Summary

Single-celle Analyse av Bacillus subtilis Biofilm Bruke fluorescensmikroskopi og flowcytometrisystemer

Published: February 15, 2012
doi:

Summary

Mikrobielle biofilmer er generelt konstituert av distinkte subpopulasjoner av spesialiserte celler. Single-celle analyse av disse subpopulasjoner krever bruk av fluorescerende reportere. Her beskriver vi en protokoll for å visualisere og overvåke flere subpopulationswithin<em> B. subtilis</em> Biofilmer med fluorescens mikroskopi og flowcytometri.

Abstract

Biofilmdannelse er en generell egenskap til nesten alle bakterier 1-6. Når bakterier danner biofilm, celler er omsluttet av ekstracellulær matrix som er mest konstituert av proteiner og exopolysaccharides, blant andre faktorer 7-10. Den mikrobielle samfunn innkapslet i biofilm ofte viser differensiering av distinkte subpopulasjon spesialiserte celler 11-17. Disse subpopulasjoner sameksistere og viser ofte romlig og tidsmessig organisasjon innen biofilm 18-21.

Biofilmdannelse i modell organisme Bacillus subtilis krever differensiering av distinkte subpopulasjoner av spesialiserte celler. Blant dem er en undergruppe av matrix produsenter, ansvarlige for å produsere og skille ut det ekstracellulære matrise av biofilm avgjørende for biofilmdannelse 11,19. Derfor er differensiering av matrix produsenter et kjennetegn på biofilmdannelse i B. subtilis.

Vi har brukt fluoriserende journalister til å visualisere og kvantifisere subpopulasjon matrix produsenter i biofilm av B. subtilis 15,19,22-24. Konkret har vi observert at en undergruppe av matrix produsenter skiller i respons til tilstedeværelsen av egentilvirket ekstracellulært signal surfactin 25. Interessant, er surfactin produsert av en undergruppe av spesialiserte celler forskjellig fra en undergruppe av matrix produsentene 15.

Vi har beskrevet i denne rapporten teknisk tilnærming er nødvendig for å visualisere og kvantifisere subpopulasjon matrix produsenter og surfactin produsenter innen biofilm av B. subtilis. For å gjøre dette, er fluorescerende reportere av gener som kreves for matrise produksjon og surfactin produksjonen satt inn i kromosomet av B. subtilis. Journalister er uttrykt bare i en undergruppe av spesialiserte celler. Deretter kan de delpopulasjoner væreovervåkes ved hjelp av fluorescens mikroskopi og flowcytometri (se fig 1).

Det faktum at ulike subpopulasjoner av spesialiserte celler eksistere innenfor flercellede samfunn av bakterier gir oss et annet perspektiv om regulering av genuttrykk i prokaryoter. Denne protokollen tar for seg dette fenomenet eksperimentelt og det kan enkelt tilpasses enhver annen fungerende modell, for å belyse de molekylære mekanismene bak fenotypiske heterogenitet innen en mikrobiell fellesskap.

Protocol

1. Merking B. subtilis og biofilmdannelse Analyseverdier Forsterke ved PCR arrangøren regionen av genet av interesse. Vi viser som eksempel kloning av P tapas, arrangøren av gener ansvarlig for produksjonen av TasA matrix protein 26. Clone P Tapa inn pkm008 vektor (skapt av Rudner lab,, USA Harvard Medical School. Boston) (fig 2). Linearize plasmidene ved enzymatisk fordøyelse (Enzyme anbefales, XhoI). Indusere naturlig kompeta…

Discussion

Det faktum at bakterielle samfunn viser subpopulasjoner av celler uttrykker spesifikke sett av gener bevis kompleksitet mikrobielle samfunn 33,34. Denne protokollen skal bidra til å avgjøre om uttrykket av noen genet av interesse er begrenset til en bestemt undergruppe av spesialiserte celler i løpet av det mikrobielle samfunn. Visualisering av disse subpopulasjoner krever utvikling av nye teknikker, fordi tradisjonelle metoder for å overvåke genuttrykket eller microarray analyse rente nivåene av genutt…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet er finansiert av Young Investigator Research Program, fra Senter for infeksjonsovervåking Research (ZINF) fra Universitetet i Würzburg. Juan C Garcia-Betancur er en stipendiat fra Graduate School of Life Sciences (GSLS) ved Universitetet i Würzburg.

