Summary

Inserte grandes Ambiental Genómica Producción Biblioteca

Published: September 23, 2009
doi:

Summary

Construcción de una biblioteca fosmid con el ADN genómico aislado del medio ambiente de la continuidad de profundidad vertical de un fiordo de la temporada hipóxica se describe. La biblioteca clon resultante se recoge en placas de 384 pocillos y se archivan para la secuenciación de aguas abajo y la detección funcional mediante la aplicación de un sistema de recogida automatizada de la colonia.

Abstract

La gran mayoría de los microbios en la naturaleza en la actualidad siguen siendo inaccesibles para los métodos de cultivo tradicionales. Durante la última década, la cultura independiente de la genómica ambiental (<em> Ie</em> Metagenómica) enfoques han surgido, lo que permite a los investigadores a cerrar esta brecha mediante la captura de cultivo el contenido genético de las comunidades indígenas microbiana directa del medio ambiente. Para este fin, las bibliotecas de ADN genómico se construyen usando estándares, aunque ingeniosa técnicas de laboratorio de clonación. A continuación se describe la construcción de una biblioteca genómica insertar grandes fosmid medio ambiente con el ADN derivados de la continuidad de profundidad vertical de un fiordo de la temporada de hipoxia. Este protocolo está directamente relacionado con una serie de protocolos de conexión incluyendo el muestreo de las aguas costeras marinas [1], la filtración de grandes volúmenes de biomasa microbiana [2] y la extracción del ADN y el protocolo de purificación [3]. Al principio, el ADN genómico de alta calidad final reparado con la creación de 5-fosforilados extremos romos. Final de reparar el ADN se somete a electroforesis en gel de campo pulsado (PFGE) para la selección del tamaño y la extracción de gel se realiza para recuperar los fragmentos de ADN entre 30 y 60 mil pares de bases (Kb) de longitud. ADN tamaño seleccionado se purifica lejos de la matriz de gel PFGE y se ligó con la fosfatasa tratados con extremo romo fosmid CopyControl vector PCC1 (EPICENTRO<a href="http://www.epibio.com/item.asp?ID=385"> Http://www.epibio.com/item.asp?ID=385</a>). Concatemers lineal de PCC1 y el ADN se inserta posteriormente headfull empaquetados en partículas de fago lambda por terminasa, con posterior infección de resistentes a los fagos<em> E. coli</em> Células. Clones con éxito transducidas se recuperan en placas de agar LB con los antibióticos de selección y se archivan en formato de 384 pocillos placa utilizando una colonia automatizado recoger robot (Qpix2, GENETIX). El protocolo ha sido elaborada a partir de varias fuentes, incluyendo el kit de Producción CopyControl Fosmid Biblioteca de EPICENTRO y los trabajos publicados por varios grupos de investigación [4-7]. Cada paso se presenta con las mejores prácticas en la mente. Siempre que sea posible se destacan las sutilezas de la ejecución para mejorar la calidad y la eficiencia general de la producción de la biblioteca. Todo el proceso de producción de la biblioteca y recoger fosmid colonia automatizado toma por lo menos 70-10 días, ya que hay muchos pasos de incubación incluidos. Sin embargo, hay varios posibles puntos de parada que se mencionan en el protocolo.

Protocol

Construcción Fosmid biblioteca se ha dividido en cuatro pasos principales y sub-dividido en varias partes (ver Fig. 1 para un resumen). Paso I (véase el protocolo "de extracción de ADN de 0,22 M filtros Sterivex" [3]) Parte 1: catalizadas por enzimas lisis celular Parte 2: Purificación de ADN del medio ambiente mediante centrifugación en gradiente de densidad de CsCl y la recuperación de ADN <p class="jove…

Discussion

El procedimiento se describe cómo generar más eficiente una biblioteca fosmid gran inserción con el ADN genómico derivado de una muestra de las aguas costeras. Aguas arriba de extracción de ADN genómico se describe en un protocolo separado [3].

A medida que la producción fosmid-biblioteca es un proceso de varios pasos, el plan de al menos dos a tres semanas de tiempo para el procedimiento completo, incluyendo todos los pasos cuatro que se presentan. La extracción de ADN genómico es …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nos gustaría agradecer a la Fundación Canadiense para la Innovación, el British Columbia Fondo de Desarrollo de conocimientos y el Nacional de Ciencias e Ingeniería de Investigación (NSERC) de Canadá para apoyar los estudios en curso en las regiones de bajo nivel de oxígeno de las aguas oceánicas costeras y abiertas. MT SL y con el apoyo de becas del Centro de TULA financiado por la Fundación para la Diversidad Microbiana y Evolución (CMDE). MT también recibió el apoyo de becas de la Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG).

