Summary

Optisch in kaart brengen van Langendorff-geperfuseerde Rat Hearts

Published: August 11, 2009
doi:

Summary

Dit artikel beschrijft een hoge temporele en ruimtelijke resolutie techniek om optisch image actie potentiaal beweging op het oppervlak van de Langendorff-geperfuseerde rattenharten met behulp van een potentiometrische kleurstof (di-8-ANEPPS).

Abstract

Optische kaart brengen van de cardiale oppervlak met voltage-gevoelige fluorescente kleurstoffen is uitgegroeid tot een belangrijk instrument om elektrische excitatie te onderzoeken in experimentele modellen die variëren in schaal van cel culturen om hele organen<sup> [1, 2]</sup>. Met behulp van state-of-the-art optische beeldvorming systemen, genereren en verspreiden van actiepotentialen tijdens normale hartritme of het hele initiëren en onderhouden van aritmieën kunnen worden gevisualiseerd vrijwel direct<sup> [1]</sup>. De meest recente in de handel verkrijgbare systemen kunnen informatie geven op zeer hoge resoluties en spatiotemporele waren gebaseerd op custom-built apparatuur in eerste instantie ontwikkeld om de obstakels worden opgelegd door de meer conventionele methoden te overwinnen elektrofysiologische<sup> [1]</sup>. Ontwikkelingen in hoge resolutie en hoge snelheid Complementary Metal-Oxide-Semiconductor (CMOS) camera's en intens-felle, light-emitting diodes (LED's) als voltage-gevoelige kleurstoffen, optica, en filters zijn begonnen met het elektrisch signaal overname te maken praktisch voor hart-en celbiologen die meer gewend om te werken met microscopen. Hoewel de nieuwste generatie van CMOS-camera's kunnen verwerven 10.000 frames per seconde op een 16.384 pixel array, afhankelijk van het type van monstervoorbereiding, reeds lang bestaande fluorescentie overname technologieën zoals fotodiode arrays, laser scanning systemen, en gekoelde charged-coupled device (CCD ) camera's hebben nog een aantal duidelijke voordelen met betrekking tot dynamisch bereik, signaal-ruisverhouding, en quantum efficiency<sup> [1, 3]</sup>. In de huidige studie werden Lewis rattenharten geperfuseerde<em> Ex vivo</em> Met een kristalloïde perfusaat (Krebs-Henseleit-oplossing) bij 37 ° C op een aangepaste Langendorff apparaat. Na een 20 minuten stabilisatieperiode, werden de harten met tussenpozen geperfuseerd met 11 mmol / l 2,3-butaandion monoxime om krimp-geassocieerde bewegingen te elimineren tijdens de afbeelding overname. Voor optische mapping, we geladen harten met de snelle respons potentiometrische probe di-8-ANEPPS<sup> [4]</sup> (5 mmol / L) en in het kort verlicht het preparaat, met 475 ± 15 nm excitatie licht. Tijdens een typische twee seconden periode van verlichting, was> 605 nm uitgestraalde licht van de cardiale voorbereiding afgebeeld met een high-speed CMOS-camera is aangesloten op een horizontale macroscoop. Voor deze demonstratie, harten werden tempo op 300 slagen per minuut met een coaxiale elektrode is aangesloten op een geïsoleerde elektrische stimulatie eenheid. Gelijktijdig bipolaire elektrografische opnames werden verworven en geanalyseerd, samen met de spanning signalen met behulp van gemakkelijk verkrijgbare software. Op deze manier kan actiepotentialen op het oppervlak van Langendorff-geperfuseerde rattenharten worden gevisualiseerd en geregistreerd bij elektrografisch signalen.

Protocol

Deel 1: Bereid oplossingen en de geïsoleerde doorbloede hart-systeem Op de ochtend van het experiment, is 4,0 L van Krebs-Henseleit oplossing, bereid zoals eerder beschreven [5, 6]. 11 mmol / l 2,3-butaandion monoxime (BDM) wordt opgelost in 1,0 L van Krebs-Henseleit oplossing gedecanteerd van het perfusaat bereid in stap 1.1. Een extra 150 ml Krebs-Henseleit is verwijderd uit het perfusaat bereid in stap 1,1 en gemengd met 5 Mol / L di-8-ANEPPS (verdund uit een 10 mmol / L voo…

