Summary

Bilaminar co-coltura di neuroni corticali primari di ratto e Glia

Published: November 12, 2011
doi:

Summary

Qui forniamo un protocollo per la coltura di neuroni corticali di ratto in presenza di uno strato alimentatore gliali. I neuroni coltivati ​​stabilire la polarità e di creare le sinapsi, e può essere separato dalla glia per l'utilizzo in diverse applicazioni, quali elettrofisiologia, imaging del calcio, saggi di sopravvivenza cellulare, immunocitochimica, e RNA / DNA / isolamento delle proteine.

Abstract

Questo video vi guiderà attraverso il processo di neuroni corticali di ratto coltura in presenza di uno strato alimentatore gliali, un sistema noto come bilaminar o co-coltura modello. Questo sistema è adatto per una varietà di esigenze sperimentali che richiedono sia un substrato di vetro o di plastica e la crescita può essere utilizzato anche per la cultura di altri tipi di neuroni.

Neuroni corticali di ratto ottenuto dalla fase tardo embrionale (E17) sono placcati in coprioggetto di vetro o piatti coltura di tessuti di fronte a un alimentatore strato di cellule gliali cresciuti su piatti o lamelle di plastica (noto come Thermanox), rispettivamente. La scelta tra le due configurazioni dipende dalla specifica tecnica sperimentale utilizzata, che può richiedere, o meno, che i neuroni sono cresciuti su vetro (es. calcio di imaging contro Western Blot). Lo strato alimentatore gliali, un astroglia arricchito la cultura secondaria di cellule gliali misti, è separata preparata dalla corteccia di cuccioli di ratto appena nati (P2-4) prima della neuronaledissezione.

Uno dei principali vantaggi di questo sistema di coltura rispetto ad una cultura di neuroni è solo il sostegno della crescita neuronale, la sopravvivenza e la differenziazione forniti da fattori trofici secreto dallo strato alimentatore gliali, che assomiglia più accuratamente l'ambiente cervello in vivo. Inoltre, il co-cultura può essere utilizzato per studiare le interazioni neuroni-glia 1.

Allo stesso tempo, la contaminazione glia nello strato neuronale è impedita da diversi mezzi (cultura bassa densità, l'aggiunta di inibitori della mitosi, la mancanza di siero e di uso di mezzo di coltura ottimizzato) che porta a un livello praticamente puro neuronale, paragonabile ad altre modalità stabilite 1 -3. I neuroni possono essere facilmente separato dallo strato gliale in qualsiasi momento durante cultura e utilizzati per diverse applicazioni sperimentali che vanno dal 4 elettrofisiologia, biologia cellulare e molecolare 5-8, biochimica 5, imaging e microfonoroscopy 4,6,7,9,10. I neuroni primari estendere assoni e dendriti di formare sinapsi funzionali 11, un processo che non si osserva in linee cellulari neuronali, anche se alcune linee cellulari si estendono i processi.

Un protocollo dettagliato dei neuroni dell'ippocampo di ratto coltura utilizzando questo sistema di co-coltura è stato descritto in precedenza 4,12,13. Qui dettaglio un protocollo modificato adatto per i neuroni corticali. Come circa 20×10 6 celle vengono recuperati da ogni embrione di ratto, questo metodo è particolarmente utile per gli esperimenti che richiedono un gran numero di neuroni (ma non preoccupati per una popolazione altamente omogenea neuronale). La preparazione dei neuroni e glia deve essere pianificato in un tempo specifico modo. Vi forniremo il passo-passo protocollo per la coltura di neuroni corticali di ratto e coltura delle cellule gliali di supporto ai neuroni.

