kapağı sıkıca kapatın. İzofluran için anestezik ajan konsantrasyon kadranını %3'e ayarlayın. Varsayılan indüksiyon akış hızı dakikada 500 mililitredir.Akış hızını gerektiği gibi ayarlamak için Kadran A'yı çevirin. Anestezik uygulamaya başlamak için Teslim Et'e basın. Hayvan yeterince uyuşturulduktan sonra, haznedeki artık anestezik gazı azaltmak için İndüksiyona tekrar ve ardından Yıkama haznesine dokunun.Burun konisine giden klipsleri açın ve hazneye giden klipsleri kapatın. Hava akışını başlatmak için Burun konisine dokunun ve burun konisini hemen hayvanın üzerine takın. Hayvanı Kızılötesi Isıtma Pedi üzerinde ortalayın, ardından vücut ısısını kontrol etmek için hayvan sensörünü rektal prob olarak yerleştirin.Mekanik ventilasyonu başlatmak için, anestezi uygulanmış hayvanı entübasyon aşamasına yerleştirin ve hayvanı üst kesici dişlerinden asmak için dikey entübasyon aşamasına sabitlenmiş bir iplik kullanın. Hayvanın dilini nazikçe yana doğru gösterir ve soluk borusunu görselleştirmek için inovasyon kitinde verilen ışıkları kullanır. Endotrakeal tüpü dikkatlice yerleştirin.Doğru yerleştirme, tüpe küçük bir hava kesesi bağlanarak ve akciğer şişirilmesini kontrol ederek doğrulanabilir. Hava akışını durdurmak için Burun konisini durdur'a dokunun, klipsleri burun konisine kapatın ve klipsleri havalandırma tüpüne açın. Endotrakeal tüpü ventilasyon tüpüne bağlayın ve ventilasyonu başlatmak için Ventilatörü başlat'a dokunun.Fizyolojik izlemeye başlamak için, sensörü hayvanın bir arka pençesine hafifçe klipsleyin, nabız oksimetresi otomatik olarak kalp atış hızını ve kan oksijen doygunluğunu okumaya başlayacaktır. Nabız oksimetresi verilerini görüntülemek için Oxy run ekran sekmesine dokunun. Kalp atış hızı ve kan oksijen doygunluğu, bakım sırasında nabız çıkış simetrisi ile izlenebilir.Bu temsili analizde, hayvanın kalp atış hızları ve kan oksijen doygunluğu, tüm gruplar için her iki ölçümde de birkaç önemli değişiklik gözlenerek sabit kaldı. Ve kan oksijen doygunluğu %82 ila %99 arasında kalırkenBu teknik, araştırmacıların anesteziyi daha düşük akış hızlarıyla ve sıkıştırılmış gaza ihtiyaç duymadan vermelerini sağlar. Daha düşük akış hızları, daha az gaz israfına ve araştırma personeli için daha az maruz kalmaya yol açar.

use-an-integrated-low-flow-anesthetic-vaporizer-ventilator

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Kemirgen solunum fizyolojisi ve solunum yolu inflamatuar hücrelerin örnekleme tekrarlanan ölçümler arzu edilir, ancak genellikle mümkün değildir. Burada sözlü havayolu inflamatuar hücrelerin havayolu hiperreaktivite ve örnekleme tekrarlanan ölçümler izin verir fareler Entübasyon için tekrarlanabilir bir yöntem açıklanmaktadır.

Havayolu Direnci Ölçümleri ve Fare Bronkoalveolar Lavaj Sıvısı Örnekleme için, geri dönüşümlü, Non-invaziv Yöntemi

SCIREQ Inc, Montreal, Qc; İşbu Protokol solunum sistemi mekaniği ölçümleri yanı sıra zorla salınım tekniği kullanarak farelerde inhale metakoline hava yolu duyarlılığı değerlendirilmesi (flexiVent yürütmek için gerekli prosedürleri ayrıntılı bir adım adım açıklamasını sağlar , Kanada).

Zorla Salınım Tekniği kullanarak Fare Solunum Sistemi Mekanik Değerlendirilmesi

Doğrulma refleksinin kaybı uzun laboratuvar hayvanlarında, aynı zamanda hipnoz denilen, bilinç kaybı için standart bir davranış vekil olarak görev yapmıştır. Farmakolojik müdahaleler kaynaklanan uçucu anestetik duyarlılıkla değişiklikler herhangi bir solunan terapötik teslim için adapte edilebilir, dikkatli bir şekilde kontrol edilen yüksek verimli değerlendirme sistemi ile tespit edilebilir.

