Summary

Encelliga Analys av Bacillus subtilis Biofilmer Använda fluorescensmikroskopi och flödescytometri

Published: February 15, 2012
doi:

Summary

Mikrobiella biofilmer i allmänhet utgörs av distinkta subpopulationer av specialiserade celler. Enkel-cell-analys av dessa underpopulationer kräver användning av fluorescerande reportrar. Här beskriver vi ett protokoll för att visualisera och övervaka flera subpopulationswithin<em> B. subtilis</em> Biofilmer med fluorescens-mikroskopi och flödescytometri.

Abstract

Biofilm formation är en allmän egenskap att nästan alla bakterier 1-6. När bakterier bilda biofilmen, celler är inneslutna i extracellulär matrix som i huvudsak utgöres av proteiner och exopolysackarider, bland andra faktorer 7-10. Den mikrobiella innesluten i biofilmen ofta visar differentiering av distinkta subpopulation av specialiserade celler 11-17. Dessa subpopulationer samexistera och ofta visar rumsliga och tidsmässiga organisation inom biofilmen 18-21.

Biofilm bildning i Bacillus modellorganism subtilis kräver differentiering av olika subpopulationer av specialiserade celler. Bland dessa är den subpopulation av matrix tillverkare, som är ansvariga för att producera och utsöndra den extracellulära matrisen av biofilmen väsentlig för bildning av biofilm 11,19. Därför är differentiering av matris producenter ett kännetecken för biofilm bildning i B. subtilis.

Vi har använt fluorescerande reportrar att visualisera och kvantifiera subpopulationen av matrisen producenter i biofilmer av B. subtilis 15,19,22-24. Konkret har vi observerat att subpopulationen av matrisen producenter skiljer svar på närvaron av egenproducerade extracellulär signal surfaktin 25. Intressant nog är surfaktin som produceras av en subpopulation av specialiserade celler som skiljer sig från den subpopulation av matrix tillverkare 15.

Vi har i denna rapport den tekniska lösning som krävs för att visualisera och kvantifiera subpopulationen av matrisen producenter och producenter surfaktin inom biofilmen av B. subtilis. För att göra detta är fluorescerande reportrar av gener som krävs för matrix produktion och surfaktin produktionen in i kromosomen av B. subtilis. Reportrar uttrycks endast i en subpopulation av specialiserade celler. Därefter kan de vara subpopulationerövervakades med användning av fluorescens-mikroskopi och flödescytometri (se fig. 1).

Det faktum att olika subpopulationer av specialiserade celler samexisterar inom flercelliga grupper av bakterier ger oss ett annat perspektiv om regleringen av genuttryck i prokaryoter. Detta protokoll behandlar detta fenomen experimentellt och kan enkelt anpassas till en annan arbetsmodell, för att belysa de molekylära mekanismerna bakom fenotypisk heterogenitet inom en mikrobiell gemenskap.

Protocol

1. Märkning B. subtilis och biofilmbildning Assay Amplifiera genom PCR-promotorregionen hos genen av intresse. Vi visar som exempel kloning av P tapa, promotorn av generna som är ansvariga för produktion av Tasa matrixprotein 26. Klon P tapa i pkm008 vektor (som skapats av Rudner labbet, Harvard Medical School. Boston, USA) (Fig. 2). Linjärisera plasmiderna genom enzymatisk digerering (Enzyme rekommenderade, Xhol). Inducerar n…

Discussion

Det faktum att bakteriella samhällen visar subpopulationer av celler som uttrycker viss uppsättning av gener bevis komplexiteten i mikrobiella samhällen 33,34. Detta protokoll bör hjälpa till att bestämma huruvida expressionen av varje gen av intresse är begränsad till en särskild underpopulation av specialiserade celler inom den mikrobiella. Visualisering av dessa subpopulationer kräver utveckling av nya tekniker, eftersom traditionella metoder för att övervaka genuttryck eller microarray analys …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete finansieras av Young Investigator Research Program, från Centrum för Infektionsmedicin Disease Research (Zinf) från universitetet i Würzburg. Juan C Garcia-Betancur är doktorandstipendiat från Graduate School of Life Sciences (GSL) vid universitetet i Würzburg.

