दीमक की आंत रोगाणुओं (Zootermopsis Angusticollis) से डीएनए निकालने और आंत रोगाणुओं Visualizing
Summary
इस वीडियो दीमक hindgut में निवासी रोगाणुओं की प्रजातियों से डीएनए निकालने के लिए तकनीक दिखाता है. एक गीला माउंट स्लाइड है, जो पेट माइक्रोबियल समुदाय visualizing के लिए उपयोगी है की तैयारी भी सचित्र है और प्रजातियों अमीर आंत पर्यावरण के माध्यम से एक दौरे दिया है.
Abstract
दीमक कुछ लेने लकड़ी के द्वारा पूरी तरह निर्वाह करने की क्षमता के लिए जाना जाता पशुओं के बीच रहे हैं. दीमक पेट पथ एक घने और प्रजातियों अमीर माइक्रोबियल आबादी है कि एसीटेट में lignocellulose की गिरावट में मुख्य रूप से सहायता शामिल है, प्रमुख ईंधन भरने पोषक तत्व दीमक चयापचय (Odelson और Breznak, 1983). इन माइक्रोबियल आबादी के भीतर बैक्टीरिया, methanogenic जीव और, कुछ दीमक ("कम") में, यूकेरियोटिक प्रोटोजोआ हैं. इस प्रकार, दीमक माइक्रोबियल प्रजातियों और कई जैव रासायनिक कार्यों वे अपने मेजबान के लाभ के लिए प्रदर्शन के बीच बातचीत के अध्ययन के लिए उत्कृष्ट अनुसंधान के विषय हैं. दीमक के रूप में के रूप में अच्छी तरह से हिम्मत कुंजी विभिन्न जैव रासायनिक प्रक्रियाओं में शामिल जीनों में माइक्रोबियल आबादी की प्रजातियों संरचना को आणविक तकनीक का उपयोग (, Schmit – वैगनर एट अल, 2003; Salmassi और Leadbetter, 2003 Kudo एट अल, 1998) पता लगाया गया है. इन तकनीकों और दीमक आंत वातावरण से उच्च गुणवत्ता वाले न्यूक्लिक एसिड की निकासी शुद्धि पर निर्भर करते हैं. Berthelet एट अल, 1996;. Purdy एट अल, 1996;. Salmassi और Leadbetter, निष्कर्षण इस वीडियो में वर्णित तकनीक निकासी और पर्यावरण नमूने (मोर एट अल, 1994 से nucleic एसिड की शुद्धि के लिए विकसित प्रोटोकॉल का एक संशोधित संकलन 2003; Ottesen एट अल 2006) और यह दीमक hindgut पोलीमरेज़ चेन रिएक्शन (पीसीआर) के लिए टेम्पलेट के रूप में उपयोग के लिए उपयुक्त सामग्री से डीएनए पैदा करता है.
Protocol
Discussion
हमारे अनुभव में, Zootermopis nevadensis की तरह लकड़ी खिला दीमक प्रजातियों का सूक्ष्म समुदायों से निकाले डीएनए निष्कर्षण और शुद्धीकरण के एक दौर के बाद पीसीआर टेम्पलेट के लिए पर्याप्त शुद्ध है. हालांकि, कूड़े – खिला और मिट्टी …
Materials
| Material Name | Tipo | Company | Catalogue Number | Comment |
|---|---|---|---|---|
| PVPP/SDS/phenol | Buffer | homogeneization buffer | ||
| DNeasy Tissue Kit | Kit | Qiagen | 77607 | Used according to the protocol for isolation of genomic DNA from crude lysates (Appendix H, product manual version: July 2003) |
| TE | Buffer | Sigma | T9285 | 1x buffer (1 mM Tris-HCl, 0.1 mM EDTA, pH 8.0) from 100x concentrate |
| zirconia/silica beads | Supplies | BioSpec Products | 11079101z | 0.1 mm |
| PVPP | Reagent | Sigma | P6755 | 1% w/v polyvinylpolypyrrolidone prepared from dry reagent as a 1x suspension in TE buffer |
| Zootermopsis nevadensis | Animal | Termites | ||
| SDS | Reagent | Sigma | L4390 | Sodium dodecyl sulfate 20% soln. in water from dry reagent |
| Phenol | Reagent | Sigma | 77607 | TE-saturated, ~73% |
| MiniBeadbeater-8 | Tool | BioSpec Products | 963 | |
| BSS | Buffered Salt Solution, pH 7.2 | Formulation per liter: 2.5 g K2HPO4, 1.0 g KH2PO4, 1.6 g KCl, 1.4 g NaCl, 0.075 g CaCl, 1 g MgCl, and 10 mL of a 1M soln. of NaHCO3 | ||
| AxioPlan-2 | Microscope | Carl Zeiss, Inc. USA | Outfitted with 40x objective, 1.6x optivar and 10x ocular lenses. Samples were viewed using phase contrast illumination |
Riferimenti
- Berthelet, M., Whyte, L. G., Greer, C. W. Rapid, Direct Extraction of DNA from Soils for PCR Analysis using Polyvinylpolypyrrolidone Spin Columns. FEMS Microbiol. Lett. 138, 17-22 (1996).
- Kudo, T., Ohkuma, M., Moriya, S., Noda, S., Ohtoko, K. Molecular Phylogenetic Identification of the Intestinal Anaerobic Microbial Community in the Hindgut of the Termite, Reticulitermes Speratus, without Cultivation. Extremophiles. 2, 155-161 (1998).
- Moré, M. I., Herrick, J. B., Silva, M. C., Ghiorse, W. C., Madsen, E. L. Quantitative Cell Lysis of Indigenous Microorganisms and Rapid Extraction of Microbial DNA from Sediment. Appl. Environ. Microbiol. 60, 1572-1580 (1994).
- Odelson, D. A., Breznak, J. A. Volatile Fatty Acid Production by the Hindgut Microbiota of Xylophagous Termites. Appl. Environ. Microbiol. 45, 1602-1613 (1983).
- Ottesen, E. A., Hong, J. W., Quake, S. R., Leadbetter, J. R. Microfluidic Digital PCR Enables Multigene Analysis of individual Environmental Bacteria. Science. 314, 1464-1467 (2006).
- Purdy, K. J., Embley, T. M., Takii, S., Newdell, D. B. Rapid Extraction of DNA and rRNA from Sediments by a Novel Hydroxyapatite Spin-Column Method. Appl. Environ. Microbiol. 62, 3905-3907 (1996).
- Salmassi, T. M., Leadbetter, J. R. Analysis of Genes of Tetrahydrofolate-Dependent Metabolism from Cultivated Spirochaetes and the Gut Community of the Termite Zootermopsis Angusticollis. Microbiology. 149, 2529-2537 (2003).
- Schmitt-Wagner, D., Friedrich, M. W., Wagner, B., Brune, A. Phylogenetic Diversity, Abundance, and Axial Distribution of Bacteria in the Intestinal Tract of Two Soil-Feeding Termites (Cubitermes spp). Appl. Environ. Microbiol. 69, 6007-6017 (2003).
- Tsai, Y. L., Olson, B. H. Rapid Method for Separation of Bacterial DNA from Humic Substances in Sediments for Polymerase Chain Reaction. Appl. Environ. Microbiol. 58, 2292-2295 (1992).
