Summary

Farelerde γHV68 Enfeksiyon ölçümü

Published: November 22, 2011
doi:

Summary

γ-herpesvirüslerinin (γ-HVS) ev sahibi ömür boyu kalıcılığı kurmak. Enfeksiyon γ-HV68 ile farelerin genetik çözülebilir sağlar<em> In vivo</em> ΓHVs ömrü / patogenezinde karakterizasyonu modeli. Bu protokol, plak oluşturan, bulaşıcı merkezi, ve qPCR deneyleri enfeksiyonu takip eden akut ve latent aşamasında γHV68 enfeksiyon tespit ve kantitatif açıklamaktadır.

Abstract

γ-herpesvirüslerinin (γ-HVS) lenfoid hücrelerde 1 latent enfeksiyonlar kurmak için yeteneklerini dikkat çekicidir. EBV ve KSHV insan olarak γ-HVS, dar ana aralığı ciddi detaylı patojenik çalışmaları engellemiştir. Murin γ-herpesvirus 68 (γHV68) hisse senetleri γ-HVS insan ve yaygın genetik ve biyolojik benzerlik murid kemirgenler 2 doğal bir patojen . Viral enfeksiyon farklı aşamalarında fareler kendilenmiş suşları γHV68 enfeksiyon gibi, değerlendirme sırasında viral yaşam döngüsü ve γ-HVS enfeksiyon patogenezinde anlamak için önemli bir model sağlar.

Intranazal aşılama üzerine, daha sonra dalak ve diğer hücrelere, ev sahibi 3,4 ömrü boyunca yeniden olabilir gizli bir enfeksiyon, akut akciğer viremi γHV68 enfeksiyonu sonuçları çözümlenir bu. Bu protokol, biz eşek plak testinin nasıl kullanılacağını anlatacağızpost-intranazal enfeksiyonu (dpi) – akciğer bulaşıcı bir virüs titresi erken evre (7 gün 5) Vero hücre mono tabakaları homojenatlarında. Akut enfeksiyon, büyük ölçüde 2 temizlenir, 3 hafta postinfection γHV68 bir latent enfeksiyon 14 dpi etrafında kurulan ve daha sonra farelerin dalak tutulur. Gizli virüs enfeksiyonu genellikle uykuda kalır ve onun gen ekspresyonu çoğu kapanır sayede enfekte dokular, hücrelerin çok küçük bir nüfus etkiler. Latent enfekte splenositlerin kendiliğinden virüs, viral gizli yükü belirlemek için bulaşıcı bir merkezi (IC) yöntemi ile değinmeyecek olabilir doku kültürü içine explanting sonra yeniden etkinleştirin. Akut ve / veya latent enfekte dokular, kantitatif real-time PCR viral genomun kopya miktarını hesaplamak için (qPCR), maksimum hassasiyet ve doğruluk için kullanılır. QPCR ve plak tahlil ve / veya IC tahlil sonuçlarının kombine analizler, viral Spatiotemporal profillerini ortaya koyacaktırin vivo çoğaltma ve enfektivite.

Protocol

Aşağıdaki protokol teorik γHV68, benzer yaşam tarzı paylaşan diğer virüsler tarafından enfeksiyona değerlendirmek için kullanılabilir farelerde γHV68 litik ve latent enfeksiyon döngüsü, virüs titreleri ve viral genomun yükler çalışma anlatacağız. 1. ΓHV68, amplifikasyon 37 ° C su banyosunda γHV68 donmuş bir flakon çözülme. 37 NIH3T12 veya 3T3 hücre kültürü (~% 50 confluency) 10 cm yemekleri ve kültürü enfekte olmuş hücrelerde virü…

Discussion

γHV68 yaygın insan γ-HVS 2,4,5 patogenezinde anlamak için bir model olarak kullanılmıştır. Bu protokol, farelerde intranazal aşılama sonrası γHV68 akut ve latent enfeksiyon değerlendirmek, plak için bulaşıcı bir virüs titresi tahlil, viral gizli yük için IC tahlil ve viral genomun yük için qPCR olmak üzere üç rutin olarak kullanılan yöntem tanımlanmıştır.

Plak testi, enfekte olmuş hücrelerde ya da dokularda virüs titresi belirlemek için yaygın o…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Yazarlar, teknik danışmanlık ve destek Ren Sun (University of California, Los Angeles) ve Seungmin Hwang (Washington Üniversitesi) kabul etmek istiyorum. Bu çalışma, Baxter Vakfı, Ulusal Sağlık hibe Enstitüleri (C. Liang R01 CA140964 ve R21 AI083841) tarafından finanse edildi.

