Dieses Video zeigt ein Modell zur Entwicklung von Intimahyperplasie nach der Entfaltung des Stents unter Verwendung einer menschlichen Gefäß (IMA) in einem immundefizienten Rattenmodell zu untersuchen.
Präklinische Forschung in vivo Modelle zu pathobiologischen und pathophysiologischen Prozessen in der Entwicklung der Intimahyperplasie nach Gefäß-Stents zu untersuchen sind entscheidend für translationale Ansätze 1,2.
Die am häufigsten verwendeten Tiermodelle gehören Mäuse, Ratten, Kaninchen, Schweine und 3-5. Allerdings bleibt die Übersetzung dieser Modelle in den klinischen Alltag schwierig, da diese biologischen Prozesse bereits in der Tier-Gefäße untersucht werden, aber nie in der menschlichen Forschung Modelle 6,7 durchgeführt. In diesem Video zeigen wir einen neuen humanisierten Modell, um diese Lücke zu überwinden translationale. Das gezeigte Verfahren ist reproduzierbar, einfach und schnell durchzuführen und geeignet ist, die Entwicklung von Intimahyperplasie und die Anwendbarkeit von verschiedenen Stents zu studieren.
Dieses Video zeigt, wie die Stent-Technik in der menschlichen Gefäße durch Transplantation in immundefizienten Ratten folgten durchzuführen, undbezeichnet die Herkunft von proliferierenden Zellen als Menschen.
Obwohl verschiedene In-vivo-Forschung werden bestehende Modelle, die Entwicklung der Intimahyperplasie nach Stentimplantation zu untersuchen, diese Modelle noch immer vor translationale Hürden zu überwinden. Darüber hinaus sind Großtiermodellen teure und spezielle Haltungsbedingungen sowie chirurgische Geräte ist nicht für alle Laboratorien zur Verfügung.
Mit Hilfe eines menschlichen IMA, um die Entwicklung der menschlichen Intimaproliferation und In-Stent Restenose zu studie…
The authors have nothing to disclose.
Die Autoren danken Christiane Pahrmann für ihren Beitrag. Besonderer Dank geht an Ethicon, Norderstedt, Hamburg (Deutschland) für die Bereitstellung des Nahtmaterial.
Finanzierung
Sonja Schrepfer hat ein Forschungsstipendium der Deutschen Forschungsgemeinschaft (DFG) (SCHR992 / 3 1 und SCHR992/4-1) erhalten haben.] Die Arbeit wurde von der ISHLT Shumway Career Development Grant 2010 und der Falk-Forschungsförderung (Stanford University) unterstützt.
Name of the reagent | Company | Catalog number | Comments |
2 French Fogarty catheter | Baxter Healthcare, Deerfield, IL, USA | 120602F | |
Yukon Stent | Translumina GmbH, Hechingen, Germany | Use the stent of your choice according to your study protocol | |
RPMI media | Biochrom | Nr.F1275 | |
heparin | Baxter | 2B0953 | |
isoflurane | Abbot | B506 | |
Provo-Iodine | Betadine Puredue Pharma | EAN:5995327165830 | |
80% ethanol | Geyer | ETV 80/0500 | |
Micro clamp | Harvard Apparatus | PY2-61-0186 | |
Sutures 8-0 | Johnson& Johnson, | 2808G | |
Sutures 6-0 | Johnson& Johnson, | 1698 H | |
Carprofen | Feizer Vet | PZN:0110208 | |
Metamizol | Ratiopharm | ||
Target retrieval solution, pH9 | Dako | S2368 | |
Image-iT FX signal enhancer | Invitrogen | I36933 | |
mouse monoclonal anti-GFP antibody | BD living colors | 632381 | |
primary antibody diluent | Dako | S3022 | |
goat-anti-mouse IgG, Alexa Fluor 488 | Invitrogen | A11017 | |
secondary antibody diluent | Dako | S0809 | |
rabbit polycolonal anti-smooth muscle α-actin | Abcam, | ab5694 | |
goat-anti-rabbit IgG, Alexa Fluor 555 | Invitrogen | A21430 | |
Prolong Gold antifade reagent | Invitrogen | P36930 |