Summary

Sabit Kuvvet Eksenel Optik cımbız ile DNA Kısa Diziler Stretching

Published: October 13, 2011
doi:

Summary

Daha kısa DNA moleküllerinin mekanik özelliklerini incelemek için sabit bir kuvvet eksensel optik cımbız kullanımını göstermektedir. Eksenel DNA germe, biz bize ~ 100 nm gibi kısa DNA molekülleri çalışmaya izin sterik engel ve konvansiyonel yanal manipülasyon doğan eserler minimize.

Abstract

Az kilobaz daha kontur uzunluklarda DNA germe için Tek molekül tekniklerin deneysel güçlüklerle doludur. Bununla birlikte, bu gibi histon ve DNA bağlayıcı protein, 1,2-aracılı döngü olarak çok ilginç biyolojik etkinlikleri, bu uzunluk ölçek üzerinde meydana gelir. Son yıllarda, DNA mekanik özelliklerini kompakt nükleozom ve kromatin ipliklerinin 3,4 içine DNA paketleme gibi temel hücresel süreçler önemli bir rol oynadığı gösterilmiştir. Açıkçası, DNA'nın kısa menziller mekanik özelliklerini anlamak için o önemlidir. Bu yazıda, biz birkaç yüz basepairs gibi kısa kontur uzunluktaki DNA'nın mekanik davranışlarını incelemek için geliştirmiş olduğumuz tek-molekül optik tweezing tekniği için pratik bir kılavuz sağlamak.

DNA'nın kısa segmentlerinde gerilmelerde büyük engel, geleneksel optik cımbız genellikle directio kuvvet uygulamak için tasarlanmış olann, aşama 5,6 yanal, (bakınız Şek. 1). Bu geometri olarak, boncuk ve lamel arasındaki açı olan DNA gergin olduğu, mikron uzunlukta DNA için çok dik hale gelir. Eksenel pozisyonunu artık uzatma yakın lamel mikroküre sürükler yana, sterik etkiler geliştirilmiştir, bir meydan okuma olabilir, sorumluydu, ve olmalıdır. Buna ek olarak, mikro asimetri bir sonucu olarak, yan uzantılar oluşturur uzantı boyunca reaktif güç yönü değişirse beri optik tuzak içinde nedeniyle mikrosfer dönme momenti, değişen.

Germe Mikronaltı DNA için alternatif yöntemlerin kendilerine özgü engellerin karşı çalıştırın. Örneğin, bir çift-kiriş optik tuzak hangi iki tuzak arasında ve mikroküreler arasında ışık saçılması ikinci nokta parazit etkileri önemli bir sorun teşkil başlar, bir dalga boyu yaklaşık DNA germe ile sınırlıdır. Tuzakları biri DeğiştirilmesiBir mikropipet ile büyük olasılıkla benzer sorunlar muzdarip olacaktır. Biri doğrudan DNA germek için eksenel potansiyel kullanabilirsiniz iken, aktif bir geribildirim düzeni sabit bir kuvvet ve bu bant genişliği özellikle düşük güçlerine, oldukça sınırlı olacaktır uygulamak için gerekli olacaktır.

Biz doğrudan sabit bir kuvvet eksenel optik cımbız 7,8 kullanarak lamel uzak DNA çekerek bu temel sorunları aşmak. Bu, optik gücü sabit güç olan lazer gücü ayarlamak suretiyle ayarlanabilir olan optik potansiyel bir doğrusal bölgesinde, boncuk yakalama ile elde edilir. Doğrusal bölgede bindirme ayrıca eksenel yönde yaklaşık 350 nm boyunca uzanan DNA üzerinde bir bütün optik güç kelepçe olarak hizmet vermektedir. Lamel yapışmış bir referans mikroküre, aynı konumda ve odak kalır, böylece Biz aynı anda ince sahne konumunu ayarlayarak termal ve mekanik sürüklenme telafi birneredeyse sınırsız gözlem dönemi için llowing.

Protocol

1. Cımbızlar Kurulumu Bir 1064 nm lazer ışını iki ortogonal polarize ışınları ayrılmıştır. Bir başka (bakınız Şek. 2) kalibrasyon amacıyla kullanılan en biyomolekül işlemek için kullanılır. Her bir kiriş pozisyon ve odak bağımsız olarak, sırasıyla, ışın yönlendirme aynası ve optik teleskoplar ile kontrol edilir manipülasyon ışın yoğunluğu, bir akusto-optik deflektör (ATH) tarafından kontrol edilir. Kirişler sonra başka bir polarize ışın ayı…

Discussion

Konvansiyonel optik cımbız bir refraktil nesne üzerinde sabit bir kuvvet uygulamak için analog ya da bilgisayar kontrollü geribildirim güvenmek. Bu aktif geri besleme sistemleri, bir protein bağlama gelen DNA ya da bir filaman boyunca bir moleküler motorun hızlı bir atlama için, örneğin, zorluk numune bir uzantısı olarak ani değişiklikler meydana koşullar altında icra var. Sabit kuvvetlerinin uygulanması için çeşitli pasif yöntemler son zamanlarda geliştirilmiştir. Basepair çözünürlükte RN…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Biz eksenel optik cımbız ile yardım ve bu el yazması onun uzanan bazı verilerin katkıda Dr Yih-Fan Chen ederim. Bu çalışma NSF hibe FİZ-0957293 ve ODAK hibe FİZ-0114336 sponsor oldu.

