Summary

Subkutan Muskarinik Antagonistleri Yönetim ve Farelerde levator Auris longus'un Triple-immün

Published: September 08, 2011
doi:

Summary

Levator auris longus (LAL) genç erişkin farelerin kas muskarinik sinyalizasyon inhibitörleri tekrarlanan yönetim ve wholemounts nöromüsküler kavşak sonraki immün (NMJs) için prosedürleri açıklar. LAL kas ifşa ettiği için benzersiz avantajları vardır.<em> In vivo</em> NMJs farmakolojik etkileri.

Abstract

Gastroknemius ve tibialis anterior gibi kemirgenler, Hind bacak kasları memeli NMJs oluşumu ve korunması için gerekli sinyalleri in vivo farmakolojik çalışmalarda sık sık kullanılır . Ancak, subkutan veya intramusküler uygulamadan sonra bu kasların içine ilaç penetrasyonu genellikle eksik ya da düzensiz ve birçok NMJs etkilenmez. Mini pompaları gibi cihazlar ile sistemik yönetim Spatiotemporal etkilerini artırabilir olsa da, bu yaklaşımın invaziv doğası karıştırıcı inflamatuvar yanıtları ve / veya doğrudan kas hasarına neden olabilir. Ayrıca, zaman alıcı bir seri kesit ve kapsamlı immün gerektirdiğinden bir arka bacak kas NMJs tam analizi zordur.

Fare LAL boyun dorsum yüzeysel olarak bulunan ince bir kas, düz levha. Bu, hızlı kasılan kas fonksiyonları kulak kepçesi taşımak için. Kafatası orta hat kaynaklanan ve her kepçesi kıkırdak kısmının yanal uzatmak rostral ve kaudal kısımları içerir. Kas çıkar Stylomastoid foramen olarak kaudal projeler yüz sinirinin bir şube tarafından verilir. Biz ve diğerleri, hem de kısa ve uzun vadeli NMJs ve kasları ilaçların in vivo etkilerinin araştırılması için avantaj sunan uygun bir hazırlık olması amacıyla LAL bulduk . İlk olarak, yüzeysel bir konumda, hafif anestezi altında ilaçlar birden fazla yerel uygulamaları kolaylaştırır. İkincisi, inceliği (2-3 kat kas liflerinin), kas içinde hemen hemen tüm NMJs görselleştirme ve analiz izin verir. Üçüncü olarak, onun innervasyon deseni ile birlikte sinir bozulmadan diseksiyon kolaylığı, ek elektrofizyolojik analizi, di vitro 9,5 izin verir. Belki de son ve en önemlisi, uygulanan küçük bir hacim (~ 50μl) kolayca tüm kas yüzeyi kapsayan tüm NMJs ilaç düzgün ve uzun süreli maruz kalma sağlar ve sistemik bir yaklaşım 1,8 ihtiyacını ortadan kaldırır .

Protocol

1. Muskarinik asetilkolin reseptör (mAChR) antagonistleri subkutan uygulanması 1.5mL reaksiyon tüp içinde steril serum fizyolojik uyuşturucu eriterek mAChR antagonisti aseptik koşullarda, uygun doz, (bkz. Tablo) altında hazırlayın. Aşağıdaki antagonistleri kullanıldı: atropin, Methoctramine, 4-DAMP AFDX-116, AFDX-384, MT 7. A1cc insülin enjektörü çözüm 50μl çizin ve her bir fare için ayrı bir şırınga kullanın. Ayrıca, sadece kontrol grubunda her fare için serum fizyoloj…

