Summary

Övervakning proteinadsorption med Solid-state nanopores

Published: December 02, 2011
doi:

Summary

En metod för att med hjälp av solid-state nanopores att övervaka icke-specifika adsorption av proteiner på en oorganisk yta beskrivs. Metoden använder den resistiva-puls princip gör det möjligt att adsorption ska sonderas i realtid och vid enda molekyl nivå. Eftersom processen med enda protein adsorption är långt från jämvikt, föreslår vi att anställa parallella kedjor av syntetiska nanopores, vilket möjliggör för kvantitativ bestämning av den synbara första ordningens reaktion hastighetskonstant protein adsorption samt och Langmuir adsorption konstant.

Abstract

Solid-state nanopores har använts för att göra mätningar vid enda molekyl nivå för att undersöka den lokala strukturen och flexibilitet av nukleinsyror 1-6, den pågående av proteiner 7 och affinitet för olika ligander 8. Genom att koppla dessa nanopores med resistiv-puls teknik 9-12, kan sådana mätningar göras under en lång rad olika villkor och utan behov för märkning 3. I den resistiva-puls teknik, är en jonisk saltlösning införts på båda sidor av nanopore. Därför joner drivs från ena sidan av kammaren till den andra genom en tillämpad transmembrana potential, vilket resulterar i en stadig ström. Den uppdelning av en analyt i nanopore orsakar en väl definierad utslag i denna ström, som kan analyseras för att extrahera enda molekyl information. Med denna teknik kan adsorptionen av enstaka proteiner till nanopore väggarna övervakas i ett brett spektrum avvillkor 13. Protein adsorption växer i betydelse, för som mikroflödessystem enheter krympa i storlek, blir samspelet mellan dessa system med enstaka proteiner ett problem. Detta protokoll beskriver en snabb test för protein bindning till bornitrid filmer, som lätt kan utvidgas till andra tunna filmer mottaglig för nanopore borrning eller functionalized bornitrid ytor. En mängd olika proteiner kan undersökas inom ramen för ett brett utbud av lösningar och denaturering villkor. Dessutom kan detta protokoll användas för att utforska mer grundläggande problem med hjälp av nanopore spektroskopi.

Protocol

1. Tillverkning av solid-state nanopores i membran kiselnitrid Ta med FEI Tecnai F20 S / TEM till en acceleration spänning på 200 kV. Om du använder ett annat S / TEM, bör accelerationen spänningen vara större än eller lika med 200 kV 9 Ladda ett 20 nm tjockt SPI kisel nätet nitride fönster i TEM provhållaren och ren med syre plasma i 30 sekunder för att ta bort eventuella föroreningar från hållaren. Ladda provet till S / TEM och möjliggöra vakuum att pumpa ner. …

Discussion

Spontan adsorption av proteiner på solid-state ytor 27-29 är av grundläggande betydelse på en rad områden, såsom biochip applikationer och design av en ny klass av funktionella hybrid biomaterial. Tidigare studier har visat att protein adsorberas till solid-state ytor inte visar lateral rörlighet eller signifikant desorption, och därför proteinadsorption anses allmänt en oåterkallelig och icke-specifik process 30-32. Protein adsorption på fasta tillståndets ytor tros bero på flera fak…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka John Grazul (Cornell University), Andre Marziali (The University of British Columbia i Vancouver) och Vincent Tabard-Cossa (The University of Ottawa) för sina råd. Detta arbete finansieras delvis genom bidrag från US National Science Foundation (DMR-0.706.517 och DMR-1.006.332) och National Institutes of Health (R01-GM088403). Den nanopore borrning utfördes vid elektronmikroskopi Facility av Cornell Centrum för Materials Research (CCMR) med stöd från National Science Foundation – Materials Research Science and Engineering Center (MRSEC) program (DMR 0.520.404). Beredningen av kiselnitrid membran utfördes vid Cornell nanoskala Facility, en medlem av National Nanotechnology Infrastructure Network, som stöds av National Science Foundation (Grant ECS-0.335.765).

