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Articolo metodologico

Monitoraggio del sistema ubiquitina-proteasoma attività nelle cellule viventi Utilizzando una degron (dgn)-destabilizzato proteina verde fluorescente (GFP) a base di proteine ​​Reporter

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DOI:

10.3791/3327

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10 novembre 2012

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In questo articolo

Sommario

Un metodo per monitorare l'attività ubiquitina-proteasoma in cellule viventi è descritto. Un degron-destabilizzato GFP-(GFP-dgn) e di una stalla GFP-dgnFS proteina di fusione vengono generati e trasdotto nella cella utilizzando un vettore lentivirale espressione. Questa tecnica permette di generare una linea cellulare stabile GFP-dgn/GFP-dgnFS esprimendo in cui ubiquitina-proteasoma attività può essere facilmente valutata usando epifluorescenza o citometria a flusso.

Abstract

Proteasoma è l'organello intracellulare principale coinvolto nella degradazione proteolitica della anormali, proteine ​​misfolded, danneggiati o ossidati 1, 2. Manutenzione delle attività del proteasoma è stato coinvolto in molti processi cellulari chiave, come risposta allo stress cellulare 3, regolazione del ciclo cellulare e la differenziazione cellulare 4 o nella risposta del sistema immunitario 5. La disfunzione del sistema ubiquitina-proteasoma è stata correlata allo sviluppo di tumori e malattie neurodegenerative 4, 6. Inoltre, una diminuzione dell'attività del proteasoma trovato è una caratteristica della senescenza cellulare e organismal invecchiamento 7, 8, 9, 10. Qui, vi presentiamo un metodo per misurare ubiquitina-proteasoma attività in cellule viventi usando un GFP-DGN proteina di fusione. Per poter controllare ubiquitina-proteasoma attività nelle cellule viventi primarie, DNA complementare costruisce codificante per una proteina fluorescente verde (GFP)-DGN proteina di fusione (GFP-DGN, instabile) e una variante portando una mutazione frameshift (GFP-dgnFS, stabile 11) sono inseriti in vettori di espressione lentivirali. Preferiamo questa tecnica rispetto alle tecniche tradizionali di transfezione in quanto garantisce una elevata efficienza di trasfezione molto indipendente dal tipo di cellula o l'età del donatore. La differenza tra fluorescenza visualizzata dal GFP-dgnFS (stabile) proteine ​​e la proteina destabilizzato (GFP-dgn) in assenza o presenza di inibitori del proteasoma può essere usato per stimare ubiquitina-proteasoma attività in ciascun ceppo cella particolare. Queste differenze possono essere monitorati mediante microscopia in epifluorescenza o può essere misurata mediante citometria a flusso.

Protocollo

1. Costruzione plasmide

  1. Ordine personalizzato oligo-nucleotidi codifica per DGN (ACKNWFSSLSHFVIHL 11) e per dgnFS (HARTGSLACPTSSSICE) e legare esso nel pEGFP-C1 vettore per ottenere la fusione della GFP con DGN / dgnFS (Figura 1).
  2. Amplifica la sequenza codificante per GFP-DGN e GFP-dgnFS mediante PCR secondo il protocollo della clonazione pENTR direzionale Kit TOPO e continuare con il pLenti6/V5 direzionale TOPO Cloning Kit (Figura 6).

2. Virus di produzione

  1. Il giorno prima della transfezione (giorno 1) sementi su cellule HEK 293FT in fiasche T75 un modo ch....

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Discussione

La prima pubblicazione con la proteina fluorescente verde (GFP) come substrato reporter per ubiquitina-proteasoma attività è stata pubblicata nel 2000 12. Da allora, la GFP è diventata uno strumento comune per visualizzare le attività cellulari, in particolare il sistema ubiquitina-proteasoma processo. Per monitorare ubiquitina-proteasoma attività in vivo un modello di topo transgenico con GFP-reporter è stato introdotto 13. Ulteriori ricerca in vivo stabilito un altro modello di .......

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Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Ringraziamenti

Questo studio è stato finanziato da: National Research Network on Aging (NFN S93) dalla Science Foundation austriaco (FWF), Commissione europea integrata Progetti MIMAGE e PROTEOMAGE, Netherlands Genomics Initiative / Organizzazione olandese per la ricerca scientifica (NGI / NWO, 05040202 e 050 - 060-810 LPN), finanziato dall'UE, Rete di eccellenza Durata (6 ° PQ 036894), e il Programma Innovation Research Oriented sulla genomica (SenterNovem, IGE01014 e IGE5007).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Nome del reagente Azienda Numero di catalogo
pEGFP-C1 Vector BD Bioscience Clontech 6084-1
pENTR direzionale TOPO Cloning Kit Invitrogen K2400-20
pLenti6/V5 direzionale TOPO Cloning Kit Invitrogen V496-10
Lipofectamine 2000 Reagente Invitrogen 11668019
DMEM Sigma D5546
PVDF filtro (Rotilabo-Spritzenfilter) Roth P667.1
Polietilene glicole Sigma P2139
NaCl Merck 1.06404.1000
Fosfato Dulbecco Buffered Saline 1x (PBS) Invitrogen 14190
hexadimethrine bromuro Sigma 10,768-9
Blasticidina Invitrogen R21001
Cristallo viola Sigma C3886
FACS tubi BD Biosciences
Penicillina Streptomicina (Pen-Strep) Invitrogen 15140130
L-glutammina 200 mM Invitrogen 25030024
Siero bovino fetale (FBS) Biochrom AG S0115
MEM Aminoacidi non essenziali (NEAA) 100x Invitrogen 11140035
MEM Piruvato di sodio 100 mM Invitrogen 11360039
D-(+)-glucosio (45%) Sigma G8769
Geneticin Invitrogen 11811023
CaCl2 Merck C5080
Hepes Sigma H3375
Tripsina-EDTA (0,05%) Invitrogen 25300054

Riferimenti

  1. Coux, O., Tanaka, K., Goldberg, A. L. Structure and functions of the 20S and 26S proteasomes. Annu. Rev. Biochem. 65, 801-847 (1996).
  2. Davies, K. J. Degradation of oxidized proteins by the 20S proteasome. Biochimi. 83, 301-310 (2001).
  3. Stangl, K., Stangl, V.

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Ristampe e permessi

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