Summary

Overvåking Protein Adsorpsjon med Solid-state nanopores

Published: December 02, 2011
doi:

Summary

En metode for å bruke solid-state nanopores å overvåke non-spesifikk adsorpsjon av proteiner på et uorganisk overflaten er beskrevet. Metoden benytter resistive-pulsen prinsippet, noe som åpner for adsorpsjon å bli analysert i sanntid og på enkelt-molekyl nivå. Fordi prosessen med singel protein adsorpsjon er langt fra likevekt, foreslår vi ansettelse av parallelle rekker av syntetiske nanopores, slik for kvantitativ måling av den tilsynelatende første orden reaksjon hastighetskonstanten av protein adsorpsjon samt og Langmuir adsorpsjon konstant.

Abstract

Solid-state nanopores har blitt brukt til å utføre målinger på enkelt-molekyl nivå for å undersøke den lokale struktur og fleksibilitet av nukleinsyrer 1-6, utfoldelsen av proteiner 7, og Bindingsaffinitet av forskjellige ligander 8. Ved kobling disse nanopores til resistive-pulsen teknikk 9-12, kan slike målinger gjøres under en rekke forutsetninger og uten behov for merking 3. I den resistive-puls teknikk, er en ionisk salt løsning introdusert på begge sider av nanopore. Derfor er ioner drevet fra den ene siden av kammeret til den andre ved et anvendt transmembrane potensial, som resulterer i en jevn strøm. Den oppdeling av en analytt i nanopore forårsaker en veldefinert avbøyning i denne strømmen, som kan analyseres for å trekke single-molekyl informasjon. Ved hjelp av denne teknikken kan adsorpsjon av single proteiner til nanopore veggene overvåkes under et bredt spekter avforhold 13. Protein adsorpsjon vokser i betydning, fordi som microfluidic enheter krympe i størrelse, blir samspillet mellom disse systemene med én proteiner en bekymring. Denne protokollen beskriver en rask test for protein binding til nitride filmer, som lett kan utvides til andre tynne filmer mottagelig for nanopore boring, eller å functionalized nitride overflater. En rekke proteiner kan utforskes under et bredt spekter av løsninger og denaturering forhold. I tillegg kan denne protokollen brukes til å utforske mer grunnleggende problemer ved hjelp nanopore spektroskopi.

Protocol

1. Produksjon av solid-state nanopores i silisiumnitrid membraner Ta med FEI Tecnai F20 S / TEM til en akselerasjon spenning på 200 kV. Hvis du bruker en annen S / TEM, bør akselerasjonen spenningen være større enn eller lik 200 kV 9 Load en 20 nm tykk SPI silisiumnitrid vindu rutenett i TEM prøven holderen og ren med oksygen plasma i 30 sekunder for å fjerne eventuelle forurensninger fra holderen. Load prøven inn i S / TEM og la for vakuum til å pumpe ned. Når S / TEM …

Discussion

Spontan adsorpsjon av proteiner på solid-state overflater 27-29 er fundamentalt viktig i en rekke områder, slik som biochip applikasjoner og design av en ny klasse av funksjonelle hybrid biomaterialer. Tidligere studier har vist at proteiner adsorberes til solid-state overflater ikke viser lateral mobilitet eller signifikant desorpsjon priser, og derfor protein adsorpsjon er generelt ansett som en irreversibel og ikke-spesifikk prosess 30-32. Protein adsorpsjon på solid state overflater antas å…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å takke John Grazul (Cornell University), Andre Marziali (The University of British Columbia i Vancouver) og Vincent Tabard-Cossa (The University of Ottawa) for deres råd. Dette arbeidet er finansiert delvis med tilskudd fra det amerikanske National Science Foundation (DMR-0706517 og DMR-1006332) og National Institutes of Health (R01-GM088403). Den nanopore Boringen ble utført ved Elektronmikroskopi Facility av Cornell Center for Materials Research (CCMR) med støtte fra National Science Foundation – Materials Research Science and Engineering Centers (MRSEC) program (DMR 0.520.404). Utarbeidelsen av silisiumnitrid membranene ble utført ved Cornell nanoskala Facility, et medlem av National Nanoteknologi Infrastructure Network, som er støttet av National Science Foundation (Grant ECS-0335765).