Discussion

Wegnemen van het hart van de verdoofde ratten snel moeten worden uitgevoerd om myocardischemie te voorkomen. Als ischemie of onvoldoende coronaire perfusie optreedt, zal het hart waarschijnlijk ontwikkelen aritmieën en kan worden infarct. Daarnaast zullen deze harten tonen onvoldoende fluorescentie-emissie voor informatieve opnames en de daarop volgende analyses. Voor het laden van de kleurstof, myocardcellen moeten adequaat worden geperfuseerd met Krebs-Henseleit oplossing om vast te stellen en onderhouden van een fys…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk wordt ondersteund door subsidies voor onderzoek van de National Institutes of Health (HL068915, HL088206) en bijdragen aan het hartgeleiding Fonds op Children's Hospital Boston.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
CardioCMOS-SM128f Equipment RedShirt Imaging, Decatur, GA 30030 USA    
CardioPlex Software Equipment RedShirt Imaging, Decatur, GA 30030 USA    
LUXEON LED Light Source 460-490 nm Equipment Lumileds Lighting, US, LLC, San Jose, CA 95131 USA LXHL-PB02  
ECG Amplifier Type 689 Hugo Sachs Elektronik Equipment Harvard Apparatus, Holliston, MA 01746 USA 730149  
Dichroic Mirror 505 nm Equipment Semrock, Rochester, NY 14624 USA FF505-SDi01-25×36  
Emission Filter 605 nm Long Pass Equipment SciMedia, Costa Mesa, CA 92626 USA    
THT Sideways Equipment SciMedia, Costa Mesa, CA 92626 USA 25 BM-8  
Mini Ball Joint Holder Equipment Harvard Apparatus, Holliston, MA 01746 USA BS4 73-0177  
Small Stimulation Electrode Set Equipment Harvard Apparatus, Holliston, MA 01746 USA BS4 73-0160  
BM-6 Benchtop Vibration Isolation Platform Equipment Technology Inc., Inglewood, CA 90301 25 BM-6  
Monopolar ECG Electrode Equipment Harvard Apparatus, Holliston, MA 01746 USA BS4 73-0200  
Roller Pump SCI 400 Equipment Watson-Marlow Bredel Inc., Wilmington, MA 01887 USA 401U/D1  
Roller Pump MasterFlex Easy Load II Equipment Cole Parmer, Vernon Hills, Illinois 60061 USA Model 77201-60  
Tubing Marprene #14 Equipment Watson-Marlow Bredel Inc., Wilmington, MA 01887 USA 902.0016.016  
MasterFlex Tubing Equipment PharMed, Westlake, OH 44145 USA 06485-25  
S48 Square Pulse Stimulator Equipment Grass Technologies, West Warwick, RI 02893 USA Model S48  
SIU5 RF TRANSFORMER ISOLATION UNIT Equipment Grass Technologies, West Warwick, RI 02893 USA Model SIU5  
5 Liter Water Jacketed Reservoir Equipment Radnoti Glass Technology Inc., Monrovia CA 91016 USA 120142-5  
2 Liter Water Jacketed Reservoir Equipment Radnoti Glass Technology Inc., Monrovia CA 91016 USA 120142-2  
0.5 Liter Water Jacketed Reservoir Equipment Radnoti Glass Technology Inc., Monrovia CA 91016 USA 120142-0  
0.25 Liter Water Jacketed Reservoir Equipment Radnoti Glass Technology Inc., Monrovia CA 91016 USA 120142-025  
10 ml Heating Coil Equipment Radnoti Glass Technology Inc., Monrovia CA 91016 USA 158822  
Compliance Bubble Trap Equipment Radnoti Glass Technology Inc., Monrovia CA 91016 USA 130149  
Luer Disconnect Cannula Equipment Harvard Apparatus, Holliston, MA 01746 USA 72-1444  
3-Way stopcock, FLL to MLT, No Port Covers Equipment Harvard Apparatus, Holliston, MA 01746 USA BS4 72-2630  
Thermocouple Thermometer Equipment Cole Parmer, Vernon Hills, Illinois 60061 USA WU-91100-40  
Ultra Fine IT-Series Flexible Microprobe Equipment PhysiTemp Instruments Inc., Clifton, NJ 07013 USA IT-24P  
Oscilloscope Tektronix TDS 1002 Equipment Tektronix Inc., Beaverton, OR 97005 USA TDS 1002B  
2,3-Butanedione monoxime Reagent Sigma, St. Louis, MO 63132 USA B0753  
Ketamine HCl Reagent Hospira Inc., Lake Forest, IL 60045 USA RL-0065  
Xylazine Reagent Lloyd Inc., Iowa 51601 USA LB15705A  
E-TOXA-CLEAN® Reagent Sigma, St. Louis, MO 63132 USA E9029  
Di-8-ANEPPS Reagent Invitrogen, Carlsbad, CA 92008 USA D-3167  

Riferimenti

  1. Efimov, I. R., Nikolski, V. P., Salama, G. Optical imaging of the heart. Circ Res. 95 (1), 21-33 (2004).
  2. Hucker, W. J. Images in cardiovascular medicine. Optical mapping of the human atrioventricular junction. Circulation. 117 (11), 1474-147 (2008).
  3. Entcheva, E., Bien, H. Macroscopic optical mapping of excitation in cardiac cell networks with ultra-high spatiotemporal resolution. Prog Biophys Mol Biol. 92 (2), 232-257 (2006).
  4. Entcheva, E. Fluorescence imaging of electrical activity in cardiac cells using an all-solid-state system. IEEE Trans Biomed Eng. 51 (2), 333-341 (2004).
  5. Stamm, C. Rapid endotoxin-induced alterations in myocardial calcium handling: obligatory role of cardiac TNF-alpha. Anesthesiology. 95 (6), 1396-1405 (2001).
  6. Choi, Y. H. Cardiac conduction through engineered tissue. Am J Pathol. 169 (1), 72-85 (2006).
  7. Skrzypiec-Spring, M. Isolated heart perfusion according to Langendorff—still viable in the new millennium. J Pharmacol Toxicol Methods. 55 (2), 113-126 (2007).
  8. Fedorov, V. V. Application of blebbistatin as an excitation-contraction uncoupler for electrophysiologic study of rat and rabbit hearts. Heart Rhythm. 4 (5), 619-626 (2007).

Play Video

Citazione di questo articolo
Sill, B., Hammer, P. E., Cowan, D. B. Optical Mapping of Langendorff-perfused Rat Hearts. J. Vis. Exp. (30), e1138, doi:10.3791/1138 (2009).

View Video