Summary

分離するために遺伝学的スクリーニングトキソプラズマホストセル出口変異体

Published: February 08, 2012
doi:

Summary

フォワード遺伝学はどのように分子レベルで解明するための強力な方法です<em>トキソプラズマ</em>その宿主細胞から出力する。プロトコルは化学的に寄生虫を突然変異を起こさせるために提供され、誘導される出口の欠陥を持つ変異体を濃縮し、クローニングした変異体の表現型を検証します。

Abstract

広く、偏性細胞内、原虫寄生虫トキソプラズマ原虫は、免疫不全患者に日和見疾患を引き起こす先天性感染症に先天性欠損症を引き起こす。 1:溶菌複製サイクルは3つの段階によって特徴づけられる。核宿主細胞の積極的な侵攻2。宿主細胞内で複製、3。宿主細胞からのアクティブな出口。出口のメカニズムは、ますますまだ不十分分子レベルで理解されている、ユニークで高度に調節されたプロセスとして、高く評価されています。出口の根底にあるシグナル伝達経路は、経路1-5のさまざまな側面に作用する薬剤の使用によって特徴づけられている。このように、出口のいくつかの独立したトリガーはすべての細胞内Ca 2 +、また、宿主細胞の浸潤6-8重要である信号のリリースに収束するが同定されている。この洞察は、識別子につながった候補遺伝子アプローチを通知出口9に関与するカルシウム依存性プロテインキナーゼ(CDPK)のような植物のfication。さらに、理解の出口における最近のいくつかのブレークスルーが(化学)遺伝的アプローチを10-12を使用して行われています。 トキソプラズマの増加遺伝アクセシビリティと薬理学の豊富な情報を結合するために我々は最近、宿主細胞の出口13の欠陥を持つ寄生虫変異体の濃縮を可能にする画面を設立しました。 N-エチル-N-ニトロソウレア(ENU)またはエチルメタンスルホネート(EMS)を使用して、化学的突然変異誘発はトキソプラズマ生物学11,14,15の研究に何十年も使用されているが、ごく最近の基礎となる突然変異の遺伝子マッピングを持つ表現型は、ルーチン16になる-18。さらに、温度​​感受性変異体を生成することにより、本質的なプロセスは、解剖することができ、基礎となる遺伝子が直接識別されます。これらの変異体は、許容温度(35℃)下で野生型として動作するが、pに失敗する問題の突然変異の結果として、制限温度(40℃)でroliferate。ここでは、温度に敏感な出力表現型13に突然変異体を単離するための新たな表現型のスクリーニング方法を示しています。出力画面の課題は、宿主細胞に寄生虫の再侵攻、高速かつ一般的な粘りによって複雑にされた非egressed寄生虫からegressed分離することである。以前に確立された出力画面は、細胞外寄生体11から細胞を分離するビオチン化手順の面倒なシリーズに基づいていた。また、このメソッドは、弱い表現型の結果、条件付き変異体を生成しませんでした。ここで説明する方法は、宿主細胞19に付着する寄生虫を防ぐことが糖鎖のライバル、デキストラン硫酸(DS)を含めることによって寄生虫をegressingの強い愛着を克服しています。また、細胞外寄生体は、特に細胞内寄生体を残しピロリジンジチオカルバメート(PDTC)でオフに殺される20無傷。したがって、具体的に誘発される出口の欠陥で寄生虫の変異体を単離するための新たな表現型の画面で、遺伝学の力は完全に宿主細胞の出口の根底にある分子メカニズムを解明するために展開することができます。

Protocol

概要プロトコルは、最初の寄生虫の70%の殺害(プロトコル1)につながる変異原の投与量を定義するために提供されています。次の手順は、突然変異寄生虫プール(プロトコル2、図2)から誘導される出口の変異体を豊かにするために提供されます。これは、濃縮されたプールで出口の変異体の発生率をテストするためのプロトコルが続いている、または個々の変異体(プ?…