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Tecnai F20 S/TEM FEI   S/TEM requires acceleration voltage ≥200kV and field-emission source.
20 nm thick silicon nitride membrane window for TEM SPI 4163SN-BA  
Axon Axopatch 200B patch-clamp amplifier Molecular Devices    
Axon Digidata 1440A Molecular Devices    
pCLAMP 10 software Molecular Devices   Electrophysiology Data Acquisition and Analysis Software
Sulfuric Acid Fisher Scientific A300  
hydrogen peroxide Fisher Scientific H325  
silicone O-rings McMaster-Carr 003 S70 Alternatively use PDMS
silver wire Sigma-Aldrich 348759 For electrodes
SPC Technology, D sub contact, pin Newark 9K4978 For electrodes
potassium chloride Sigma P9541  
potassium phosphate dibasic Sigma P2222  
potassium phosphate monobasic Sigma P5379  
PDMS Dow Corning   Sylgar 184 Elastomer set. For making chamber.
Kwik-Cast Sealant World Precision Instruments KWIK-CAST Fast acting silicone sealant
hot plate Fisher Scientific    
Faraday cage      

Riferimenti

  1. Li, J. Ion-beam sculpting at nanometre length scales. Nature. 412, 166-169 (2001).
  2. Li, J., Gershow, M., Stein, D., Brandin, E., Golovchenko, J. A. DNA molecules and configurations in a solid-state nanopore microscope. Nat. Mater. 2, 611-615 (2003).
  3. Dekker, C. Solid-state nanopores. Nature. Nanotechnology. 2, 209-215 (2007).
  4. Branton, D. The potential and challenges of nanopore sequencing. Nat. Biotechnol. 26, 1146-1153 (2008).
  5. Wanunu, M., Morrison, W., Rabin, Y., Grosberg, A. Y., Meller, A. Electrostatic focusing of unlabelled DNA into nanoscale pores using a salt gradient. Nat. Nanotechnol. 5, 160-165 (2010).
  6. Peng, H., Ling, X. S. Reverse DNA translocation through a solid-state nanopore by magnetic tweezers. Nanotechnology. 20, 185101-185101 (2009).
  7. Talaga, D. S., Li, J. Single-molecule protein unfolding in solid state nanopores. J. Am. Chem. Soc. 131, 9287-9297 (2009).
  8. Zhao, Q. Detecting SNPs using a synthetic nanopore. Nano. Lett. 7, 1680-1685 (2007).
  9. Storm, A. J., Chen, J. H., Ling, X. S., Zandbergen, H. W., Dekker, C. Fabrication of solid-state nanopores with single-nanometre precision. Nat. Mater. 2, 537-540 (2003).
  10. Sexton, L. T. Resistive-pulse studies of proteins and protein/antibody complexes using a conical nanotube sensor. J. Am. Chem. Soc. 129, 13144-13152 (2007).
  11. Martin, C. R., Siwy, Z. S. Chemistry. Learning nature’s way: biosensing with synthetic nanopores. Science. 317, 331-332 (2007).
  12. Sexton, L. T. An adsorption-based model for pulse duration in resistive-pulse protein sensing. J. Am. Chem. Soc. 132, 6755-6763 (2010).
  13. Niedzwiecki, D. J., Grazul, J., Movileanu, L. Single-molecule observation of protein adsoption onto an inorganic surface. J. Am. Chem. Soc. 132, 10816-10822 (2010).
  14. Wanunu, M., Meller, A., Selvin, P. R., Ha, T. . Single-molecule techniques: a laboratory manual. , 395-420 (2008).
  15. Han, A. Label-free detection of single protein molecules and protein-protein interactions using synthetic nanopores. Anal. Chem. 80, 4651-4658 (2008).
  16. Han, A. Sensing protein molecules using nanofabricated pores. Appl. Phys. Lett. 88, (2006).
  17. Fologea, D., Ledden, B., McNabb, D. S., Li, J. Electrical characterization of protein molecules by a solid-state nanopore. Appl. Phys. Lett. 91, (2007).
  18. Firnkes, M., Pedone, D., Knezevic, J., Doblinger, M., Rant, U. Electrically Facilitated Translocations of Proteins through Silicon Nitride Nanopores: Conjoint and Competitive Action of Diffusion, Electrophoresis, and Electroosmosis. Nano. Lett. , (2010).
  19. Pedone, D., Firnkes, M., Rant, U. Data analysis of translocation events in nanopore experiments. Anal. Chem. 81, 9689-9694 (2009).
  20. Oukhaled, A. Dynamics of Completely Unfolded and Native Proteins through Solid-State Nanopores as a Function of Electric Driving Force. ACS. Nano.. , (2011).
