Summary

Intracellulære Refolding Assay

Published: January 24, 2012
doi:

Summary

I denne protokollen en metode for å måle intracellulært protein refolding etter varmesjokkproteiner er beskrevet. Denne metoden kan brukes til å studere foldases som molekylær anstand og deres co-faktorer eller forbindelser i stand til å påvirke deres aktivitet. Firefly luciferase aktivitet brukes som reporter for å måle anstand refolding aktivitet.

Abstract

Denne protokollen beskriver en metode for å måle enzymatisk aktivitet av molekylære anstand i en celle-basert system, og mulige effekter av forbindelser med hemmende / stimulerende aktivitet. Molecular anstand er proteiner involvert i regulering av protein folding 1 og har en avgjørende rolle i å fremme celle overlevelse ved stresset fornærmelser som heat shock 2, nærings sult og eksponering for kjemikalier / giftstoffer 3. Av denne grunn anstand er funnet å være involvert i hendelser som tumor utvikling, chemioresistance av kreft celler 4 samt neurodegeneration 5. Design av små molekyler i stand til å hemme eller stimulere aktiviteten av disse enzymene er derfor en av de mest studerte strategier for kreftbehandling 7 og nevrodegenerative lidelser 9. Analysen her er beskrevet gir muligheten til å måle refolding aktiviteten til et bestemt molekylær anstand og å studere effekten av compounds på sin virksomhet. I denne metoden genet av molekylære anstand undersøkt er transfektert sammen med et uttrykk vektor koding for ildfluen luciferase genet. Det er allerede beskrevet som denaturated ildflue luciferase kan refolded av molekylær anstand 10,11. Som normalisering transfeksjon kontroll, er en vektor koding for renilla luciferase genet transfektert. Alle transfections beskrevet i denne protokollen er utført med X-treme Gene 11 (Roche) i HEK-293 celler. I det første trinnet, er proteinsyntesen hemmes ved å behandle cellene med cycloheximide. Deretter protein unfolding er indusert av varme sjokk ved 45 ° C i 30 minutter. Ved utvinning ved 37 ° C, er proteiner re-brettet i sine aktive konformasjon og aktiviteten av ildfluen luciferase brukes som read-out: jo mer lys vil bli produsert, jo mer protein vil ha re-fått den opprinnelige eksteriør. Non-varme sjokkert celler er satt som referanse (100% av refoldedluciferase).

Protocol

1. Seeding cellene Før du begynner, varm opp kulturen medium, PBS 1X og trypsin i et vannbad ved 37 ˚ C Ta cellene ut av inkubatoren og aspirer mediet. Forsiktig gjelder 5 ml PBS 1X på cellene for å vaske dem. Aspirer PBS 1X og gjelder 1 mL trypsin inneholder 0025% EDTA. Forsiktig rotere plate til å ha en jevn fordeling av trypsin. Plasser cellene i inkubator ved 37 ˚ C i 5-10 minutter (avhengig av celletype). Fra tid til annen se om cellene er frittligg…

Discussion

I dette arbeidet en protokoll for å måle intracellulære refolding aktivitet av molekylære anstand presenteres. Hele analysen kan utføres i 3 til 4 dager slik det fremkommer av oversikten i fig. 1.

Robusthet og linearitet av lyset signal produsert av ildflue og renilla luciferase representerer en solid base for reproduserbarheten av protokollen.

Den kritiske trinn i analysen er valget av en effektiv transfeksjon reagens å sikre overekspresjo…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Danilo Maddalo er en mottaker av en stipendiatstilling som Young Investigator Group (YIG) fra Karlsruhe Institute of Technology.

Materials

For this experiment a Luminometer form Perkin Elmer ‘1420 Luminescence Counter’ Vector Light′ was used

Programs for the Luminometer:

Renilla: Pump 1, 100 μl injection

Reaction Buffer: Pump1, 70 μl injection

Luciferin: Pump2, 30μl injection

For the buffers prepare these stock solutions in double distilled water:

  •       1M MgSO4 : 246,48g MgSO4*7H2O in 1 liter
  • –       0,5M EGTA: 190,18g EGTA in 1 liter
  • –       1M KH2PO4: 136,09g KH2PO4 in 1 liter
  • –       1M K2HPO4: 228,23g K2HPO4*3H2O in 1 liter
  • –       5M NaCl: 292,2g NaCl in 1 liter
  • –       0,5M EDTA: 186,12g EDTA*2H2O in 1 liter          

GLY-GLY-buffer:

  • –       25mM Glycylglycin
  • –       15mM MgSO4
  • –       4mM EGTA

For 1 liter use 3,3g of Glycylglycin, 15ml of a 1M MgSO4 solution and 8ml of a 0,5M EGTA solution. Solve in water, adjust the pH to 7,8 and bring to a total volume of 1 liter.

