Un modello ortotopico di cancro alla vescica Murine
Summary
Tumori della vescica sono stabiliti in topi femmina in modo minimamente invasivo con il cateterismo, cauterizzazione locali, e l'adesione successiva delle cellule di carcinoma ai siti bruciare.
Abstract
In questa procedura semplice, tumori della vescica sono stabilite in topi femmina C57 attraverso l'utilizzo di cateterizzazione, cauterizzazione locali, e l'adesione cellulare successive. Dopo la loro vesciche sono transurethrally cateterizzati e scolati, gli animali sono ancora cateterizzati per consentire l'inserimento di un filo di platino in vesciche senza danneggiare l'uretra o la vescica. I cateteri sono realizzati in teflon per servire come isolante per il filo, che condurrà la corrente elettrica nella vescica per creare un ustioni. Un'unità elettrocauterizzazione vengono usati per fornire 2.5W alla fine esposta del filo, bruciando gli strati extracellulari e fornendo siti attacco per cellule di carcinoma che vengono consegnati in sospensione alla vescica attraverso un catetere successiva. Cellule rimangono nella vescica per 90 minuti, dopo di che i cateteri vengono rimossi e le vesciche permesso di drenaggio naturale. Lo sviluppo di tumore viene monitorato attraverso gli ultrasuoni. Particolare attenzione è rivolta alla tecnica di cateterizzazione nel video allegato.
Protocol
Discussion
Questo metodo minimamente invasivo per stabilire i tumori della vescica ortotopica nei topi femmina può essere applicato anche per altri tipi di cellule di MB49, anche se i risultati differenti è prevedibile. Quando meno aggressive le cellule tumorali vengono utilizzati, aumentando la potenza leggermente (con incrementi di 0,5 W per stabilire l'ottimale nuovo) produrrà una zona più suscettibili di attacco delle cellule tumorali, e tempi più lunghi di incubazione della vescica per le cellule instillato produrrà…
Divulgazioni
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Questo lavoro è stato finanziato dalla National Science CARRIERA premio Foundation (cbet-0846395) e il Dipartimento di Medicina comparativa, Tulane University.
Materials
| Material Name | Tipo | Company | Catalogue Number | Comment |
|---|---|---|---|---|
| C57Bl/6J mice | Jackson Laboratories | 000664 | 3-5-wk-old | |
| Polycarbonate cages and ventilated rack | Lab Products | Super Mouse 750 | 327mm x 190mm x 143mm |
|
| Hardwood Bedding | Harlan Teklad | Laboratory –grade SaniChips | ||
| Rodent diet | Harlan Teklad | Rodent Diet 2019 | ||
| IV Catheter | MWI | 009231 | 24 G x ¾ in. | |
| Electrocautery unit | Bovie Medical Corporation | Aaron 900 | ||
| Ultrasound unit | Sonosite | 180 Plus (Vet) | ||
| MB49 cell line | Anthony Atala, Wake Forest University Baptist Medical Center | N.A. | ||
| DMEM | Invitrogen | 21063-029 | ||
| Fetal Bovine Serum | Gemini Bio-Products | 100106 500A57B | ||
| Penicillin-Streptomycin | Invitrogen | 15140-163 |
Riferimenti
- Institute of Laboratory Animal Resources. . Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. , (1996).
- Gunther, J. H., Jurczok, A., Wulf, T., Brandau, S., Deinert, I., Jocham, D. Optimizing syngeneic orthotopic murine bladder cancer (MB49). Cancer Res. 59, 2834-2837 (1999).
- Zhang, X., Atala, A., Godbey, W. T. Expression-targeted gene therapy for the treatment of transitional cell carcinoma. Cancer Gene Ther. 15, 543-552 (2008).
