Summary

La disección y la tinción de Drosophila Larvas Ovarios

Published: May 13, 2011
doi:

Summary

¿Cómo los nichos y las células madre se forman durante el desarrollo es una cuestión importante con implicaciones prácticas. En el<em> Drosophila</emOvario>, el germen de las células madre de línea y sus nichos somáticos se forman durante el desarrollo larvario. Este video muestra la forma de analizar, las manchas y montaje de las gónadas femeninas a partir de finales del tercer estadio (LL3)<em> Drosophila</em> Larvas.

Abstract

Muchos órganos dependen de las células madre para su desarrollo durante la embriogénesis y para el mantenimiento o la reparación durante la vida adulta. La comprensión de cómo las células madre forman, y cómo interactúan con su medio ambiente es crucial para comprender el desarrollo, la homeostasis y las enfermedades. El ovario de la mosca de la fruta Drosophila melanogaster, ha servido como un influyente modelo para la interacción de las células germinales madre de línea (GSCS) con sus células de apoyo somáticas (nicho) 1, 2. La ubicación conocida del lugar y la GSCS, junto a la capacidad de manipularlos genéticamente, ha permitido a los investigadores para esclarecer una serie de interacciones entre las células madre y sus nichos 3-12.

A pesar de la gran cantidad de información sobre los mecanismos de control de mantenimiento de la SGC y la diferenciación, se sabe relativamente poco sobre cómo GSCS y sus nichos de forma somática durante el desarrollo. Alrededor de 18 nichos somáticas, cuyos componentes celulares son filamentos de terminales y las células de la tapa (Figura 1), se forman durante el tercer estadio larval 13-17. GSCS originan de las células germinales primordiales (PGC). PGCs proliferan en las primeras etapas larvales, pero tras la formación del nicho de un subgrupo de PGCs se GSCS 7, 16, 18, ​​19. En conjunto, las células somáticas de nicho y la GSCS hacer una unidad funcional que produce óvulos durante la vida del organismo.

Muchas preguntas sobre la formación de la unidad de GSC permanecen sin respuesta. Procesos tales como la coordinación entre las células precursoras de los nichos y los precursores de células madre, o la generación de la asimetría en PGCs a medida que se GSCS, mejor se pueden estudiar en la larva. Sin embargo, un estudio metódico de desarrollo del ovario larval es un reto físico. En primer lugar, los ovarios de las larvas son pequeñas. Incluso a finales de estadios larvarios son sólo 100μm de diámetro. Además, los ovarios son transparentes y están integrados en un cuerpo de grasa blanca. Aquí se describe un protocolo de paso a paso para el aislamiento de los ovarios de finales del tercer estadio (LL3) larvas de Drosophila, seguido de tinción con anticuerpos fluorescentes. Ofrecemos algunas soluciones técnicas a problemas como la localización de los ovarios, las manchas y el lavado de tejidos que no se hunden, y asegurarse de que los anticuerpos de penetrar en el tejido. Este protocolo se puede aplicar a las primeras etapas de larvas y larvas en los testículos también.

Protocol

1. La puesta de huevos Cinco días antes de la disección: permitir que las hembras apareadas para poner sus huevos durante 2-4 horas en los alimentos frescos complementado con la levadura. Para obtener larvas sincronizados y bien desarrollado, es importante no tener hacinamiento de cultivo (alrededor de 30 huevos / frasco de 25 mm). Por lo general, las mujeres se utilizan 7.16 por frasco, dependiendo de lo bien que estaba. 2. Selección de las larvas Prepare un p…

Discussion

Este vídeo demuestra un aislamiento y el protocolo de tinción de los ovarios a finales del tercer estadio larval. Para llevar a cabo este protocolo de forma rutinaria y segura, se debe prestar atención a los siguientes puntos:

  1. Para las larvas sincronizados y bien desarrollado, el hacinamiento se debe evitar.
  2. Para evitar la pérdida de los ovarios translúcidos pequeños, asegúrese de analizar la grasa en el cuerpo intacto. Esto también le ayudará en la localización de los ovarios en la etap…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

IM es compatible con el Marie Curie reintegración subvención. Este trabajo fue apoyado por el Fondo de Ciencias de Israel no Grant. 1146-1108, por el Helen y Martin Kimmel Instituto para la Investigación de Células Madre en el Instituto Weizmann de la Ciencia y la Fundación Caritativa Leir.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
NaCl   J.T.Baker    
Kcl   Merck    
CaCl2   Sigma-Aldrich    
MgCl2   Merck    
Sucrose   J.T.Baker    
Hepes   Sigma-Aldrich    
PBS   Sigma-Aldrich    
Triton X-100   Sigma-Aldrich    
Albumin Bovine Fraction V   MP Biomedicals 160069  
Dumont biology tweezers 5 dumstar polished   FST Fine Science Tools 11295-10  
Nickel plated pin holder   FST Fine Science Tools 26018-17  
s.s minutien pins 0.1mm diam, 10mm long   FST Fine Science Tools 26002-10  
9 well plates 85X100 mm, 22mm o.d.x7mm deep   CORNING 7220-85  
Stereo Microscope MZ 16.5 with a standard transmitted light base TL ST   Leica    
6 well plates   Costar 3516  
Slides   Menzel Glaser GmbH 798  
Cover slips   Corning 2940-223  
Mounting media   Vectashield H-1200  
Cell strainer   Falcon FAL352350  
1B1 antibody   Developmental Studies Hybridoma Bank    
Anti-Traffic Jam   Laboratory of Dr. Dorothea Godt    
Anti-Vasa   Laboratory of Dr. Ruth Lehmann    
Anti β-Galactosidase   Cappel    
Secondary Antibodies   Jackson ImmunoResearch    

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Maimon, I., Gilboa, L. Dissection and Staining of Drosophila Larval Ovaries. J. Vis. Exp. (51), e2537, doi:10.3791/2537 (2011).

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