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Tecnai F20 S/TEM FEI   S/TEM requires acceleration voltage ≥200kV and field-emission source.
20 nm thick silicon nitride membrane window for TEM SPI 4163SN-BA  
Axon Axopatch 200B patch-clamp amplifier Molecular Devices    
Axon Digidata 1440A Molecular Devices    
pCLAMP 10 software Molecular Devices   Electrophysiology Data Acquisition and Analysis Software
Sulfuric Acid Fisher Scientific A300  
hydrogen peroxide Fisher Scientific H325  
silicone O-rings McMaster-Carr 003 S70 Alternatively use PDMS
silver wire Sigma-Aldrich 348759 For electrodes
SPC Technology, D sub contact, pin Newark 9K4978 For electrodes
potassium chloride Sigma P9541  
potassium phosphate dibasic Sigma P2222  
potassium phosphate monobasic Sigma P5379  
PDMS Dow Corning   Sylgar 184 Elastomer set. For making chamber.
Kwik-Cast Sealant World Precision Instruments KWIK-CAST Fast acting silicone sealant
hot plate Fisher Scientific    
Faraday cage      

Riferimenti

  1. Li, J. Ion-beam sculpting at nanometre length scales. Nature. 412, 166-169 (2001).
  2. Li, J., Gershow, M., Stein, D., Brandin, E., Golovchenko, J. A. DNA molecules and configurations in a solid-state nanopore microscope. Nat. Mater. 2, 611-615 (2003).
  3. Dekker, C. Solid-state nanopores. Nature. Nanotechnology. 2, 209-215 (2007).
  4. Branton, D. The potential and challenges of nanopore sequencing. Nat. Biotechnol. 26, 1146-1153 (2008).
  5. Wanunu, M., Morrison, W., Rabin, Y., Grosberg, A. Y., Meller, A. Electrostatic focusing of unlabelled DNA into nanoscale pores using a salt gradient. Nat. Nanotechnol. 5, 160-165 (2010).
  6. Peng, H., Ling, X. S. Reverse DNA translocation through a solid-state nanopore by magnetic tweezers. Nanotechnology. 20, 185101-185101 (2009).
  7. Talaga, D. S., Li, J. Single-molecule protein unfolding in solid state nanopores. J. Am. Chem. Soc. 131, 9287-9297 (2009).
  8. Zhao, Q. Detecting SNPs using a synthetic nanopore. Nano. Lett. 7, 1680-1685 (2007).
  9. Storm, A. J., Chen, J. H., Ling, X. S., Zandbergen, H. W., Dekker, C. Fabrication of solid-state nanopores with single-nanometre precision. Nat. Mater. 2, 537-540 (2003).
  10. Sexton, L. T. Resistive-pulse studies of proteins and protein/antibody complexes using a conical nanotube sensor. J. Am. Chem. Soc. 129, 13144-13152 (2007).
  11. Martin, C. R., Siwy, Z. S. Chemistry. Learning nature’s way: biosensing with synthetic nanopores. Science. 317, 331-332 (2007).
  12. Sexton, L. T. An adsorption-based model for pulse duration in resistive-pulse protein sensing. J. Am. Chem. Soc. 132, 6755-6763 (2010).
  13. Niedzwiecki, D. J., Grazul, J., Movileanu, L. Single-molecule observation of protein adsoption onto an inorganic surface. J. Am. Chem. Soc. 132, 10816-10822 (2010).
  14. Wanunu, M., Meller, A., Selvin, P. R., Ha, T. . Single-molecule techniques: a laboratory manual. , 395-420 (2008).
  15. Han, A. Label-free detection of single protein molecules and protein-protein interactions using synthetic nanopores. Anal. Chem. 80, 4651-4658 (2008).
  16. Han, A. Sensing protein molecules using nanofabricated pores. Appl. Phys. Lett. 88, (2006).
  17. Fologea, D., Ledden, B., McNabb, D. S., Li, J. Electrical characterization of protein molecules by a solid-state nanopore. Appl. Phys. Lett. 91, (2007).
  18. Firnkes, M., Pedone, D., Knezevic, J., Doblinger, M., Rant, U. Electrically Facilitated Translocations of Proteins through Silicon Nitride Nanopores: Conjoint and Competitive Action of Diffusion, Electrophoresis, and Electroosmosis. Nano. Lett. , (2010).
  19. Pedone, D., Firnkes, M., Rant, U. Data analysis of translocation events in nanopore experiments. Anal. Chem. 81, 9689-9694 (2009).
  20. Oukhaled, A. Dynamics of Completely Unfolded and Native Proteins through Solid-State Nanopores as a Function of Electric Driving Force. ACS. Nano.. , (2011).
