Summary

Isolering av Mouse Respiratory epitelceller och exponering för experimentell cigarettrök på Air Liquid Interface

Published: February 21, 2011
doi:

Summary

Pulmonell epitelceller kan isoleras från luftvägarna hos möss och odlade på luft-vätska gränssnitt som en modell för differentierade respiratoriska epitelet. Ett protokoll beskrivs för isolering, odling och utsätta dessa celler för att integrera cigarettrök, för att studera molekylära reaktioner på detta miljögift.

Abstract

Pulmonell epitelceller kan isoleras från luftvägarna hos möss och odlade på luft-vätska gränssnitt (ALI) som en modell för differentierade respiratoriska epitelet. Ett protokoll beskrivs för att isolera och utsätta dessa celler att integrera cigarettrök (CS), för att studera epitelceller svar på CS exponering. Protokollet består av tre delar: isolering av luftvägarna epitelceller från mus luftstrupen, den odling av dessa celler vid luft-vätska gränssnitt (ALI) som fullt differentierade epitelceller, och leverans av kalibrerade mainstream CS till dessa celler i kultur. ALI kulturen systemet tillåter kulturen i andningsorganen epitel under förhållanden som mer liknar deras fysiologiska inställning än det vanliga flytande kultur. Studier av molekylära och lungor cellulära svaren på CS exponeringen är en kritisk komponent för att förstå effekterna av miljön luftföroreningar på människors hälsa. Forskningsresultat inom detta område i slutändan kan bidra till att förstå etiologi kronisk obstruktiv lungsjukdom (KOL) och andra tobaksrelaterade sjukdomar, som utgör stora globala hälsoproblemen.

Protocol

Det övergripande protokollet kräver 2 dagar för cell isoleringar från djurvävnad, 5-10 dagar för celldelning, och ytterligare 10-14 dagar för celldifferentiering vid luft-vätska gränssnitt. En extra dag krävs för cell exponeringar och skörd av prover. 1. Isolering av Mouse Tracheobronchial epitelceller (MTEC). OBS: Alla som beskrivs nedan har granskats och godkänts av Institutional Animal Care och användning kommittén vid Brigham and Women sjukhus / …

Discussion

Protokollet beskriver isolering mus trakeal epitelceller är anpassad från protokoll av dig et al., 1, och andra 2-3 med ändringar. Som med alla protokoll som beskriver cell isoleringar, är den mest kritiska aspekten att undvika kontamination från bakterie-eller svamppatogener genom att använda strikt aseptisk teknik. Ett andra viktigt steg är att undvika fibroblast kontaminering av kulturer, vilket kan undvikas genom noggrann dissekering av tracheas, och negativa urval som beskrivs …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Emeka Ifedigbo för tekniskt bistånd och Dr Shivraj Tyagi för värdefulla expertis. Vi tackar också Harvard NeuroDiscovery Centrum för hjälp med mikroskopi. Detta arbete stöddes delvis av ett American Heart Association Predoctoral bevilja 09PRE2250120 till Hilaire Lam och NIH bidrag, R01-HL60234, R01-HL55330, R01-HL079904, tilldelades AMK Choi.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Ham’s F12 Medium 1X   Cellgro MT-10-080-CM With L-glutamine
Pen/strep   Lonza 17-602E  
Pronase   Roche 10165921001 Streptomyces griseus
Collagen I   BD biosciences 354236 From rat tail
Acetic Acid   Sigma 338826-25  
DNaseI   Sigma DN25-100MG From Bovine Pancreas
Bovine Serum Albumin   Fisher Scientific BP1605-100 Fraction V
Retinoic Acid   Retinoic Acid R265-50MG  
Hank’s Balanced Salt Solution   Gibco 14175 Without Ca++ or Mg++
DMEM-F12   Cellgro MT-15-090-CM Without L-Glutamine or HEPES
HEPES, 1M in H2O   Sigma 83264-100ML  
L-Glutamine   Sigma G7513-100ML 200 mM
Amphotericin B (Fungizone)   Fisher Scientific 1672346  
Insulin   Sigma 16634-50MG Bovine Pancreas
Apo-transferrin (human)   Sigma T1147-100MG  
Cholera toxin   Sigma C8052 Vibrio Cholerae
Epidermal growth factor   BD Biosciences 354001 Mouse
Bovine pituitary Extract   BD Biosciences 354123  
NuSerum   BD Biosciences 355100  
Transwell   Corning Costar 3401 12 mm, 0.4 mm Pore
Polycarbonate
Primaria 100 mm culture dish   Falcon 353803  
Pallflex membrane   Pall Life Sciences EMFAB TX40H120-WW  
Smoking Machine   EMI Services ATCSALI-1 see Footnote*