Protocol

1. Glia Dissection (~ 2 settimane prima neuroni placcatura) Per preparare gli strumenti per collocare la dissezione sterile in etanolo al 70%, aggiungere 4 ml di media dissezione a freddo a 60 piatti mm (un piatto per ogni cervello), e il luogo del 2,5% tripsina e DNasi sul ghiaccio per scongelare (vedi i dettagli sugli strumenti chirurgici nella tabella VI ). Usare le forbici grandi di decapitare 2-4 cuccioli giorno di vita e le teste posto in un piatto da 100 millimetri sterile. Usare le…

Discussion

Questo protocollo fornisce un metodo per la coltura topo neuroni corticali primarie in presenza di cellule gliali, mentre i neuroni permettendo di essere facilmente isolate per l'analisi sperimentale. Lo sviluppo di supporto gliali di un fenotipo sano neuronale, mentre le risposte neuronali modulando anche a trattamenti sperimentali in un modo fisiologicamente rilevanti. Inoltre, per passaging la glia primaria prima coltura con neuroni questa popolazione cellulare diventa selettivo arricchito in astrociti, impedendo…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gli autori ringraziano i membri di laboratorio precedenti che hanno contribuito al perfezionamento di questo protocollo e l'NIH per il supporto nel corso degli anni (DA19808 e DA15014 a OM). Anna Abt 1 è un collega della "formazione mediante la ricerca interdisciplinare e traslazionale in neuroAIDS" (T32-MH078795): così, questo lavoro è stato sostenuto in parte dal National Institutes of Health Research sotto Ruth L. Kirschstein Premio Nazionale Servizio 5T32MH079785.

Materials

Reagent Concentration
Glucose 16 mM
Sucrose 22 mM
NaCl 135 mM
KCl 5 mM
Na2HPO4 1 mM
KH2PO4 0.22 mM
HEPES 10 mM
pH 7.4
Osmolarity 310±10 mOsm

Table 1. Dissection Medium.

Reagent Concentration
DMEM 90%
FBS 10%
Gentamicin 50 μg/mL

Tabe 2. Glia Plating Medium.

Reagent Concentration
DMEM 90%
Horse Serum 10%

Table 3. Neuron Plating Medium.

Reagent Concentration
DMEM 98%
N2 Supplement 1%
1M HEPES 1%
Ovalbumin 50 mg/100mL

Table 4. N2 Medium.

Reagent Concentration
Boric Acid 50 mM
Sodium Borate 12.5 mM

Table 5. Borate Buffer (for poly-lysine).

Reagent Company Catalogue number
High glucose Dulbecco’s Modified Eagle
Medium (DMEM)
Invitrogen 11995-073
Fetal Bovine Serum (FBS), Heat-inactivated Hyclone 26400-044
Horse Serum, Heat-inactivated Hyclone H1138
Gentamicin (50mg/mL) Invitrogen 15750-060
N2 Supplement (100x) Invitrogen 17502-048
HEPES buffer solution Invitrogen 15630-080
Albumin from chicken egg white, Grade VI
(Ovalbumin)
Sigma-Aldrich A2512
2.5% Trypsin Invitrogen 15090-046
0.5% Trypsin-EDTA (10X) Invitrogen 15400-054
Deoxyribonuclease I from bovine pancreas
(DNase)
Sigma-Aldrich D-5025
Paraplast Fisher 12-646-106
Poly-L-lysine Sigma-Aldrich P1274
Cytosine-β-D-arabinofuranoside hydrochloride Sigma-Aldrich C6645
Stereomicroscope Leica Leica ZOOM 2000
Cover glasses, Circles, 15 mm, Thickness
0.13-0.17 mm
Carolina 633031
Thermanox sheets Grace BioLabs HS4550
Large forceps Biomedical
Ricerca
Instruments
70-4000
Fine-tipped No.5 forceps Fine Science
Tools
91150-20
Pattern No.1 forceps Biomedical
Ricerca
10-1400
  Instruments  
Scissors, straight, sharp-blunt Biomedical
Ricerca
Instruments
28-1435
Micro Dissecting scissors Biomedical
Ricerca
Instruments
11-2070
Micro Dissecting Curved scissors Biomedical
Ricerca
Instruments
11-1395

Riferimenti

  1. Cook, A. Interactions between chemokines: regulation of fractalkine/CX3CL1 homeostasis by SDF/CXCL12 in cortical neurons. J. Biol. Chem. 285, 10563-10563 (2010).
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check_url/it/3257?article_type=t

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Citazione di questo articolo
Shimizu, S., Abt, A., Meucci, O. Bilaminar Co-culture of Primary Rat Cortical Neurons and Glia. J. Vis. Exp. (57), e3257, doi:10.3791/3257 (2011).

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