Summary

Fare Diploide Zebrafish Gynogenetic di Pressure presto

Published: June 30, 2009
doi:

Summary

Questo è un metodo per la generazione di embrioni di zebrafish gynogenetic diploide (embrioni il cui unico contributo genetico proviene dalla madre), bloccando la seconda divisione meiotica subito dopo la fecondazione con luce ultravioletta-inattivato sperma. Embrioni EP non sono completamente omozigoti per ricombinazione durante la prima divisione meiotica, tuttavia sono omozigoti a tutti i loci che non sono stati separati dalle loro centromero dalla ricombinazione.

Abstract

Eterozigosi negli eucarioti diploidi spesso rende studi genetici ingombrante. I metodi che producono prole vitale diploide omozigote direttamente dalle femmine eterozigoti permettono F1 femmine mutagenizzate di essere proiettati direttamente per le mutazioni deleterie in uno schermo accelerato in avanti genetica. Streisinger et al.<sup> 1,2</sup> Descritti metodi per rendere gynogenetic (omozigoti) zebrafish diploide attivando uova di pesce zebra con luce ultravioletta-inattivato sperma e la prevenzione o il meiotica seconda o prima divisione cellulare zigotico con trattamenti fisici (calore o pressione) che microtubuli deploymerize. La "pressione precoce" (EP) blocca il metodo meiosi II, che si verifica poco dopo la fecondazione. Il metodo PE produce un'alta percentuale di embrioni vitali che possono sviluppare per adulti fertili di entrambi i sessi. Il metodo genera embrioni che sono omozigoti a tutti i loci ad eccezione di quelli che sono stati separati dai loro centromero dalla ricombinazione durante la meiosi I. mutazione omozigote vengono rilevati in frizioni tra il Parlamento europeo al 50% per i loci centromerica e meno dell'1% per i loci telomerica. Questo metodo è riprodotto testualmente dal libro Zebrafish<sup> 3</sup>.

Protocol

Panoramica di pressione all'inizio Nota: le ricette per molti dei reagenti utilizzati in questo protocollo come tricaine, pesci d'acqua salina e Hanks sono disponibili online nel capitolo 10 del Libro Zebrafish 3 ( http://zfin.org/zf_info/zfbook/zfbk.html ) Produrre embrioni da fecondazione in vitro con lo sperma UV inattivato. Trasferire immediatamente le uova fecondate in un flacone di vetro (con…

Discussion

E 'importante assicurarsi che gli embrioni prodotti con questo metodo sono diploidi gynogenetic vero. Come controlli, generano una frizione delle uova diploidi normali (tenendo da parte alcune delle spermatozoi senza UV-inattivazione) e una serie di embrioni aploidi (tenendo da parte una frizione delle uova fecondate con gli spermatozoi UV senza passare per la procedura di PE). A 1 giorno dopo la fecondazione degli embrioni aploidi hanno un asse corto del corpo, il cervello e la morfologia irregolare somite. Haploid…

Acknowledgements

Metodi per la fecondazione in vitro e diploidi gynogenetic sono stati sviluppati per zebrafish da Charline Walker nel laboratorio di Giorgio Streisinger presso l'Università dell'Oregon negli anni 1970 e 1980. Il metodo descritto qui è invariato rispetto a protocolli Charline, che sono disponibili per intero nel Libro Zebrafish 3.

Metodi per la fecondazione in vitro e diploidi gynogenetic sono stati sviluppati per zebrafish da Charline Walker nel laboratorio di Giorgio Streisinger presso l'Università dell'Oregon negli anni 1970 e 1980. Il metodo descritto qui è invariato rispetto a protocolli Charline, che sono disponibili per intero nel Libro Zebrafish 3.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Tricaine   Sigma    
Watch glass        
French Press        
Pressure cylinder        
Instant ocean        
Pasteur pipettes       Cut off the narrow end, fire polish
UV cross-linker        
microcapillaries        

Riferimenti

  1. Streisinger, G. Segregation analyses and gene-centromere distances in zebrafish. Genetica. 112 (2), 311-311 (1986).
  2. Streisinger, G. Production of clones of homozygous diploid zebra fish (Brachydanio rerio). Nature. 291 (5813), 293-293 (1981).
  3. Westerfield, M. . The Zebrafish Book: A guide for the laboratory use of zebrafish (Danio rerio). , (2000).
  4. Johnson, S. L., Africa, D., Horne, S., Postlethwait, J. H. Half-tetrad analysis in zebrafish: mapping the ros mutation and the centromere of linkage group I. Genetica. 139 (4), 1727-1727 (1995).
  5. Beattie, C. E., Raible, D. W., Henion, P. D., Eisen, J. S. Early pressure screens. Methods Cell Biol. 237 (71), 2575-25 (1999).
  6. Johnson, S. L. Centromere-linkage analysis and consolidation of the zebrafish genetic map. Genetica. 142 (4), 1277-1277 (1996).
  7. Trede, N. S. Zebrafish mutants with disrupted early T-cell and thymus development identified in early pressure screen. Dev Dyn. 237 (9), 2575-2575 (1999).
check_url/it/1396?article_type=t

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Citazione di questo articolo
Walker, C., Walsh, G. S., Moens, C. Making Gynogenetic Diploid Zebrafish by Early Pressure. J. Vis. Exp. (28), e1396, doi:10.3791/1396 (2009).

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