Summary

Cristallisation des protéines pour la cristallographie aux rayons X

Published: January 16, 2011
doi:

Summary

La structure 3-D d'une molécule donne une compréhension unique de la façon dont les fonctions molécule. La principale méthode de détermination de la structure au quasi-atomique résolution est cristallographie aux rayons X. Ici, nous montrons les méthodes actuelles pour l'obtention de trois dimensions des cristaux de toute macromolécule donnée qui conviennent pour la détermination de structure par cristallographie aux rayons X.

Abstract

Utilisation de la structure tridimensionnelle des macromolécules biologiques de déduire comment ils fonctionnent est l'un des domaines les plus importants de la biologie moderne. La disponibilité des structures de résolution atomique fournit une compréhension profonde et unique de la fonction des protéines, et les aide à démêler les rouages ​​internes de la cellule vivante. À ce jour, 86% de la Protein Data Bank (RCSB-PDB) sont entrées structures macromoléculaires qui ont été déterminés en utilisant cristallographie aux rayons X.

Pour obtenir des cristaux appropriés pour des études cristallographiques, la macromolécule (par exemple protéines, acides nucléiques, protéines-protéines complexes ou de protéines nucléiques complexes acide) doit être purifiée à l'homogénéité, ou aussi près que possible de l'homogénéité. L'homogénéité de la préparation est un facteur clé dans l'obtention de cristaux qui diffractent à haute résolution (Bergfors, 1999; McPherson, 1999).

Cristallisation nécessite apportant la macromolécule à la sursaturation. L'échantillon devrait donc être concentré à la concentration la plus élevée possible sans causer d'agrégation ou une précipitation de la macromolécule (généralement 20 à 50 mg / mL). Présentation de l'échantillon à l'agent de précipitation peut favoriser la nucléation des cristaux de protéines dans la solution, qui peut résulter en grande en trois dimensions la croissance de cristaux de la solution. Il existe deux techniques principales pour obtenir des cristaux: la diffusion de vapeur et de la cristallisation par lots. Dans la diffusion de vapeur, une goutte contenant un mélange de solutions précipitant et de protéine est scellé dans une chambre avec précipitant pur. La vapeur d'eau diffuse alors hors de la baisse jusqu'à ce que l'osmolarité de la goutte et le précipitant sont égaux (figure 1A). La déshydratation de la chute provoque une lente concentration de protéines et de précipitant jusqu'à ce qu'un équilibre soit atteint, idéalement dans la zone de nucléation des cristaux du diagramme de phase. La méthode repose sur lots portant les protéines directement dans la zone de nucléation par la protéine de mélange avec la quantité appropriée de précipitant (figure 1B). Cette méthode est généralement réalisée sous une paraffine / mélange d'huile minérale afin de prévenir la diffusion de l'eau hors de la goutte.

Ici, nous allons montrer deux types de montage expérimental pour la diffusion de vapeur, goutte suspendue et déposer assis, en plus de la cristallisation par lots dans l'huile.

Protocol

Matériaux: Échantillon de protéine – lysozyme (50 mg / ml) Goutte suspendue de 24 puits Bac Assis chute de 24 puits, Bac Cristallisation Microbatch 96 plateau bien Solutions de cristallisation (soit commerciales disponibles ou fait maison) Graisse silicone Seringue de 5 mL sans luer-lock Diapositives couvrent siliconé Ruban adhésif optique Paraffine 0,1 à 2 uL micropipette avec une faible rétention de con…

Representative Results

Crystallization is usually referred to as the bottleneck of X-ray crystallography. A sparse matrix incomplete factorial screen of precipitating conditions typically produces many different types of protein aggregation and precipitation, among them large single crystals. If the protein or precipitant concentrations are too high one can see brown matter with no distinct shape and size (amorphous precipitation). When the solution is undersaturated, the drop will often be completely clear and devoid of any kind of precipitat…

Discussion

Dans cet article nous décrire et démontrer générale protocoles actuels pour la cristallisation des protéines. Comme il une procédure en plusieurs étapes il ya quelques considérations, il faut être conscient. Lorsque vous travaillez avec de très petits volumes (0.5-2 uL), le séchage de la baisse due à l'évaporation est une préoccupation majeure. Par conséquent, il est recommandé de travailler dans un environnement bien contrôlé (avec faible débit d'air, une humidité élevée et un contrôle ri…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par une bourse de chercheur Burroughs Wellcome à YM et par une bourse de recherche postdoctorale Brown-Coxe de l'Université Yale à MD.