Discussion

Burada sunulan yöntem memeli NMJs istikrar ve bakım sinyalizasyon alt tipi özel mAChR önceden tanınmayan rolleri soruşturma izin verir. Bu yöntem ayrıca nörotrofik faktörler ve farmakolojik ajanların etkilerini test etmek için faydalı olacaktır. Örneğin, laboratuar Silier Nörotrofik Faktör (CNTF) yetişkin farelerde neredeyse tüm LAL sinir terminallerinden çimlenme yol açtığını 1 . Bu sonuç ca az çimlenme orta bildirdi CNTF ile tedavi edilen arka bacak kasları, önceki çalışmalarla …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma Müsküler Distrofi Derneği, NIH (NS062320) tarafından desteklenmiştir.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
ketamine Hospira NDC0409-2051-05 Dose: 120mg/kg
xylazine Lloyd Laboratories LA33806 Dose: 8mg/kg
atropine Sigma-Aldrich A0132 (>98% purity); Dose: 0.2mg/kg – 20mg/kg
atropine Voigt Global Distribution AT105 Pharmaceutical grade
Methoctramine Sigma-Aldrich M105 Dose: 100 – 400M
4-DAMP Sigma-Aldrich D142 Dose: 2.5mg/kg
AFDX-116 Tocris Bioscience 1105 250M
AFDX-384 Tocris Bioscience 1345 50M – 500M
MT 7 Peptides International PMT-4340-s 0.1M – 1M
1X Phosphate Buffered Saline, pH 7.4 Invitrogen 10010049  
Paraformaldehyde Fisher T353-500 Make 10% solution first by dissolving 10g/100mL de-ionized distilled water; make 4% with 1X PBS, adjust pH to 7.4
Sodium pentobarbitol Virbac Animal Health NDC-051311-050-01 Dose: 390mg/kg
Sylgard Dow Corning Part # 184 Follow instructions that come with kit, can use multiple sized culture dish (30mm, 60mm, 100mm) depending on needs
0.1M Glycine Sigma-Aldrich G-7126 Add 0.185g to 25mL of 2% BSA/PBS
2% Bovine serum albumin (2% BSA) Sigma-Aldrich A3059-100g Dissolve 2g BSA into 100mL of 1X PBS
0.2% Triton X100 in 2% BSA/PBS (Blocking Buffer) Sigma-Aldrich T9284-100mL Dissolve 0.2ml/100mL 2% BSA/PBS
α-bungarotoxin Invitrogen T1175 Use at concentration of 1:200
SMI-312 Sternberger Monoclonals SMI312 Use at concentration of 1:1000
SV2 Developmental Studies Hybridoma Bank SV2-Supernatant Use at concentration of 1:10
S100 Dako Z0311 Use at concentration of 1:400
FITC- goat anti-mouse IgG1 Roche 03117731001 Use at concentration of 1:200, but if background is high, try 1:400
Alexa-Fluor 647 conjugated goat anti-rabbit Invitrogen A21244 Use at concentration of 1:200
Vectashield fluorescent mounting media Vector laboratories H-1000 This is not a hard-set media, you will need to secure the cover slip with clear nail polish.
Small Spring Scissors Fine Science Tools 15002-08  
Dissection forceps Fine Science Tools 11295-51  

Riferimenti

  1. Wright, M. C., Son, Y. J. Ciliary neurotrophic factor is not required for terminal sprouting and compensatory reinnervation of neuromuscular synapses: re-evaluation of CNTF null mice. Exp Neurol. 205, 437-448 (2007).
  2. Gurney, M. E., Yamamoto, H., Kwon, Y. Induction of motor neuron sprouting in vivo by ciliary neurotrophic factor and basic fibroblast growth factor. J Neurosci. 12, 3241-3247 (1992).
  3. Caroni, P., Aigner, L., Schneider, C. Intrinsic neuronal determinants locally regulate extrasynaptic and synaptic growth at the adult neuromuscular junction. J Cell Biol. 136, 679-692 (1997).
  4. Witzemann, V., Brenner, H. R., Sakmann, B. Neural factors regulate AChR subunit mRNAs at rat neuromuscular synapses. J Cell Biol. 114, 125-141 (1991).
  5. Angaut-Petit, D., Molgo, J., Connold, A. L., Faille, L. The levator auris longus muscle of the mouse: a convenient preparation for studies of short- and long-term presynaptic effects of drugs or toxins. Neurosci Lett. 82, 83-88 (1987).
  6. Lanuza, M. A. Pre- and postsynaptic maturation of the neuromuscular junction during neonatal synapse elimination depends on protein kinase. C. J Neurosci Res. 67, 607-617 (2002).
  7. Garcia, N., Santafe, M. M., Tomas, M., Lanuza, M. A., Tomas, J. Short-term effects of beta-amyloid25-35 peptide aggregates on transmitter release in neuromuscular synapses. J Neuropathol Exp Neurol. 67, 250-259 (2008).
  8. Wright, M. C., Cho, W. J., Son, Y. J. Distinct patterns of motor nerve terminal sprouting induced by ciliary neurotrophic factor vs. botulinum toxin. J Comp Neurol. 504, 1-16 (2007).
  9. Wright, M. C. Distinct muscarinic acetylcholine receptor subtypes contribute to stability and growth, but not compensatory plasticity, of neuromuscular synapses. J Neurosci. 29, 14942-14955 (2009).
  10. Voss, A. A. Extracellular ATP inhibits chloride channels in mature mammalian skeletal muscle by activating P2Y1 receptors. J Physiol. 587, 5739-5752 (2009).
  11. Murray, L. M., Gillingwater, T. H., Parson, S. H. Using mouse cranial muscles to investigate neuromuscular pathology in vivo. Neuromuscul Disord. 20, 740-743 (2009).
  12. Dorje, F. Antagonist binding profiles of five cloned human muscarinic receptor subtypes. J Pharmacol Exp Ther. 256, 727-733 (1991).
  13. Caulfield, M. P., Birdsall, N. J. International Union of Pharmacology. XVII. Classification of muscarinic acetylcholine receptors. Pharmacol Rev. 50, 279-290 (1998).
check_url/it/3124?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Wright, M., Kim, A., Son, Y. Subcutaneous Administration of Muscarinic Antagonists and Triple-Immunostaining of the Levator Auris Longus Muscle in Mice. J. Vis. Exp. (55), e3124, doi:10.3791/3124 (2011).

View Video