Yerel ya da Sistemik Farmakolojik Müdahale sonrası Farelerin Uçucu Genel Anestezik Hassasiyet Değişiklikleri değerlendirilmesi

Ex-Vivo Akciğer Perfüzyon (EVLP) insanlarda akciğer transplantasyonu daha kolay kullanılabilir donör havuzu organları değerlendirmek ve genişletmek için yeteneği sağlayarak haline izin verdi. Burada, bir sıçan EVLP programı ve gelecekteki genişleme için bir tekrarlanabilir model izin ayrıntılandırmaları gelişimini açıklar.

İzole Yöntemi<em&gt; Ex vivo</emBir Rat Modelinde&gt; Akciğer Perfüzyon: Sıçan EVLP Programı Geliştirme Öğrenilmiş Dersler

Bu el yazması fare basınç-volüm verilerinin toplanması için ayrıntılı bir protokol açıklar.

Fare Basınç Hacim Döngüler Ölçme

Burada, şırınga tahrikli doğrudan enjeksiyonlu buharlaştırıcı kullanan dijital, düşük akışlı bir anestezi sistemi kullanarak anestezik gazı farelere daha güvenli ve verimli bir şekilde uygulamak için bir protokol sunuyoruz.

Fare ve Sıçanlarda için düşük akış Dijital Anestezi Sistemi Kullanımı

Solunan yoğun bakım sedasyonu için kullanılan bir cihaz aracılığıyla halojenli ajanlar, izofluran ve sevofluran ile sedasyon alan domuz yavrularında hidroklorik asit kaynaklı akut solunum sıkıntısı sendromu (ARDS) modelini tarif ediyoruz. Bu model, halojenli ajanların akciğer yaralanması ve onarımı üzerindeki biyolojik mekanizmalarını araştırmak için kullanılabilir.

Akut Solunum Sıkıntısı Sendromunun Porcine Modelinde Yoğun Bakım Ünitesi Tipi Cihazla Halojenli Ajan Doğumu

Amaç, EVLP boyunca 4 saat boyunca tutarlı akciğer fonksiyonunu sürdürebilen sıçanlarda yeni bir ex vivo akciğer perfüzyonu (EVLP) modeli geliştirmek ve endüstriye EVLP'yi kemirgen modellerine uygulamak için sağlam bir yöntem sunacak uygulama özellikleri sağlamaktır.

Dolaşım Ölümü Sonrası Sıçan Akciğerleri için Yeni Bir Ex Vivo Akciğer Perfüzyon Sisteminin Kurulması

Önerilen kurulum, farelerde ve sıçanlarda kontrollü mekanik ventilasyona ve 3D toraks hareketinin Manyetik Rezonans görüntülemesine izin verir. Bu düzeneği, mekanik ventilasyona bağlı solunum kası disfonksiyonunun altında yatan patofizyolojiyi incelemek için kullandık.

Mekanik Olarak Havalandırılan Fare ve Sıçanlarda Solunum Hareketinin 3D Cine Manyetik Rezonans Görüntülemesi

Bu çalışma, sıçan mekanik ventilasyon (OG) modellerine uyarlanmış yapılandırılmış bir ekstübasyon yaklaşımı önermektedir. Yaklaşım, ekstübasyonla ilgili komplikasyonları en aza indirirken MV'den spontan solunuma yumuşak bir geçişi kolaylaştırır. Sütten kesme, hava yolu yönetimi ve ekstübasyon sonrası bakımın standardizasyonu, deneysel çalışmaların güvenilirliğini ve tekrarlanabilirliğini artırır.

Mekanik Olarak Havalandırılan Sıçanlarda Ekstübasyona Yapılandırılmış Bir Yaklaşım

Öğrenin, fareler için entegre düşük akışlı anestezi buharlaştırıcısı, ventilatör ve fizyolojik izleme sisteminin kurulumunu ve kullanımını. Bu yöntem, sınırlı alana sahip laboratuvarlarda güvenli anestezi uygulaması sağlar.

Kemirgenler için Entegre Düşük Akışlı Anestezik Buharlaştırıcı, Ventilatör ve Fizyolojik İzleme Sisteminin Kullanımı

Daha fazla video keşfet