Summary

Het meten van Fast Calcium stromen in cardiomyocyten

Published: November 29, 2011
doi:

Summary

Wij presenteren een methode om snel (microseconde) calcium gebeurtenissen isoleren van trager stromen in levende cellen met behulp van laser scanning confocale microscopie. De methode meet fluorescentie-intensiteit schommelingen van calcium indicatoren door het opnemen van lijn scans van enkele honderden pixels in een cel. Histogram-analyse laat ons toe om te isoleren van de tijdschalen van de verschillende calcium fluxen.

Abstract

Cardiomyocyten meerdere Ca 2 + fluxen van verschillende duur die samenwerken om de functie 1,2 te optimaliseren. Veranderingen in de Ca 2 +-activiteit in reactie op extracellulaire agenten wordt voornamelijk geregeld door de fosfolipase Cβ-Gα q pad gelokaliseerd op de plasmamembraan, die wordt gestimuleerd door stoffen zoals acetylcholine 3,4. We hebben onlangs ontdekt dat plasma-membraan eiwit domeinen genaamd caveolae 5,6 kan Gα q 7 vangen geactiveerd. Dit entrapment heeft het effect van de stabilisatie van de geactiveerde toestand van Gα q en resulteert in een verlengde Ca 2 +-signalen in cardiomyocyten en andere celtypes 8. We ontdekte dit verrassende resultaat door het meten van dynamische calcium antwoorden op een snelle schaal in de levende hartspiercellen. In het kort worden cellen geladen met een fluorescerende Ca 2 +-indicator. In onze studies hebben we gebruik gemaakt Ca 2 + Green (Invitrogen, Inc.), die een toename van de fluorescentie-emissie-intensiteit bij de binding van calciumionen vertoont. De fluorescentie-intensiteit wordt vervolgens opgenomen voor het gebruik van een line-scan modus van een laser scanning confocale microscoop. Deze methode maakt een snelle overname van het tijdsverloop van de fluorescentie-intensiteit in pixels langs een geselecteerde lijn, het produceren van enkele honderden van de tijd sporen op de microseconde tijdschaal. Deze zeer snelle sporen worden overgebracht naar Excel en vervolgens in Sigmaplot voor analyse, en worden vergeleken met sporen verkregen voor elektronische ruis, gratis verf, en andere controles. Te ontleden Ca 2 + reacties van verschillende fluxen, voerden we een histogram analyse die pixel intensiteiten weggegooid met de tijd. Binning laat ons toe om de groep meer dan 500 sporen van scans en visualiseren van de verzamelde resultaten van ruimte en tijd op een perceel. Zo kan de trage Ca 2 + golven die moeilijk te onderscheiden wanneer de scans worden bedekt te wijten aan verschillende piek plaatsing en geluid, gemakkelijk te zien inhet weggegooid histogrammen. Zeer snel fluxen in de tijdschaal van de meting tonen een smalle verdeling van de intensiteiten op de zeer korte tijd bakken terwijl meer Ca 2 + golven tonen weggegooid gegevens met een brede spreiding over langere tijd bakken. Deze verschillende verdelingen tijd kunnen we de timing van Ca 2 + fluxen ontleden in de cellen, en het effect daarvan te bepalen op verschillende cellulaire gebeurtenissen.

Protocol

1. Het laden van cellen met calcium indicatoren Plaat cellen in 35mm met glazen bodem MatTek gerechten (of enige andere met glazen bodem bekijken van kamers). Bij gebruik van primaire myocyten de vacht van de kamers een dag eerder met 10μg/ml laminine. Plaat cardiale myocyten (geïsoleerd van volwassen honden, neonatale ratten of ander organisme) in KB buffer (K-omkering Tyrode buffer 35 mmol / L van HEPES, 140 mmol / L KCl, 8 mmol / L van KHCO 3, 2 mmol / L van MgCl 2, en 0,4…

Discussion

We hebben een methode ontwikkeld om te bekijken en te snelle calcium-signalen te isoleren in levende hartspiercellen. Terwijl de experimentele omstandigheden van deze metingen zijn eerder toegepast op andere celsystemen 10 en cardiomyocyten 11, het gebruik van histogrammen en bin-analyse maakt het mogelijk gegevens uit vele Ca 2 + evenementen aan te schaffen. Sneller gebeurtenissen kunnen gemakkelijk worden geïsoleerd uit langzamere en modellen aangepast aan hun onderliggende mechanisme…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door de National Institutes of Health beurzen 2R01 GM53132 en P50 GM071558.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
DMEM Invitrogen ABCD1234  

Riferimenti

  1. Cheng, H., Lederer, M. R., Lederer, W. J., Cannell, M. B. Calcium sparks and [Ca2+]i waves in cardiac myocytes. Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 270, 148-159 (1996).
  2. Cheng, H., Lederer, W. J. Calcium Sparks. Physiol. Rev. 88, 1491-1545 (2008).
  3. Rebecchi, M. J., Pentyala, S. N. Structure, function, and control of phosphoinositide-specific phospholipase. C. Physiol.Rev. 80, 1291-1335 (2000).
  4. Suh, P. Multiple roles of phosphoinositide-specific phospholipase C isozymes. BMB reports. 41, 415-434 (2008).
  5. Schlegel, A. Crowded little caves: structure and function of caveolae. Cell. Signal. 10, 457-463 (1998).
  6. Anderson, R. G. The caveolae membrane system. Annu. Rev. Biochem. 67, 199-225 (1998).
  7. Sengupta, P., Philip, F., Scarlata, S. Caveolin-1 alters Ca2+ signal duration through specific interaction with the G{alpha}q family of G proteins. J. Cell. Sci. 121, 1363-1372 (2008).
  8. Guo, Y., Golebiewska, U., Scarlata, S. Modulation of Ca2+ Activity in Cardiomyocytes through Caveolae-G[alpha]q Interactions. Biophysical. Journal. 100, 1599-1607 (1016).
  9. Rybin, V. O., Xu, X., Lisanti, M. P., Steinberg, S. F. Differential targeting of beta -adrenergic receptor subtypes and adenylyl cyclase to cardiomyocyte caveolae. A mechanism to functionally regulate the cAMP signaling pathway. J. Biol. Chem. 275, 41447-41457 (2000).
  10. Tovey, S. C. Calcium puffs are generic InsP3-activated elementary calcium signals and are downregulated by prolonged hormonal stimulation to inhibit cellular calcium responses. J. Cell. Sci. 114, 3979-3989 (2001).
  11. Lohn, M. Ignition of Calcium Sparks in Arterial and Cardiac Muscle Through Caveolae. Circ. Res. 87, 1034-1039 (2000).
check_url/it/3505?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Golebiewska, U., Scarlata, S. Measuring Fast Calcium Fluxes in Cardiomyocytes. J. Vis. Exp. (57), e3505, doi:10.3791/3505 (2011).

View Video