  21. Yusko, E. C. Controlling protein translocation through nanopores with bio-inspired fluid walls. Nat. Nanotechnol. 6, 253-260 (2011).
  22. Arafat, A., Schroen, K., de Smet, L. C., Sudholter, E. J., Zuilhof, H. Tailor-made functionalization of silicon nitride surfaces. J. Am. Chem. Soc. 126, 8600-8601 (2004).
  23. Wanunu, M., Meller, A. Chemically modified solid-state nanopores. Nano. Lett. 7, 1580-1585 (2007).
  24. Movileanu, L., Cheley, S., Bayley, H. Partitioning of individual flexible polymers into a nanoscopic protein pore. Biophys. J. 85, 897-910 (2003).
  25. Aksimentiev, A. Deciphering ionic current signatures of DNA transport through a nanopore. Nanoscale. 2, 468-483 (2010).
  26. Timp, W. Nanopore Sequencing: Electrical Measurements of the Code of Life. IEEE Trans. Nanotechnol. 9, 281-294 (2010).
  27. Roach, P., Farrar, D., Perry, C. C. Surface tailoring for controlled protein adsorption: effect of topography at the nanometer scale and chemistry. J. Am. Chem. Soc. 128, 3939-3945 (2006).
  28. Roach, P., Farrar, D., Perry, C. C. Interpretation of protein adsorption: surface-induced conformational changes. J. Am. Chem. Soc. 127, 8168-8173 (2005).
  29. Brewer, S. H., Glomm, W. R., Johnson, M. C., Knag, M. K., Franzen, S. Probing BSA binding to citrate-coated gold nanoparticles and surfaces. Langmuir. 21, 9303-9307 (2005).
  30. Schon, P., Gorlich, M., Coenen, M. J., Heus, H. A., Speller, S. Nonspecific protein adsorption at the single molecule level studied by atomic force microscopy. Langmuir. 23, 9921-9923 (2007).
  31. Rabe, M., Verdes, D., Zimmermann, J., Seeger, S. Surface organization and cooperativity during nonspecific protein adsorption events. J. Phys. Chem. B. 112, 13971-13980 (2008).
  32. Rabe, M., Verdes, D., Rankl, M., Artus, G. R., Seeger, S. A comprehensive study of concepts and phenomena of the nonspecific adsorption of beta-lactoglobulin. Chemphyschem. 8, 862-872 (2007).
  33. Micic, M., Chen, A., Leblanc, R. M., Moy, V. T. Scanning Electron Microscopy Studies of Protein-Functionalized Atomic Force Microscopy Cantilever Tips. Scanning. 21, 394-397 (1999).
  34. Grant, A. W., Hu, Q. H., Kasemo, B. Transmission electron microscopy ‘windows’ for nanofabricated structures. Nanotechnology. 15, 1175-1181 (2004).
  35. Giannoulis, C. S., Desai, T. A. Characterization of proteins and fibroblasts on thin inorganic films. J. Mater. Sci: Mater. Med. 13, 75-80 (2002).
  36. Gustavsson, J. Surface modifications of silicon nitride for cellular biosensors applications. J. Mater. Sci: Mater. Med. 19, 1839-1850 (2008).
  37. Shirshov, Y. M. Analysis of the response of planar polarization interferometer to molecular layer formation: fibrinogen adsorption on silicon nitride surface. Biosens. Bioelectron. 16, 381-390 (2001).
  38. Chen, P. Atomic layer deposition to fine-tune the surface properties and diamters of fabricated nanopores. Nano. Lett. 4, 1333-1337 (2004).
  39. Siwy, Z. Protein biosensors based on biofunctionalized conical gold nanotubes. J. Am. Chem. Soc. 127, 5000-5001 (2005).
  40. Ding, S., Gao, C., Gu, L. Q. Capturing Single Molecules of Immunoglobulin and Ricin with an Aptamer-Encoded Glass Nanopore. Anal. Chem. , (2009).
  41. Kim, M. -. J., Wanunu, M., Bell, C. D., Meller, A. Rapid Fabrication of Uniform Size Nanopores and Nanopore Arrays for Parallel DNA Analysis. Adv. Mater. 18, 3149-3153 (2006).
  42. Bezrukov, S. M. Ion channels as molecular Coulter counters to probe metabolite transport. J. Membr. Biol. 174, 1-13 (2000).
check_url/it/3560?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Niedzwiecki, D. J., Movileanu, L. Monitoring Protein Adsorption with Solid-state Nanopores. J. Vis. Exp. (58), e3560, doi:10.3791/3560 (2011).

View Video