Reaction buffer for Renilla/Coelenterazine buffer:

  • –      13,4mM KH2PO4
  • –       86,6mM KH2PO4
  • –       0,5M NaCl
  • –       1mM EDTA

For 1 liter use 13,4ml of a 1M KH2PO4 solution, 86,6ml of a 1M K2HPO4 solution, 100ml of a 5M NaCl solution and 2ml of a 0,5M EDTA solution.

  Company Catalog/Product Number:
DMEM (Dulbecco’s Modified Eagle Medium 1X) GIBCO 41966029
Fetal Bovine Serum Gold PAA A15-151
X-treme Gene 9
DNA Transfection Reagent
Roche 06365809001
PBS
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline 1X
GIBCO 14190-094
MOPS
3-(N-Morpholino)Propanesulfonic acid
SIGMA-ALDRICH M1254
Cycloheximide SIGMA-ALDRICH C7698
Passive Lysis Buffer 5X Promega E194A

Glycylglycin
EGTA
MgSO4 (MgSO4*7H2O)

SIGMA-ALDRICH
Roth
Roth
G7278
3054.2
P027.1

KH2PO4
K2HPO4 (K2HPO4*3H2O)
NaCl
EDTA

Roth
Roth
Roth
Roth
3904.1
6878.2
3957.1
8043.1
Luciferin Firefly Biosynth L8200
Coelenterazine Biosynth C7000
DTT (Dithiothreitol) Roth 6908.2
ATP (Adenosine Triphosphate) Roche 10519987001

References

  1. Bukau, B., Weissman, J., Horwich, A. Molecular chaperones and protein quality control. Cell. 125, 443-443 (2006).
  2. Ritossa, F. Discovery of the heat shock response. Cell Stress Chaperones. 1, 97-97 (1996).
  3. Hendrick, J. P., Hartl, F. U. Molecular chaperone functions of heat-shock proteins. Annu. Rev. Biochem. 62, 349-349 (1993).
  4. Fuqua, S. A. Heat shock proteins and drug resistance. Breast. Cancer. Res. Treat. 32, 67-67 (1994).
  5. Guzhova, I., Margulis, B. Hsp70 chaperone as a survival factor in cell pathology. Int. Rev. Cytol. 254, 101-101 (2006).
  6. Whitesell, L., Lindquist, S. L. HSP90 and the chaperoning of cancer. Nat. Rev. Cancer. 5, 761-761 (2005).
  7. Konstantinopoulos, P. A., Papavassiliou, A. G. 17-AAG: mechanisms of antitumour activity. Expert. Opin. Investig. Drugs. 14, 1471-1471 (2005).
  8. Galluzzi, L., Giordanetto, F., Kroemer, G. Targeting HSP70 for cancer therapy. Mol. Cell. 36, 176-176 (2009).
  9. Ozacmak, V. H., Barut, F., Ozacmak, H. S. Melatonin provides neuroprotection by reducing oxidative stress and HSP70 expression during chronic cerebral hypoperfusion in ovariectomized rats. J. Pineal. Res. 47, 156-156 (2009).
  10. Schroder, H., Langer, T., Hartl, F. U., Bukau, B. DnaK, DnaJ and GrpE form a cellular chaperone machinery capable of repairing heat-induced protein damage. EMBO. J. 12, 4137-41 (1993).
  11. Thulasiraman, V., Matts, R. L. Effect of geldanamycin on the kinetics of chaperone-mediated renaturation of firefly luciferase in rabbit reticulocyte lysate. Biochemistry. 35, 13443-13443 (1996).
  12. Howarth, J. L. Hsp40 molecules that target to the ubiquitin-proteasome system decrease inclusion formation in models of polyglutamine disease. Mol. Ther. 15, 1110-1110 (2007).
  13. Nollen, E. A. Bag1 functions in vivo as a negative regulator of Hsp70 chaperone activity. Mol. Cell. Biol. 20, 1083-1083 (2000).
check_url/3540?article_type=t&slug=intracellular-refolding-assay

Play Video

Cite This Article
Walther, T. V., Maddalo, D. Intracellular Refolding Assay. J. Vis. Exp. (59), e3540, doi:10.3791/3540 (2012).

View Video