Materials

New Item        
Lysozyme   Sigma-aldrich L6876-1G  
24 well VDX Plate   Hampton research HR3-142  
24 well Cryschem Plate   Hampton research HR3-158  
Dow Corning Vacuum Grease   Hampton research HR3-510  
Siliconized glass circle coverslides   Hampton research HR3-231  
100% paraffin oil   Hampton research HR3-411  
1.88 inch wide Crystal Clear Sealing Tape   Hampton research HR3-511  
96 Well Imp@ct Plate (Microbatch plate)   Hampton research HR3-098  

Riferimenti

  1. Bergfors, T. M. . Protein crystallization : techniques, strategies, and tips : a laboratory manual. , (1999).
  2. Carter, C. W., Carter, C. W. Protein crystallization using incomplete factorial experiments. J Biol Chem. 254, 12219-12223 (1979).
  3. Cudney, R., Patel, S., Weisgraber, K., Newhouse, Y., McPherson, A. Screening and optimization strategies for macromolecular crystal growth. Acta Crystallogr D Biol Crystallogr. 50, 414-423 (1994).
  4. Dessau, M., Chamovitz, D. A., Hirsch, J. A. Expression, purification and crystallization of a PCI domain from the COP9 signalosome subunit 7 (CSN7). Acta Crystallogr Sect F Struct Biol Cryst Commun. 62, 1138-1140 (2006).
  5. Gilliland, G. L., Tung, M., Blakeslee, D. M., Ladner, J. E. Biological Macromolecule Crystallization Database, Version 3.0: new features, data and the NASA archive for protein crystal growth data. Acta Crystallogr D Biol Crystallogr. 50, 408-413 (1994).
  6. Jancarik, J., Kim, S. H. Sparse matrix sampling: a screening method for crystallization of proteins. J Appl Cryst. 23, 409-411 (1991).
  7. Jancarik, J., Scott, W. G., Milligan, D. L., Koshland, D. E., Kim, S. H. Crystallization and preliminary X-ray diffraction study of the ligand-binding domain of the bacterial chemotaxis-mediating aspartate receptor of Salmonella typhimurium. J Mol Biol. 221, 31-34 (1991).
  8. Kimber, M. S., Vallee, F., Houston, S., Necakov, A., Skarina, T., Evdokimova, E., Beasley, S., Christendat, D., Savchenko, A., Arrowsmith, C. H. Data mining crystallization databases: knowledge-based approaches to optimize protein crystal screens. Proteins. 51, 562-568 (2003).
  9. Lorber, B., Sauter, C., Theobald-Dietrich, A., Moreno, A., Schellenberger, P., Robert, M. C., Capelle, B., Sanglier, S., Potier, N., Giege, R. Crystal growth of proteins, nucleic acids, and viruses in gels. Prog Biophys Mol Biol. 101, 13-25 (2009).
  10. McPherson, A. . Crystallization of biological macromolecules. , (1999).
  11. McPherson, A. Introduction to protein crystallization. Methods. 34, 254-265 (2004).
  12. Page, R., Grzechnik, S. K., Canaves, J. M., Spraggon, G., Kreusch, A., Kuhn, P., Stevens, R. C., Lesley, S. A. Shotgun crystallization strategy for structural genomics: an optimized two-tiered crystallization screen against the Thermotoga maritima proteome. Acta Crystallogr D Biol Crystallogr. 59, 1028-1037 (2003).
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Citazione di questo articolo
Dessau, M. A., Modis, Y. Protein Crystallization for X-ray Crystallography. J. Vis. Exp. (47), e2285, doi:10.3791/2285 (2011).

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