*The cigarette smoking machine is a custom designed and fabricated 14″x14″x20″ Dual chambered and water jacketed light tint clear proof 1/2″ thick polycarbonate Lexan chamber for cigarette smoke exposure with temperature controlled, water level sensor controlled shut off system. A cigarette smoking/puffing unit is installed for a variable cigarette puffing rates. When the unit is in use, it mimics an incubator in the sense that the temperature, humidity and carbon dioxide are controlled in the system. The system includes: (I) a customized dual chamber/water jacketed unit that maintains a controlled environment for tissue culture experiments. (II) A digital heavy duty, high precision dual pump water temperature circulator system with water level sensor and temperature control (III) A cigarette smoking unit with puffing pump. (IV) A pump cycle sensor control rate cycler (IV) A Stainless steel high precision in-Line filter holder. (V) A Detachable lid mounted 11/2″ size axial uniformity cigarette smoke mixing fan. (VI) A medium size water bath with mounting bracket for the water circulator. (VII) A 1/2′ thick Plexiglas tray with brackets for the puff pump and holder for cigarette ash collector.

This machine as described can be substituted with similar commercially-available smoking machines such as the kind available from TSE systems (www.tse-systems.com).

Riferimenti

  1. You, Y., Richer, E. J., Huang, T., Brody, S. L. Growth and differentiation of mouse tracheal epithelial cells: selection of a proliferative population. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 283, L1315-L1320 (2002).
  2. Davidson, D. J. Murine epithelial cells: isolation and culture. J. Cyst. Fibros. 2, 59-62 (2004).
  3. Davidson, D. J., Kilanowski, F. M., Randell, S. H., Sheppard, D. N., Dorin, J. R. A primary culture model of differentiated murine tracheal epithelium. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 279, L766-L778 (2000).
  4. Rabe, K. F. et al.; Global Initiative for Chronic Obstructive Lung Disease. Global strategy for the diagnosis, management, and prevention of chronic obstructive pulmonary disease: GOLD executive summary. Am. J Respir. Crit. Care Med. 176, 532-555 (2007).
  5. Macnee, W. Pathogenesis of chronic obstructive pulmonary disease. Clin. Chest Med. 28, 479-513 (2007).
  6. Tuder, R. M., Yoshida, T., Arap, W., Pasqualini, R., Petrache, I. State of the art. Cellular and molecular mechanisms of alveolar destruction in emphysema: an evolutionary perspective. Proc. Am. Thorac. Soc. 3, 503-510 (2006).
  7. Yao, H., Rahman, I. Current concepts on the role of inflammation in COPD and lung cancer. Curr. Opin. Pharmacol. 9, 375-383 (2009).
  8. van der Toorn, M. Cigarette smoke irreversibly modifies glutathione in airway epithelial cells. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 293, L1156-L1162 (2007).
  9. Slebos, D. J. Mitochondrial localization and function of heme oxygenase-1 in cigarette smoke-induced cell death. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 36, 409-417 (2007).
  10. Kim, H. P. Autophagic proteins regulate cigarette smoke induced apoptosis: protective role of heme oxygenase-1. Autophagy. 4, 887-895 (2008).
  11. Chen, Z. H. Egr-1 regulates autophagy in cigarette smoke-induced chronic obstructive pulmonary disease. PLoS ONE. 3, e3316-e3316 (2008).
  12. Okuwa, K. In vitro micronucleus assay for cigarette smoke using a whole smoke exposure system: A comparison of smoking regimens. Exp Toxicol Pathol. , (2009).
  13. St-Laurent, J., Proulx, L. I., Boulet, L. P., Bissonnette, E. Comparison of two in vitro models of cigarette smoke exposure. Inhal. Toxicol. 21, 1148-1153 (2009).
  14. Watson, A. M., Benton, A. S., Rose, M. C., Freishtat, R. J. Cigarette smoke alters tissue inhibitor of metalloproteinase 1 and matrix metalloproteinase 9 levels in the basolateral secretions of human asthmatic bronchial epithelium in vitro. J Investig. Med. 58, 725-729 (2010).
  15. Rennard, S. I. Cigarette smoke in research. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 31, 479-480 (2004).
  16. Shapiro, S. D. Smoke gets in your cells. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 31, 481-482 (2004).
check_url/it/2513?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Lam, H. C., Choi, A. M., Ryter, S. W. Isolation of Mouse Respiratory Epithelial Cells and Exposure to Experimental Cigarette Smoke at Air Liquid Interface. J. Vis. Exp. (48), e2513, doi:10.3791/2513 (2011).

View Video