Materials

Technique Name of the reagent Company Catalog number
MSgg composition potassium phosphate 5mM Roth 6878
MOPS 100mM Sigma-Aldrich M1254
Magnesium chloride 2mM Roth 2189.1
Calcium chloride 700μM Roth A119.1
Ferric chloride 50μM Sigma-Aldrich 157740
Zinc chloride 1μM Applichem A2076
Thiamine 2μM Sigma-Aldrich 74625
Glycerol 0.5% Roth 7533
Glutamate 0.5% Sigma-Aldrich 49621
Tryptophan 50μg/ml Sigma-Aldrich T0254
Phenylalanine 50μg/ml Sigma-Aldrich P2126
Cell fixation Paraformaldehyde Roth 0335
Name of the equipment Company Catalog number
Sonication Cell Sonicator Bandelin D-1000
Fluorescence Microscopy Fluorescence Microscope Leica DMI6000B
Name of the software Company Catalog Number
Fluorescence Microscopy AsaF Leica
Flow cytometry FCASDiva BD
Flow cytometry FlowJo Treestar

Riferimenti

  1. Costerton, J. W. Overview of microbial biofilms. J. Ind. Microbiol. 15, 137-140 (1995).
  2. Davey, M. E., O’Toole, G. A. Microbial biofilms: from ecology to molecular genetics. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 64, 847-867 (2000).
  3. Kolenbrander, P. E. Oral microbial communities: biofilms, interactions, and genetic systems. Annu. Rev. Microbiol. 54, 413-437 (2000).
  4. O’Toole, G., Kaplan, H. B., Kolter, R. Biofilm formation as microbial development. Annu. Rev. Microbiol. 54, 49-79 (2000).
  5. Donlan, R. M. Biofilms: microbial life on surfaces. Emerg. Infect. Dis. 8, 881-890 (2002).
  6. Lopez, D., Vlamakis, H., Kolter, R. Biofilms. Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 2, a000398-a000398 (2010).
  7. Branda, S. S., Vik, S., Friedman, L., Kolter, R. Biofilms: the matrix revisited. Trends Microbiol. 13, 20-26 (2005).
  8. Branda, S. S., Chu, F., Kearns, D. B., Losick, R., Kolter, R. A major protein component of the Bacillus subtilis biofilm matrix. Mol. Microbiol. 59, 1229-1238 (2006).
  9. Latasa, C., Solano, C., Penades, J. R., Lasa, I. Biofilm-associated proteins. C. R. Biol. 329, 849-857 (2006).
  10. O’Gara, J. P. ica and beyond: biofilm mechanisms and regulation in Staphylococcus epidermidis and Staphylococcus aureus. FEMS Microbiol Lett. 270, 179-188 (2007).
  11. Chai, Y., Chu, F., Kolter, R., Losick, R. Bistability and biofilm formation in Bacillus subtilis. Mol. Microbiol. 67, 254-263 (2008).
  12. Chen, R., Guttenplan, S. B., Blair, K. M., Kearns, D. B. Role of the sigmaD-dependent autolysins in Bacillus subtilis population heterogeneity. J. Bacteriol. 191, 5775-5784 (2009).
  13. Guttenplan, S. B., Blair, K. M., Kearns, D. B. The EpsE flagellar clutch is bifunctional and synergizes with EPS biosynthesis to promote Bacillus subtilis biofilm formation. PLoS Genet. 6, e1001243-e1001243 (2010).
  14. Kearns, D. B., Losick, R. Cell population heterogeneity during growth of Bacillus subtilis. Genes Dev. 19, 3083-3094 (2005).
  15. Lopez, D., Vlamakis, H., Losick, R., Kolter, R. Paracrine signaling in a bacterium. Genes Dev. 23, 1631-1638 (2009).
  16. Veening, J. W., Smits, W. K., Hamoen, L. W., Jongbloed, J. D., Kuipers, O. P. Visualization of differential gene expression by improved cyan fluorescent protein and yellow fluorescent protein production in Bacillus subtilis. Appl. Environ. Microbiol. 70, 6809-6815 (2004).