Discussion

記述されているプロトコルは、出口の欠陥とはトキソプラズマの変異体を単離するための効率的な方法を提供する。デュアル侵略の表現13を持っているそのうちのいくつかは我々が正常に、出力経路の様々なステップに沿って変異体を単離した。侵略の潜在的な影響は、差動抗体染色23,24によって非侵略寄生虫から侵入区別いわゆる赤緑のアッセイを用いて決定す?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作品は、米国心臓協会の科学者は開発グラント0635480Nと健康研究助成金AI081220の国民の協会によって資金を供給された。 BICは、テンプル騎士団アイ財団研究助成金によってサポートされています。

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
ENU Sigma-Aldrich N3385 1 M Stock in DMSO, store at -20°C
EMS Sigma-Aldrich M0880 1 M Stock in DMSO, store at -20°C
Dextran Sulfate Sigma-Aldrich D4911  
PDTC Sigma-Aldrich P8765 100 mM Stock in PBS
Diff Quick EMD Chemicals 65044-93  
Filter holder Cole-Parmer 540100  
3 μm polycarbonate filter Whatman Schleicher & Schuell 110612  
Hemocytometer Hausser Scientific 1475  
CO2 incubators Various manufacturers   Humidified, 5% CO2, at 35, 37 and 40°C
Fluorescence microscope Various manufacturers   Ideally inverted, wide-field with 63x or 100x oil objective

HBSSc (according to Black et al.11):

  • 98.0 ml Hanks Balanced Salt Solution (Hyclone catalog number SH30588)
  • 100 μl 1M MgCl2 (100 mM end)
  • 100 μl 1M CaCl2 (100 mM end)
  • 2.0 ml 1M Hepes pH 7.3 (20 mM end)
  • 84 mg NaHCO3 (10 mM end)