  21. Yusko, E. C. Controlling protein translocation through nanopores with bio-inspired fluid walls. Nat. Nanotechnol. 6, 253-260 (2011).
  22. Arafat, A., Schroen, K., de Smet, L. C., Sudholter, E. J., Zuilhof, H. Tailor-made functionalization of silicon nitride surfaces. J. Am. Chem. Soc. 126, 8600-8601 (2004).
  23. Wanunu, M., Meller, A. Chemically modified solid-state nanopores. Nano. Lett. 7, 1580-1585 (2007).
  24. Movileanu, L., Cheley, S., Bayley, H. Partitioning of individual flexible polymers into a nanoscopic protein pore. Biophys. J. 85, 897-910 (2003).
  25. Aksimentiev, A. Deciphering ionic current signatures of DNA transport through a nanopore. Nanoscale. 2, 468-483 (2010).
  26. Timp, W. Nanopore Sequencing: Electrical Measurements of the Code of Life. IEEE Trans. Nanotechnol. 9, 281-294 (2010).
  27. Roach, P., Farrar, D., Perry, C. C. Surface tailoring for controlled protein adsorption: effect of topography at the nanometer scale and chemistry. J. Am. Chem. Soc. 128, 3939-3945 (2006).
  28. Roach, P., Farrar, D., Perry, C. C. Interpretation of protein adsorption: surface-induced conformational changes. J. Am. Chem. Soc. 127, 8168-8173 (2005).
  29. Brewer, S. H., Glomm, W. R., Johnson, M. C., Knag, M. K., Franzen, S. Probing BSA binding to citrate-coated gold nanoparticles and surfaces. Langmuir. 21, 9303-9307 (2005).
  30. Schon, P., Gorlich, M., Coenen, M. J., Heus, H. A., Speller, S. Nonspecific protein adsorption at the single molecule level studied by atomic force microscopy. Langmuir. 23, 9921-9923 (2007).
  31. Rabe, M., Verdes, D., Zimmermann, J., Seeger, S. Surface organization and cooperativity during nonspecific protein adsorption events. J. Phys. Chem. B. 112, 13971-13980 (2008).
  32. Rabe, M., Verdes, D., Rankl, M., Artus, G. R., Seeger, S. A comprehensive study of concepts and phenomena of the nonspecific adsorption of beta-lactoglobulin. Chemphyschem. 8, 862-872 (2007).
  33. Micic, M., Chen, A., Leblanc, R. M., Moy, V. T. Scanning Electron Microscopy Studies of Protein-Functionalized Atomic Force Microscopy Cantilever Tips. Scanning. 21, 394-397 (1999).
  34. Grant, A. W., Hu, Q. H., Kasemo, B. Transmission electron microscopy ‘windows’ for nanofabricated structures. Nanotechnology. 15, 1175-1181 (2004).
  35. Giannoulis, C. S., Desai, T. A. Characterization of proteins and fibroblasts on thin inorganic films. J. Mater. Sci: Mater. Med. 13, 75-80 (2002).
  36. Gustavsson, J. Surface modifications of silicon nitride for cellular biosensors applications. J. Mater. Sci: Mater. Med. 19, 1839-1850 (2008).
  37. Shirshov, Y. M. Analysis of the response of planar polarization interferometer to molecular layer formation: fibrinogen adsorption on silicon nitride surface. Biosens. Bioelectron. 16, 381-390 (2001).
  38. Chen, P. Atomic layer deposition to fine-tune the surface properties and diamters of fabricated nanopores. Nano. Lett. 4, 1333-1337 (2004).
  39. Siwy, Z. Protein biosensors based on biofunctionalized conical gold nanotubes. J. Am. Chem. Soc. 127, 5000-5001 (2005).
  40. Ding, S., Gao, C., Gu, L. Q. Capturing Single Molecules of Immunoglobulin and Ricin with an Aptamer-Encoded Glass Nanopore. Anal. Chem. , (2009).
  41. Kim, M. -. J., Wanunu, M., Bell, C. D., Meller, A. Rapid Fabrication of Uniform Size Nanopores and Nanopore Arrays for Parallel DNA Analysis. Adv. Mater. 18, 3149-3153 (2006).
  42. Bezrukov, S. M. Ion channels as molecular Coulter counters to probe metabolite transport. J. Membr. Biol. 174, 1-13 (2000).
check_url/it/3560?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Niedzwiecki, D. J., Movileanu, L. Monitoring Protein Adsorption with Solid-state Nanopores. J. Vis. Exp. (58), e3560, doi:10.3791/3560 (2011).

View Video