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Step II        
CopyControl™ Fosmid Library Production Kit   EPICENTRE CCFOS110 sufficient to generate 9-10 fosmid libraries
SeaPlaque Agarose   Cambrex 50100  
stirring hot plate   Corning PC-420D  
1.0X TAE running buffer        
CHEF Mapper XA pulsed field electrophoresis system including cooling module and variable speed pump   Bio-Rad    
λ DNA-HindIII Digest   NEB N3012S  
MidRange I PFG Marker   NEB N3551S  
10,000X SYBR Gold   Invitrogen S11494  
microwavable plastic wrap   Saran premium wrap    
Safe Imager transilluminator   Invitrogen S37102  
GELase Agarose Gel-Digesting Preparation   EPICENTRE G09100  
scalpel   Fisher Scientific 08-927-5D  
Amicon Ultra-4 Centrifugal Filter Unit with Ultracel-10 membrane   Millipore UFC801024  
Microcon YM-30 Centrifugal Filter Unit   Millipore 42410  
nuclease free water   Ambion AM9932  
Quant-iT PicoGreen dsDNA Assay Kit *2000 assays*#   Invitrogen P7589  
digital dry block heater   VWR 12621-088  
water bath   VWR 14231-854  
centrifuge   Beckman Coulter Avanti J-E  
centrifuge rotor   Beckman Coulter JA 5.3  
table top centrifuge   Eppendorf 5415D  
microcentrifuge tubes, 1.7 mL, clear   Axygen MCT-175-C  
15 mL centrifuge tubes   Fisher-Corning 430052  
Step III        
LB broth   Fisher Scientific BP 1426-2  
MgSO4   Sigma-Aldrich M2643  
phage dilution buffer       10 mM Tris-HCl [pH 8.3], 100 mM NaCl, 10 mM MgCl2
cryogenic vials   Fisher-Corning 430488  
Step IV        
96 well plate with lid   Fisher-Corning CS003370(3370)  
384 well plate with lid   Fisher-Corning 07201157(3680)  
Petri dishes 100 O.D. x 15mm H   Fisher 08-757-12  
Petri dishes 150 Dia. x 15mmH   Fisher 08-757-14  
BD Falcon BioDish XL 245 X 245 mm   VWR CABD351040  
glycerol   Sigma-Aldrich G5516  
chloramphenicol   Sigma-Aldrich C0378  
LB broth   Fisher Scientific BP 1426-2  
Difco Agar   BD 214530  
glass beads   Fisher Scientific 10-310-1  
QFill3   Genetix X3050  
Bleach   Javex    
Ethanol   Sigma-Aldrich E7023  
15 mL centrifuge tubes   Fisher-Corning 430052  
QPix colony picker   Genetix QPix2  
picking head (E. coli)   Genetix X4006  

Riferimenti

  1. Zaikova, E., Hawley, A., Walsh, D. A., Hallam, S. J. Seawater sampling and. J Vis Exp. , (2009).
  2. Walsh, D. A., Zaikova, E., Hallam, S. J. Large volume (20L+) filtration of coastal seawater samples. J Vis Exp. 28, (2009).
  3. Wright, J. J., Lee, S., Zaikova, E., Walsh, D. A., Hallam, S. J. DNA Extraction from 0.22 μM Sterivex Filters and Cesium Chloride Density Gradient Centrifugation. J Vis Exp. 31, 10-3791 (2009).
  4. Stein, J. L., Marsh, T. L., Wu, K. Y., Shizuya, H., DeLong, E. F. Characterization of uncultivated prokaryotes: isolation and analysis of a 40-kilobase-pair genome fragment from a planktonic marine archaeon. J. Bacteriol. 178, 591-599 (1996).
  5. Béjà, O., Suzuki, O., Koonin, M. T., Aravind, E. V., Hadd, L., Nguyen, L. P. A., Villacorta, R., Amjadi, M., Garrigues, C., Jovanovich, S. B., Feldman, R. A., DeLong, E. F. Construction and analysis of bacterial artificial chromosome libraries from a marine microbial assemblage. Environ. Microbiol. 2, 516-529 (2000).
  6. DeLong, E. F., Preston, C. M., Mincer, T., Rich, V., Hallam, S. J., Frigaard, N. -. U., Martinez, A., Sullivan, M. B., Edwards, R., Brito, B. R., Chisholm, S. W., Karl, D. M. Community genomics among stratified microbial assemblages in the Ocean’s interior. Science. 311, 496-503 (2006).
  7. Hallam, S. J., Putnam, N., Preston, C. M., Detter, J. C., Rokhsar, D., Richardson, P. M., DeLong, E. F. Reverse methanogenesis: testing the hypothesis with environmental genomics. Science. 305, 1457-1462 (2004).
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Citazione di questo articolo
Taupp, M., Lee, S., Hawley, A., Yang, J., Hallam, S. J. Large Insert Environmental Genomic Library Production. J. Vis. Exp. (31), e1387, doi:10.3791/1387 (2009).

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