Summary

Levande cell imaging av F-aktin Dynamics via Fluorescent Speckle Mikroskopi (FSM)

Published: August 05, 2009
doi:

Summary

Urval, mikroinjektion och avbildning av fluorescerande-märkta F-aktin via fluorescerande speckle mikroskopi (FSM).

Abstract

I detta protokoll beskriver vi användning av fluorescerande Speckle mikroskopi (FSM) för att ta högupplösta bilder av aktin dynamik i PtK1 celler. En unik fördel med Mikronesiens är dess förmåga att fånga rörelsen och kinetik omsättning (montering / demontering) av F-aktin nätverk inom levande celler. Denna teknik är särskilt användbart med att dra kvantitativa mätningar av F-aktin dynamik när det paras ihop med datorseende programvara (qFSM). Vi beskriver valet, mikroinjektion och visualisering av fluorescerande aktin sonder i levande celler. Viktigt liknande förfaranden gäller för visualisera andra macomolecular församlingar. FSM har visats för mikrotubuli, intermediära filament och komplex vidhäftning.

Protocol

Avsnitt 1: få din fluorescerande aktin för FSM Material som behövs: renat aktin, fluoroforen (Alexa, X-Rhodamine rekommenderas). G-buffert, ultracentrifugen En viktig komponent för att skaffa bra Mikronesiens filmer kräver korrekt märkning av aktin (eller andra cytoskelettala proteiner) med fluoroforen som du väljer. Vi rekommenderar fluoroforer av Alexa (488, 568 våglängder) och X-Rhodamine succinimidyl derivat ester som riktar utsätts lysinrester på ytan av akt…

Discussion

Flera viktiga faktorer är avgörande för att lyckas få speckle bilder, hur bra prickar börjar och slutar med kvaliteten på din fluorescerande aktin. En hög märkning förhållande färgämne till aktin monomer, ligger runt 0,4 till 0,7 kommer att säkerställa att fläckarna kommer att visas ljusa och diskreta, medan de märkta proteinet i sig bör vara lösliga och fri från aggregat. Lika viktigt är mikroinjektion förfarande. För att säkerställa normal cell homeostas (och överlevnad), celler måste injicer…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Utvecklingen av qFSM finansieras av NIH bidraget U01 GM06230.

Materials

Injection buffer (IB)
50 mM potassium glutamate
0.5 M MgCl2 (APPENDIX 2A)
Store up to 2 years at −20° C

 

G-buffer
2 mM Tris⋅Cl, pH 8.0 (APPENDIX 2A)
0.2 mM CaCl2 (APPENDIX 2A)
Add just before use:
0.2 mM ATP (see recipe for 100 mM)
0.5 mM 2-mercaptoethanol

Store up to 1 day at 4° C

References

  1. Waterman-Storer, C. Fluorescent speckle microscopy (FSM) of microtubules and actin in living cells. Curr Protoc Cell Biol. Chapter 4, Unit 4.10-Unit 4.10 (2002).
  2. Ponti, A., Machacek, M., Gupton, S. L., Waterman-Storer, C. M., Danuser, G. Two distinct actin networks drive the protrusion of migrating cells. Science. 305, 1782-1786 (2004).
  3. Zhang, X. F., Schaefer, A. W., Burnette, D. T., Schoonderwoert, V. T., Forscher, P. Rho-dependent contractile responses in the neuronal growth cone are independent of classical peripheral retrograde actin flow. Neuron. 40, 931-944 (2003).
  4. Salmon, W. C., Adams, M. C., Waterman-Storer, C. M. Dual-wavelength fluorescent speckle microscopy reveals coupling of microtubule and actin movements in migrating cells. J Cell Biol. 158, 31-37 (2002).
  5. Danuser, G., Waterman-Storer, C. M. Quantitative fluorescent speckle microscopy of cytoskeleton dynamics. Annu Rev Biophys Biomol Struct. 35, 361-387 (2006).
check_url/1325?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lim, J., Danuser, G. Live Cell Imaging of F-actin Dynamics via Fluorescent Speckle Microscopy (FSM). J. Vis. Exp. (30), e1325, doi:10.3791/1325 (2009).

View Video