  17. Veening, J. W., Smits, W. K., Hamoen, L. W., Kuipers, O. P. Single cell analysis of gene expression patterns of competence development and initiation of sporulation in Bacillus subtilis grown on chemically defined media. J. Appl. Microbiol. 101, 531-541 (2006).
  18. Veening, J. W., Kuipers, O. P., Brul, S., Hellingwerf, K. J., Kort, R. Effects of phosphorelay perturbations on architecture, sporulation, and spore resistance in biofilms of Bacillus subtilis. J. Bacteriol. 188, 3099-3109 (2006).
  19. Vlamakis, H., Aguilar, C., Losick, R., Kolter, R. Control of cell fate by the formation of an architecturally complex bacterial community. Genes Dev. 22, 945-953 (2008).
  20. Stewart, P. S., Franklin, M. J. Physiological heterogeneity in biofilms. Nat. Rev. Microbiol. 6, 199-210 (2008).
  21. Veening, J. W., Smits, W. K., Kuipers, O. P. Bistability, epigenetics, and bet-hedging in bacteria. Annu. Rev. Microbiol. 62, 193-210 (2008).
  22. Aguilar, C., Vlamakis, H., Guzman, A., Losick, R., Kolter, R. KinD is a checkpoint protein linking spore formation to extracellular-matrix production in Bacillus subtilis biofilms. MBio. 1, (2010).
  23. Lopez, D., Fischbach, M. A., Chu, F., Losick, R., Kolter, R. Structurally diverse natural products that cause potassium leakage trigger multicellularity in Bacillus subtilis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 280-285 (2009).
  24. Lopez, D., Vlamakis, H., Losick, R., Kolter, R. Cannibalism enhances biofilm development in Bacillus subtilis. Mol. Microbiol. 74, 609-618 (2009).
  25. Arima, K., Kakinuma, A., Tamura, G. Surfactin, a crystalline peptidelipid surfactant produced by Bacillus subtilis: isolation, characterization and its inhibition of fibrin clot formation. Biochem. Biophys. Res. Commun. 31, 488-494 (1968).
  26. Romero, D., Vlamakis, H., Losick, R., Kolter, R. An accessory protein required for anchoring and assembly of amyloid fibres in B. subtilis biofilms. Mol. Microbiol. 80, 1155-1168 (2011).
  27. Hardwood, C. R., Cutting, S. M. . Molecular Biological Methods for Bacillus. , (1990).
  28. Novick, R. P. Genetic systems in staphylococci. Methods Enzymol. 204, 587-636 (1991).
  29. Yasbin, R. E., Young, F. E. Transduction in Bacillus subtilis by bacteriophage SPP1. J. Virol. 14, 1343-1348 (1974).
  30. Branda, S. S., Gonzalez-Pastor, J. E., Ben-Yehuda, S., Losick, R., Kolter, R. Fruiting body formation by Bacillus subtilis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 98, 11621-11626 (2001).
  31. Nakano, M. M. srfA is an operon required for surfactin production, competence development, and efficient sporulation in Bacillus subtilis. J. Bacteriol. 173, 1770-1778 (1991).
  32. Gonzalez-Pastor, J. E., Hobbs, E. C., Losick, R. Cannibalism by sporulating bacteria. Science. 301, 510-513 (2003).
  33. Aguilar, C., Vlamakis, H., Losick, R., Kolter, R. Thinking about Bacillus subtilis as a multicellular organism. Curr. Opin. Microbiol. 10, 638-643 (2007).
  34. Shapiro, J. A. Thinking about bacterial populations as multicellular organisms. Annu. Rev. Microbiol. 52, 81-104 (1998).

Play Video

Citazione di questo articolo
Garcia-Betancur, J. C., Yepes, A., Schneider, J., Lopez, D. Single-cell Analysis of Bacillus subtilis Biofilms Using Fluorescence Microscopy and Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (60), e3796, doi:10.3791/3796 (2012).

View Video