Materials

Material Name Preparation Procedure
Methylcellulose (MC) overlay medium for viral plaque assay
  1. Heat ~ 250 ml of distilled water in TC bottle to > 80°C (boiling for 3 min in microwave)
  2. Add gradually 2.5 g MC powder into heated water, stirring over low heat until dissolved.
  3. Autoclave immediately for 15 min at liquid cycle.
  4. Stirring the autoclaved MC media at 4°C overnight.
  5. Combine 250 ml MC media with 200ml 2 x MEM (Gibco-BRL) + 50 ml FBS to give 500 ml overlay media.
Fix/stain medium for plaque assay 0.2% (w/v) crystal violet in 20% ethanol.
ACK Lysis Buffer NH4Cl 0.15M, KHCO3 10mM, EDTA 0.1mM
Complete DMEM Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM) supplemented with 10% fetal bovine serum (FBS; Invitrogen), 2 mM L-glutamine, and 1% penicillin-streptomycin (Gibco-BRL).

Table 1. Specific media used in this protocol

Name of the reagent Company Catalogue number
Ketamine Sigma-Aldrich K2753
Xylazine Sigma-Aldrich X1251
Methylcellulose Sigma-Aldrich M0512-250g
2 x MEM Life Technologies 11935
Cell strainer BD Faclon 352340
Omni tissue homogenizer OMNI International TH115
DNeasy Blood & Tissue Kit Qiagen 69504
iQTM SYBRH Green Supermix BioRad 170-8882
CFX96 real-time PCR system Bio-Rad 184-5072
Cell counter Bio-Rad 145-0001
Sorvall SA-600 Thermo Scientific 096-124022

Table 2. Specific reagents and equipment

Riferimenti

  1. Damania, B., Choi, J. K., Jung, J. U. Signaling activities of gammaherpesvirus membrane proteins. J. Virol. 74, 1593-1601 (2000).
  2. Stevenson, P. G., Efstathiou, S. Immune mechanisms in murine gammaherpesvirus-68 infection. Viral. Immunol. 18, 445-456 (2005).
  3. Flano, E., Husain, S. M., Sample, J. T., Woodland, D. L., Blackman, M. A. Latent murine gamma-herpesvirus infection is established in activated B cells, dendritic cells, and macrophages. J. Immunol. 165, 1074-1081 (2000).
  4. Sunil-Chandra, N. P., Efstathiou, S., Nash, A. A. Murine gammaherpesvirus 68 establishes a latent infection in mouse B lymphocytes in vivo. J. Gen. Virol. 73, 3275-3279 (1992).
  5. Simas, J. P., Swann, D., Bowden, R., Efstathiou, S. Analysis of murine gammaherpesvirus-68 transcription during lytic and latent infection. J. Gen. Virol. 80, 75-82 (1999).
  6. Ganem, D. KSHV and the pathogenesis of Kaposi sarcoma: listening to human biology and medicine. J. Clin. Invest. 120, 939-949 (2010).
  7. Wen, K. W., Damania, B. Kaposi sarcoma-associated herpesvirus (KSHV): molecular biology and oncogenesis. Cancer. Lett. 289, 140-150 (2009).
  8. E, X. Viral Bcl-2-mediated evasion of autophagy aids chronic infection of gammaherpesvirus 68. PLoS. Pathog. 5, e1000609-e1000609 (2009).
  9. Marques, S., Efstathiou, S., Smith, K. G., Haury, M., Simas, J. P. Selective gene expression of latent murine gammaherpesvirus 68 in B lymphocytes. J. Virol. 77, 7308-7318 (2003).
  10. McCausland, M. M., Crotty, S. Quantitative PCR technique for detecting lymphocytic choriomeningitis virus in vivo. J. Virol. Methods. 147, 167-176 (2008).
  11. Weck, K. E., Kim, S. S., Virgin, H. I., Speck, S. H. B cells regulate murine gammaherpesvirus 68 latency. J. Virol. 73, 4651-4661 (1999).
  12. Weck, K. E., Kim, S. S., Virgin, H. I., Speck, S. H. Macrophages are the major reservoir of latent murine gammaherpesvirus 68 in peritoneal cells. J. Virol. 73, 3273-3283 (1999).
check_url/it/3472?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Pirooz, S. D., Lee, J., Zhao, Z., Ni, D., Oh, S., Liang, C. Measurement of γHV68 Infection in Mice. J. Vis. Exp. (57), e3472, doi:10.3791/3472 (2011).

View Video