Summary

ذبابة الفاكهة تشريح اليرقات NMJ

Published: February 04, 2009
doi:

Summary

هذا البروتوكول يوضح كيفية تشريح<em> ذبابة الفاكهة</em> اليرقات في إعداد و / أو التصوير المناعية من مفترق الطرق العصبية والعضلية.

Abstract

و<em> ذبابة الفاكهة</em> الوصل العصبي العضلي (NMJ) هو نظام يستخدم نموذج المتبع لدراسة تطوير واللدونة متشابك. استخدام على نطاق واسع<em> ذبابة الفاكهة</em> محرك النظام هو نتيجة لسهولة الوصول إليها عالية. ويمكن تحليل ذلك مع قرار وحيد الخلية. هناك 30 في عضلات hemisegment الذين الترتيب داخل جدار الجسم هامشية معروفة. مجموعه من الخلايا العصبية الحركية 35 نعلق على هذه العضلات في النمط الذي الدقة العالية. استخدام البيولوجيا الجزيئية وعلم الوراثة ، ويمكن للمرء أن خلق حيوانات معدلة وراثيا أو المسوخ. ثم ، يمكن للمرء أن دراسة الآثار التنموية على التشكل وظيفة NMJ. من أجل الوصول إلى NMJ للدراسة ، فمن الضروري أن يشرح بعناية كل يرقة. نحن في هذه المقالة شرح كيفية تشريح صحيح<em> ذبابة الفاكهة</em> اليرقات لدراسة NMJ عن طريق إزالة جميع الأعضاء الداخلية في حين ترك جدار الجسم سليما. هذا الأسلوب هو مناسب لاعداد اليرقات التصوير ، والمناعية ، أو الكهربية.

Protocol

قبل أن تبدأ وينبغي أن تزرع في كل الثقافات 25 درجة مئوية. قد تكون على استعداد HL3.1 العازلة تشريح مقدما. اتخاذ قسامة 50 مل من HL3.1 وابقائه على الجليد. تحضير 15 مل من فورمالد…

Discussion

ويمكن استخدام هذه التقنية أظهر تشريح في هذا الفيديو لإعداد يرقات ذبابة الفاكهة لمجموعة متنوعة من التقنيات التجريبية. إذا به بروتين فلوري موجودة ، ويمكن تحميل واليرقات والتقط على الفور. خلاف ذلك ، يمكن أن يؤديها من أجل immunostaining علامة مقصورات متشابك محددة. بالإضاف…

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Stereomicroscope “Stemi” 2000   Carl Zeiss MicroImaging Inc. 495101-9804-000  
Light Source KL 1500 LCD   Carl Zeiss 000000-1063-181  
3mm Vannas Spring Scissors   Fine Science Tools Inc. 15000-0  
Dumont SS Forceps   Fine Science Tools Inc. 11200-33 Long forceps
Dumont #5 Forceps   Fine Science Tools Inc. 11252-20 Short forceps
SylGard 182 Silicone Elastomer Kit   Dow Corning Corp. 3097358-1004 Used to make dissection plates
Formaldehyde   Sigma-Aldrich Inc. 252549-25ML  
Stainless Steel Minutien Pins -0.1 MM Diameter   Fine Science Tools Inc. 26002-10  
HL3 Dissection Buffer: (in mM) 70 NaCl, 5 KCl, 0.2 CaCl2, 20 MgCl2, 10 NaHCO3, 5 trehalose, 115 sucrose, and 5 HEPES, pH 7.3.

Sylgard Dissecting Plate: Mix gently (to avoid bubbles) 10:1in a beaker. Pour mixture into Petri dish (any size). Allow SylGard to cure overnight in 37C incubator.

Riferimenti

  1. Jan, L. Y., Jan, Y. N. Properties of the larval neuromuscular junction in Drosophila Melanogaster. J. Physiol. 262, 189-214 (1976).
  2. Johansen, J., Halpern, M. E., Johansen, K. M., Keshishian, H. Stereotypic morphology of glutamatergic synapses on identified muscle cells of Drosophila larvae. J Neurosci. 9, 710-725 (1989).
  3. Kesheshian, H., Broadie, K., Chiba, A., Bate, M. The Drosophila neuromuscular junction: a model system for studying synaptic development and function. Annu Rev Neurosci. 19, 545-575 (1996).
  4. Vactor, D. V., Sink, H., Fambrough, D., Tsoo, R., Goodman, C. S. Genes that control neuromuscular specificity in Drosophila. Cell. , 73-1137 (1993).
  5. Feng, . A modified minimal hemolymph-like solution, HL3.1, for physiological recordings at the neuromuscular junctions of normal and mutant Drosophila larvae. J Neurogenet. 18 (2), 377-402 (2004).
check_url/it/1107?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Brent, J. R., Werner, K. M., McCabe, B. D. Drosophila Larval NMJ Dissection. J. Vis. Exp. (24), e1107, doi:10.3791/1107 (2009).

View Video