Summary

Экс-ово Куриного эмбриона культуры систему, пригодную для обработки изображений и микрохирургии Приложения

Published: October 23, 2010
doi:

Summary

В этой статье мы приведем простой методологии чтобы долгосрочные<em> Экс-ово</em> Птичьего культуры эмбриона. Эта техника идеально подходит для продольной эксперименты требуют полного оптического доступа и / или стерильной транспортировки в птичьем эмбрионов.

Abstract

Понимание связи между генетическими и микросреды факторы, влияющие на нормальное и неправильного эмбрионального развития имеет основополагающее значение для открытия новых терапевтических стратегий. Достижения в области технологий визуализации позволили количественного исследования организации и созревание тела план, но поздней стадии эмбрионального морфогенеза менее ясна. Куриные эмбрионы привлекательным позвоночных животных модельной системы для такого применения из-за своей простоты культуры и хирургических манипуляций. Ранние эмбрионы могут быть культивировали в течение короткого времени на фильтровальную бумагу кольца, которое позволяет полностью оптического доступа для структурирования клетки и 1,2 судьба исследований. Изучение передовых процессов развития, таких как сердечный морфогенез традиционно осуществляется через окно яичной скорлупы 3-5, но эта техника пределы оптического доступа за счет размера окна. Ранее мы разработали простой метод культуры целых зародышей экс-ово с шестиугольными вес лодки на срок до 10 дней, что позволило высоким разрешением с помощью УЗИ 6,7. Эти культуры были трудно транспортировать, ограничивающий типы изображений инструментов, доступных для живых экспериментов. Мы здесь присутствует улучшенный оболочки менее культуре системы с экономически эффективной, портативные экологической палаты. Яйца были трещины на гамак создан полиуретановой мембраны (цепляются обертка), наложенных на окружности пластиковый стаканчик, частично заполненной стерильной водой. Размеры окружности и глубину гамак оба были важны для поддержания поверхностного натяжения, в то время как механика гамак и воды под помогли ослабить колебания индуцированного транспорта. Небольшой размер оборотной водой ванне был также разработан, с тем постоянный контроль температуры во время экспериментов. Мы демонстрируем способность к культуре эмбрионов на этом пути, по крайней мере 14 дней без морфогенный дефект или отложить и использовать эту систему в нескольких микрохирургических и визуализации приложений.

Protocol

1. Ex-ово культуры Протокола: Инкубируйте оплодотворенных куриных яиц Оплодотворенные яйца куриные можно хранить при температуре 13 ° С до 5 дней до начала инкубации без развития. Красный кулер вино может поддерживать эту температуру. Инкубировать яйца тупой …

Discussion

Оптический доступ и экспериментов в птичьего эмбриона является сложной задачей из-за ограничений яичной скорлупы. Windowing существенно ограничивает число микрососудов доступным для инъекций и микрохирургические подходы 8. В результате только ранних эмбрионов можно манипулироват?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Fertile white Leghorn chicken eggs        
Model GB1, Avery Incubators, Hugo CO        
Saran Wrap        
Kimwipes   Kimberly-Clark, Inc.    
Rubber bands        
Warm sterile water        
9 oz plastic cup        
100 mm diameter Petri dish        
1602N thermal air   GQF Manufacturing CO, Savannah GA    
Fluorescein-conjugated dextran (2 MDa, 1% w/v in phosphate buffered saline)   Sigma Aldrich Inc.    
Microforge   Glassworx, Inc, St Louis MO    
Glass capillary tubes (0.75 mm ID)        
Micromanipulator   World Precision Instruments, Sarasota FL Model M3301L  
Fluorescent microscopy   Zeiss Z20  
Fine 55-forceps   World Precision Instruments, Sarasota FL    
10-0 nylon surgical suture   Ethicon    
Tubing   VWR   1mm OD
3 mL syringe   BD    
200 μL pipetter and pipette tips   VWR    

References

  1. Zamir, E. A., Czirok, A., Cui, C., Little, C. D., Rongish, B. J. Mesodermal cell displacements during avian gastrulation are due to both individual cell-autonomous and convective tissue movements. Proc Natl Acad Sci U S A. 103, 19806-19811 (1980).
  2. Ehrman, L. A., Yutzey, K. E. Lack of regulation in the heart forming region of avian embryos. Dev Biol. 207, 163-175 (1999).
  3. Clark, E. B., Hu, N., Rosenquist, G. C. Effect of conotruncal constriction on aortic-mitral valve continuity in the stage 18, 21 and 24 chick embryo. Am J Cardiol. 53, 324-327 (1984).
  4. deAlmeida, A., McQuinn, T., Sedmera, D. Increased ventricular preload is compensated by myocyte proliferation in normal and hypoplastic fetal chick left ventricle. Circ Res. 100, 1363-1370 (2007).
  5. Nakamura, H., Funahashi, J. Introduction of DNA into chick embryos by in ovo electroporation. Methods. 24, 43-48 (2001).
  6. Butcher, J. T., McQuinn, T. C., Sedmera, D., Turner, D., Markwald, R. R. Transitions in early embryonic atrioventricular valvular function correspond with changes in cushion biomechanics that are predictable by tissue composition. Circ Res. 100, 1503-1511 (2007).
  7. McQuinn, T. C. High-frequency ultrasonographic imaging of avian cardiovascular development. Dev. Dyn. 236, 3503-3513 (2007).
  8. Korn, M. J., Cramer, K. S. Windowing chicken eggs for developmental studies. J Vis Exp. , (2007).
  9. Auerbach, R., Kubai, L., Knighton, D., Folkman, J. A simple procedure for the long-term cultivation of chicken embryos. Dev Biol. 41, 391-394 (1974).
check_url/2154?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Yalcin, H. C., Shekhar, A., Rane, A. A., Butcher, J. T. An ex-ovo Chicken Embryo Culture System Suitable for Imaging and Microsurgery Applications. J. Vis. Exp. (44), e2154, doi:10.3791/2154 (2010).

View Video