開発ゼブラフィッシュの表皮から細胞の押出のライブイメージング
Summary
死細胞は、バリア機能を中断することなく、隣接する細胞の協調した収縮によって上皮組織から押し出される。ゼブラフィッシュの開発の光学的透明度は、上皮の生体内で押し出しを可視化するための優れたシステムを提供します。ここでは、携帯電話の解像度で幼生ゼブラフィッシュの表皮で押し出しを誘発し、イメージする方法を説明します。
Abstract
上皮組織の恒常性維持は、バリア機能を中断することなく、損傷した細胞の継続的な除去が必要です。我々の研究は、死細胞がその終了に起因している可能性のある隙間を閉じながら上皮シートからそれをイジェクトするアクチンとミオシンの環を形成し、収縮する彼らのライブの隣人にシグナルを送ることを発見した、プロセスは、細胞の押し出し1と呼ばれる。ゼブラフィッシュの開発の光学的透明度は、上皮の生体内で押し出しを可視化するための優れたシステムを提供します。ここでは、幼虫のゼブラフィッシュの表皮で押し出しを誘発し、イメージする方法を説明します。押し出しを可視化するために、我々は、表皮の緑色蛍光タンパク質を発現する1細胞期トランスジェニックゼブラフィッシュの胚に、F -アクチンのために赤色蛍光タンパク質標識プローブを注入し、幼虫にG418を添加することによってアポトーシスを誘導する。私たちは、その後アポトーシス細胞の押し出しの過程でアクチンのダイナミクスと上皮細胞の挙動を観察するために回転するディスク共焦点顕微鏡でタイムラプスイメージングを使用してください。このアプローチは、私たちは生きて上皮に押出プロセスを調査することができますし、アポトーシス細胞を除去するために障害に起因する疾患状態を研究する手段を提供します。
Protocol
Discussion
ここで説明するプロトコルは、ライブ上皮組織で押し出しのプロセスを可視化する単純で簡単な方法を示しています。このタイプの実験は、私たちは以前に固定された組織の分析に感謝しないアクチンダイナミクスの微妙な違いを調べることができる、そしてそれゆえ、一般的な免疫方法を補完する。として我々は、より我々は炎症反応や損傷した細胞の蓄積につながると期待されるアポト?…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
我々は科学的な議論、提案、およびコメントのローゼンブラットの研究室のメンバーに感謝。 GFPトランスジェニックゼブラフィッシュ：我々はまた、親切にCKを提供するをコードするプラスミドRFP – UtrCHとデビッドグルンワルドを提供メアリーハロランに感謝したいと思います。また、グレッチェン王とゼブラフィッシュの優れたメンテナンスとケアのためのユタ大学の集中化ゼブラフィッシュのリソースのスタッフのおかげ。この作品は、JRへOD002056 – 01 DP2 NIH – NIGMS NIHのディレクターの新イノベーター賞1でサポートされていました。 GTEは、NIH集学的がん研修プログラムグラント5T32 CA03247 – 8によってサポートされていました。
Materials
| Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
|---|---|---|---|---|
| RNeasy Mini Kit | Reagent | Qiagen | 74104 | |
| mMessage mMachine SP6 Kit | Reagent | Ambion | AM1340 | |
| Crossing Tanks | Tool | Thoren Aquatic Systems | ||
| The Pipet Pump | Tool | Bel Art Products | F3789 | |
| 5 ¾ Pasteur Pipet | Tool | VWR | 14672-608 | |
| Microinjection Mold | Tool | Adaptive Science Tools | I-34 | |
| 100x15mm Culture Plate | Tool | Fisher | 08-757-12 | |
| Flamming/Brown Micropipet Puller | Tool | Sutter Instrument Company | Model P97 | |
| Borosilicate Glass Capillaries with Filament | Tool | Sutter Instrument Company | B1400-78-10 | OD 1.0mm, ID 0.78mm, 10cm length |
| Electrode Storage Jar | Tool | World Precision Instruments | E210 | |
| Phenol Red | Reagent | Sigma | P0290 | 0.5% in DPBS |
| Pressure-Controlled Microinjector and Micromanipulator | Tool | Harvard Apparatus | PLI-100 | |
| 35x10mm Culture Dish | Tool | Cellstar | 627-160 | |
| G418 (Geneticin) | Reagent | GIBCO | 10131-035 | 50 mg/mL in dH20 |
| Dumont #5 Forceps | Tool | Fine Science Tools | 11253-20 | |
| 12cm Pin Holder | Tool | Fine Science Tools | 26016-12 | |
| Insert Pins | Tool | Fine Science Tools | 26007-02 and-03 | |
| Glass Bottom Culture Dish with 1.5 coverglass | Tool | MatTek | P35G-1.5-10-C | |
| Low Melt Agarose | Reagent | Fisher | BP1360-100 | |
| Tricaine | Reagent | Sigma | A-5040 | |
| Dissecting Microscope | Microscope | Leica | MZ6 | |
| Dissecting Microscope | Microscope | Nikon | SMZ645 | |
| Fluorescent Dissecting Microscope | Microscope | Olympus | S2X12 | |
| Spinning Disc Confocal Microscope | Microscope | Nikon | Eclipse Ti | Outfitted with a Yokagawa spinning disc head |
| CCD Camera | Camera | Andor | DV-885-VP | 1002x1004x8 micron square pixels |
References
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