Materials

Reagent/Equipment Company Catalog number Comments
Nd:YVO4 laser Spectra Physics T40-Z-106C  
Acousto-optic
deflector
IntraAction DTD-274HA6  
Microscope Objective Olympus PlanApo 60X, NA 1.4
Piezo stage Mad City Labs Nano-LP100 XYZ stage
CCD camera PixeLink PL-A741  
Photodetector Electro-Optics
Tech
ET-3020  
Polystyrene Beads Spherotech SVP-08-10 800nm, streptavidin
coated
Anti-digoxigenin Roche 11333089001 From sheep
Primers MWG operon Custom oligos One primer: biotin
Other : digoxigenin
PCR reagents New England
Biolabs
TAQ polymerase,
dNTPs
 
Coverglass Fisher Scientific    
Other chemicals for
buffer
Fisher Scientific    

Supplementary Materials

A. Hydrodynamic Friction Coefficient

For determining the hydrodynamic friction coefficient of the microsphere near a surface one can use the following expansion5,10:
Equation 1

where the following shorthand has been introduced:
Equation 2

The friction coefficient is defined in terms of the fluid viscosity η and the radius of the microsphere, with the microsphere’s center located a distance η above the surface. The summation converges reasonably well when expanded to about ten terms.

B. Influence of Axial Position on Stiffness Calibration

The calibration of the trap stiffness involves a tradeoff between the accuracy of the calibration, which increases with increasing distance from the surface, and the actual axial position where the trap is used experimentally. In general, the trap is calibrated at around 800-1000 nm from the surface, which is higher than the actual experimental condition.

C. Modified Worm-Like Chain (WLC) Model

The force extension curves can be fit to a modified WLC model that accounts for volume exclusion effects at zero optical force as follows:
Equation 3

where Fopt is the optical force, xo is a fit parameter for the zero force extension,xopt is the extension under force, l is the contour length of the DNA, and l*p is a second fit parameter for an “effective” persistence length. Fwlc is given by the usual WLC model11
Equation 4
where ε is the relative DNA extension.

Riferimenti

  1. Halford, S. E., Welsh, A. J., Szczelkun, M. D. Enzyme-mediated DNA looping. Annu. Rev. Biophys. Biomol. Struct. 33, 1-24 (2004).
  2. Allemand, J. F., Cocco, S., Douarche, N., Lia, G. Loops in DNA: an overview of experimental and theoretical approaches. Eur. Phys. J. E. Soft. Matter. 19, 293-302 (2006).
  3. Kaplan, N. The DNA-encoded nucleosome organization of a eukaryotic genome. Nature. 458, 362-366 (2009).
  4. Garcia, H. G. Biological Consequences of Tightly Bent DNA: The Other Life of a Macromolecular Celebrity. Biopolymers. 85, 115-130 (2006).
  5. Neuman, K. C., Block, S. M. Optical trapping. Rev. Sci. Instrum. 75, 2787-2809 (2004).
  6. Moffitt, J. R., Chemla, Y. R., Smith, S. B., Bustamante, C. Recent advances in optical tweezers. Annu. Rev. Biochem. 77, 205-228 (2008).
  7. Chen, Y. F., Blab, G. A., Meiners, J. C. Stretching submicron biomolecules with constant-force axial optical tweezers. Biophys. J. 96, 4701-4708 (2009).
  8. Chen, Y. F., Wilson, D. P., Raghunathan, K., Meiners, J. C. Entropic boundary effects on the elasticity of short DNA molecules. Phys. Rev. E. 80, 020903-020903 (2009).
  9. Chen, Y. F., Chu, M. Tethered Particle Microscopy (TPM) Protocol. Meiners Lab. , (2011).
  10. Brenner, H. The slow motion of a sphere through a viscous fluid towards a plane surface. Chem. Eng. Sci. 16, 242-251 (1961).
  11. Marko, J. F., Siggia, E. D. Stretching DNA. Macromolecules. 28, 8759-8770 (1995).
  12. Greenleaf, W. J., Block, S. M. Single-molecule, motion-based DNA sequencing using RNA polymerase. Science. 313, 801-801 (2006).
  13. Chen, Y. F., Milstein, J. N., Meiners, J. C. Protein-mediated DNA loop formation and breakdown in a fluctuating environment. Phys. Rev. Lett. 104, 258103-258103 (2010).
  14. Chen, Y. F., Milstein, J. N., Meiners, J. C. Femtonewton entropic forces can control the formation of protein-mediated DNA loops. Phys. Rev. Lett. 104, 048301-048301 (2010).
  15. Raghunathan, K., Milstein, J. N., Juliar, B., Blaty, J., Meiners, J. C. Sequence Dependent Effects on the Elasticity of Short DNA Molecules. , (2011).
check_url/it/3405?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Raghunathan, K., Milstein, J. N., Meiners, J. -. Stretching Short Sequences of DNA with Constant Force Axial Optical Tweezers. J. Vis. Exp. (56), e3405, doi:10.3791/3405 (2011).

View Video