Materials

Technique Name of the reagent Company Catalog number
MSgg composition potassium phosphate 5mM Roth 6878
MOPS 100mM Sigma-Aldrich M1254
Magnesium chloride 2mM Roth 2189.1
Calcium chloride 700μM Roth A119.1
Ferric chloride 50μM Sigma-Aldrich 157740
Zinc chloride 1μM Applichem A2076
Thiamine 2μM Sigma-Aldrich 74625
Glycerol 0.5% Roth 7533
Glutamate 0.5% Sigma-Aldrich 49621
Tryptophan 50μg/ml Sigma-Aldrich T0254
Phenylalanine 50μg/ml Sigma-Aldrich P2126
Cell fixation Paraformaldehyde Roth 0335
Name of the equipment Company Catalog number
Sonication Cell Sonicator Bandelin D-1000
Fluorescence Microscopy Fluorescence Microscope Leica DMI6000B
Name of the software Company Catalog Number
Fluorescence Microscopy AsaF Leica
Flow cytometry FCASDiva BD
Flow cytometry FlowJo Treestar

Riferimenti

  1. Costerton, J. W. Overview of microbial biofilms. J. Ind. Microbiol. 15, 137-140 (1995).
  2. Davey, M. E., O’Toole, G. A. Microbial biofilms: from ecology to molecular genetics. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 64, 847-867 (2000).
  3. Kolenbrander, P. E. Oral microbial communities: biofilms, interactions, and genetic systems. Annu. Rev. Microbiol. 54, 413-437 (2000).
  4. O’Toole, G., Kaplan, H. B., Kolter, R. Biofilm formation as microbial development. Annu. Rev. Microbiol. 54, 49-79 (2000).
  5. Donlan, R. M. Biofilms: microbial life on surfaces. Emerg. Infect. Dis. 8, 881-890 (2002).
  6. Lopez, D., Vlamakis, H., Kolter, R. Biofilms. Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 2, a000398-a000398 (2010).
  7. Branda, S. S., Vik, S., Friedman, L., Kolter, R. Biofilms: the matrix revisited. Trends Microbiol. 13, 20-26 (2005).
  8. Branda, S. S., Chu, F., Kearns, D. B., Losick, R., Kolter, R. A major protein component of the Bacillus subtilis biofilm matrix. Mol. Microbiol. 59, 1229-1238 (2006).
  9. Latasa, C., Solano, C., Penades, J. R., Lasa, I. Biofilm-associated proteins. C. R. Biol. 329, 849-857 (2006).
  10. O’Gara, J. P. ica and beyond: biofilm mechanisms and regulation in Staphylococcus epidermidis and Staphylococcus aureus. FEMS Microbiol Lett. 270, 179-188 (2007).
  11. Chai, Y., Chu, F., Kolter, R., Losick, R. Bistability and biofilm formation in Bacillus subtilis. Mol. Microbiol. 67, 254-263 (2008).
  12. Chen, R., Guttenplan, S. B., Blair, K. M., Kearns, D. B. Role of the sigmaD-dependent autolysins in Bacillus subtilis population heterogeneity. J. Bacteriol. 191, 5775-5784 (2009).
  13. Guttenplan, S. B., Blair, K. M., Kearns, D. B. The EpsE flagellar clutch is bifunctional and synergizes with EPS biosynthesis to promote Bacillus subtilis biofilm formation. PLoS Genet. 6, e1001243-e1001243 (2010).
  14. Kearns, D. B., Losick, R. Cell population heterogeneity during growth of Bacillus subtilis. Genes Dev. 19, 3083-3094 (2005).
  15. Lopez, D., Vlamakis, H., Losick, R., Kolter, R. Paracrine signaling in a bacterium. Genes Dev. 23, 1631-1638 (2009).
  16. Veening, J. W., Smits, W. K., Hamoen, L. W., Jongbloed, J. D., Kuipers, O. P. Visualization of differential gene expression by improved cyan fluorescent protein and yellow fluorescent protein production in Bacillus subtilis. Appl. Environ. Microbiol. 70, 6809-6815 (2004).