Riferimenti

  1. Carruthers, V. B., Moreno, S. N., Sibley, L. D. Ethanol and acetaldehyde elevate intracellular [Ca2+] and stimulate microneme discharge in Toxoplasma gondii. Biochem. J. 342 (Pt 2), 379-386 (1999).
  2. Moudy, R., Manning, T. J., Beckers, C. J. The loss of cytoplasmic potassium upon host cell breakdown triggers egress of Toxoplasma gondii. J. Biol. Chem. 276 (44), 41492-41501 (2001).
  3. Silverman, J. A. Induced activation of the Toxoplasma gondii nucleoside triphosphate hydrolase leads to depletion of host cell ATP levels and rapid exit of intracellular parasites from infected cells. J. Biol. Chem. 273 (20), 12352-12359 (1998).
  4. Stommel, E. W., Ely, K. H., Schwartzman, J. D., Kasper, L. H. Toxoplasma gondii: dithiol-induced Ca2+ flux causes egress of parasites from the parasitophorous vacuole. Exp. Parasitol. 87 (2), 88-97 (1997).
  5. Fruth, I. A., Arrizabalaga, G. Toxoplasma gondii: induction of egress by the potassium ionophore nigericin. Int. J. Parasitol. 37 (14), 1559-1567 (2007).
  6. Endo, T., Sethi, K. K., Piekarski, G. Toxoplasma gondii: calcium ionophore A23187-mediated exit of trophozoites from infected murine macrophages. Exp. Parasitol. 53 (2), 179-188 (1982).
  7. Hoff, E. F., Carruthers, V. B. Is Toxoplasma egress the first step in invasion. Trends Parasitol. 18 (6), 251-255 (2002).
  8. Wetzel, D. M., Chen, L. A., Ruiz, F. A., Moreno, S. N., Sibley, L. D. Calcium-mediated protein secretion potentiates motility in Toxoplasma gondii. J. Cell. Sci. 117 (Pt 24), 5739-5748 (2004).
  9. Lourido, S. Calcium-dependent protein kinase 1 is an essential regulator of exocytosis in Toxoplasma. Nature. 465 (7296), 359-362 (2010).
  10. Arrizabalaga, G., Ruiz, F., Moreno, S., Boothroyd, J. C. Ionophore-resistant mutant of Toxoplasma gondii reveals involvement of a sodium/hydrogen exchanger in calcium regulation. J. Cell. Biol. 165 (5), 653-662 (2004).
  11. Black, M. W., Arrizabalaga, G., Boothroyd, J. C. Ionophore-resistant mutants of Toxoplasma gondii reveal host cell permeabilization as an early event in egress. Mol. Cell. Biol. 20 (24), 9399-9408 (2000).
  12. Chandramohanadas, R. Apicomplexan Parasites Co-Opt Host Calpains to Facilitate Their Escape from Infected Cells. Science. , (2009).
  13. Eidell, K. P., Burke, T., Gubbels, M. J. Development of a screen to dissect Toxoplasma gondii egress. Mol. Biochem. Parasitol. 171 (2), 97-103 (2010).
  14. Pfefferkorn, E. R., Pfefferkorn, L. C. Toxoplasma gondii: isolation and preliminary characterization of temperature-sensitive mutants. Exp. Parasitol. 39 (3), 365-376 (1976).
  15. Pfefferkorn, E. R., Schwartzman, J. D., Kasper, L. H. Toxoplasma gondii: use of mutants to study the host-parasite relationship. Ciba. Found. Symp. 99, 74-91 (1983).
  16. Striepen, B. Genetic complementation in apicomplexan parasites. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 99 (9), 6304-6309 (2002).
  17. White, M. W. Genetic rescue of a Toxoplasma gondii conditional cell cycle mutant. Mol. Microbiol. 55 (4), 1060-1071 (2005).
  18. Gubbels, M. J. Forward Genetic Analysis of the Apicomplexan Cell Division Cycle in Toxoplasma gondii. PLoS Pathog. 4 (2), e36-e36 (2008).
  19. Carruthers, V. B., Hakansson, S., Giddings, O. K., Sibley, L. D. Toxoplasma gondii uses sulfated proteoglycans for substrate and host cell attachment. Infect. Immun. 68 (7), 4005-4011 (2000).
  20. Camps, M., Boothroyd, J. C. Toxoplasma gondii: selective killing of extracellular parasites by oxidation using pyrrolidine dithiocarbamate. Exp. Parasitol. 98 (4), 206-214 (2001).
  21. Roos, D. S., Donald, R. G., Morrissette, N. S., Moulton, A. L. Molecular tools for genetic dissection of the protozoan parasite Toxoplasma gondii. Methods Cell Biol. 45, 27-63 (1994).
  22. Gubbels, M. J., Li, C., Striepen, B. High-throughput growth assay for Toxoplasma gondii using yellow fluorescent protein. Antimicrob. Agents Chemother. 47 (1), 309-316 (2003).
  23. Carey, K. L., Westwood, N. J., Mitchison, T. J., Ward, G. E. A small-molecule approach to studying invasive mechanisms of Toxoplasma gondii. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 101 (19), 7433-7438 (2004).
  24. Kafsack, B. F., Carruthers, V. B., Pineda, F. J. Kinetic modeling of Toxoplasma gondii invasion. J. Theor. Biol. 249 (4), 817-825 (2007).
  25. Hanash, S. M., Boehnke, M., Chu, E. H., Neel, J. V., Kuick, R. D. Nonrandom distribution of structural mutants in ethylnitrosourea-treated cultured human lymphoblastoid cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 85 (1), 165-169 (1988).
  26. Kafsack, B. F. Rapid membrane disruption by a perforin-like protein facilitates parasite exit from host cells. Science. 323 (5913), 530-533 (2009).
  27. Lovett, J. L., Marchesini, N., Moreno, S. N., Sibley, L. D. Toxoplasma gondii microneme secretion involves intracellular Ca(2+) release from inositol 1,4,5-triphosphate (IP(3))/ryanodine-sensitive stores. J. Biol. Chem. 277 (29), 25870-25876 (2002).
  28. Nagamune, K. Abscisic acid controls calcium-dependent egress and development in Toxoplasma gondii. Nature. 451 (7175), 207-210 (2008).
  29. Tomita, T., Yamada, T., Weiss, L. M., Orlofsky, A. Externally triggered egress is the major fate of Toxoplasma gondii during acute infection. J. Immunol. 183 (10), 6667-6680 (2009).
  30. Persson, E. K. Death receptor ligation or exposure to perforin trigger rapid egress of the intracellular parasite Toxoplasma gondii. J. Immunol. 179 (12), 8357-8365 (2007).
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Citazione di questo articolo
Coleman, B. I., Gubbels, M. A Genetic Screen to Isolate Toxoplasma gondii Host-cell Egress Mutants. J. Vis. Exp. (60), e3807, doi:10.3791/3807 (2012).

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