  17. Veening, J. W., Smits, W. K., Hamoen, L. W., Kuipers, O. P. Single cell analysis of gene expression patterns of competence development and initiation of sporulation in Bacillus subtilis grown on chemically defined media. J. Appl. Microbiol. 101, 531-541 (2006).
  18. Veening, J. W., Kuipers, O. P., Brul, S., Hellingwerf, K. J., Kort, R. Effects of phosphorelay perturbations on architecture, sporulation, and spore resistance in biofilms of Bacillus subtilis. J. Bacteriol. 188, 3099-3109 (2006).
  19. Vlamakis, H., Aguilar, C., Losick, R., Kolter, R. Control of cell fate by the formation of an architecturally complex bacterial community. Genes Dev. 22, 945-953 (2008).
  20. Stewart, P. S., Franklin, M. J. Physiological heterogeneity in biofilms. Nat. Rev. Microbiol. 6, 199-210 (2008).
  21. Veening, J. W., Smits, W. K., Kuipers, O. P. Bistability, epigenetics, and bet-hedging in bacteria. Annu. Rev. Microbiol. 62, 193-210 (2008).
  22. Aguilar, C., Vlamakis, H., Guzman, A., Losick, R., Kolter, R. KinD is a checkpoint protein linking spore formation to extracellular-matrix production in Bacillus subtilis biofilms. MBio. 1, (2010).
  23. Lopez, D., Fischbach, M. A., Chu, F., Losick, R., Kolter, R. Structurally diverse natural products that cause potassium leakage trigger multicellularity in Bacillus subtilis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 280-285 (2009).
  24. Lopez, D., Vlamakis, H., Losick, R., Kolter, R. Cannibalism enhances biofilm development in Bacillus subtilis. Mol. Microbiol. 74, 609-618 (2009).
  25. Arima, K., Kakinuma, A., Tamura, G. Surfactin, a crystalline peptidelipid surfactant produced by Bacillus subtilis: isolation, characterization and its inhibition of fibrin clot formation. Biochem. Biophys. Res. Commun. 31, 488-494 (1968).
  26. Romero, D., Vlamakis, H., Losick, R., Kolter, R. An accessory protein required for anchoring and assembly of amyloid fibres in B. subtilis biofilms. Mol. Microbiol. 80, 1155-1168 (2011).
  27. Hardwood, C. R., Cutting, S. M. . Molecular Biological Methods for Bacillus. , (1990).
  28. Novick, R. P. Genetic systems in staphylococci. Methods Enzymol. 204, 587-636 (1991).
  29. Yasbin, R. E., Young, F. E. Transduction in Bacillus subtilis by bacteriophage SPP1. J. Virol. 14, 1343-1348 (1974).
  30. Branda, S. S., Gonzalez-Pastor, J. E., Ben-Yehuda, S., Losick, R., Kolter, R. Fruiting body formation by Bacillus subtilis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 98, 11621-11626 (2001).
  31. Nakano, M. M. srfA is an operon required for surfactin production, competence development, and efficient sporulation in Bacillus subtilis. J. Bacteriol. 173, 1770-1778 (1991).
  32. Gonzalez-Pastor, J. E., Hobbs, E. C., Losick, R. Cannibalism by sporulating bacteria. Science. 301, 510-513 (2003).
  33. Aguilar, C., Vlamakis, H., Losick, R., Kolter, R. Thinking about Bacillus subtilis as a multicellular organism. Curr. Opin. Microbiol. 10, 638-643 (2007).
  34. Shapiro, J. A. Thinking about bacterial populations as multicellular organisms. Annu. Rev. Microbiol. 52, 81-104 (1998).
check_url/it/3796?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Garcia-Betancur, J. C., Yepes, A., Schneider, J., Lopez, D. Single-cell Analysis of Bacillus subtilis Biofilms Using Fluorescence Microscopy and Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (60), e3796, doi:10.3791/3796 (2012).

View Video