Summary

Luktämne-inducerade svar in från luktreceptorceller Nervceller användning av tekniken Sug Pipettera

Published: April 05, 2012
doi:

Summary

Luktreceptorceller neuroner (Örns) omvandlar lukt signaler först till en receptor ström som i sin tur utlöser aktionspotentialer som förmedlas till andra ordningens neuron i luktbulben. Här beskriver vi tekniken sug pipett för att spela in samtidigt luktämnen-inducerad receptor ström och potentialer åtgärder från mus Örns.

Abstract

Djur prov på illaluktande miljön omkring dem genom chemosensory system som finns i näshålan. Chemosensory signaler påverkar komplexa beteenden såsom mat val, rovdjur, conspecific och mate erkännande och andra socialt relevanta ledtrådar. Luktreceptorceller neuroner (Örns) ligger i den dorsala delen av näshålan inbäddad i luktepitel. Dessa bipolära nervceller skickar ett axon till luktloben (se Fig. 1, Reisert & Zhao 1, ursprungligen publicerad i Journal of General Physiology) och utöka en enda dendrit till epiteliala gränsen där Cilia stråla in i slem som täcker lukt epitel. Flimmerhåren innehåller maskinen signaltransduktion som slutligen leder till excitatoriska nuvarande inflöde genom ciliära transduktion kanaler, en cyklisk nukleotid-gated (CNG) kanal och en Ca 2 +-aktiverad CL kanal (bild 1). Den påföljande depolarization triggar aktionspotentialen generationen på cellkroppen 2-4.

I den här videon beskriver vi användningen av "sug pipett teknik" för att spela in luktämne-inducerade svar från Örns. Denna metod utvecklades ursprungligen för att spela in från spö fotoreceptorer 5 och en variant av denna metod kan hittas på jove.com modifierats för att spela in från fotoreceptorer mus kon 6. Sug pipett Tekniken anpassades senare att även spela in från Örns 7,8. Kortfattat, efter dissociation av luktepitel och cellisolering, är hela cellkroppen av en ORN sugs in i spetsen av en inspelning pipett. Den dendrit och flimmerhåren förblir exponerade till badlösningen och därmed tillgänglig för lösning ändras för att möjliggöra t.ex. luktämne eller farmakologisk blockerare applikation. I denna konfiguration är ingen tillgång till den intracellulära miljön fått (ingen hel-cellspänning klämma) och den intracellulära spänningen förblir fri att variera. Detta alltows samtidig inspelning av den långsamma receptorn ström som har sitt ursprung i flimmerhåren och snabba potentialer åtgärder eldas med cellkroppen 9. Skillnaden i kinetik mellan dessa två signaler medger att de kan separeras med användning av olika filter inställningar. Denna teknik kan användas på alla vildtyp eller knockout-mus eller att spela selektivt från Örns som också uttrycker GFP att märka specifika undergrupper av Örns, t.ex. uttrycker en given luktreceptor eller jonkanal.

Protocol

1. Inspelning Inställning Inspelningen kammaren monterad på en Nikon Eclipse TE2000U inverterat mikroskop med faskontrastoptik som är monterad på ett luftbord och elektriskt skärmade med användning av en Faraday-bur. Den Plexiglas inspelning kammare består av två sektioner delvis separerade av en barriär och limmas på en silaniserat objektglas. En del av kammaren används för att reglera cellerna medan den andra används för stimulus-exponering under inspelningen för att minimera …

Discussion

<p class="jove_content"> Sug pipett tekniken är en elektrofysiologisk metod som används för att registrera lukten-inducerade långsam receptor nuvarande och snabba bifasiska potentialer åtgärder från en ORN samtidigt. Eftersom plasmamembranet i cellen inte brutit lämnar denna metod den intracellulära miljön ostörd säkerställa att odorant svaren inte ändras på grund av förändringar i de cytoplasmiska jonkoncentrationer eller utspädning av intracellulära faktorer. Celler kan spelas in från för långa löptider (upp till 4 t…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av NIH DC009613, Human Frontiers Science Program och Morley Care Fellowship (till JR).

Materials

Name of the material Tipo Company Catalogue /
Model number
Comments
Air table equipment Newport
Air Pump equipment Newport ACGP
Pipette Puller equipment Sutter P-97
Borosilicate glass equipment WPI 1B150-4
Nikon Eclipse Inverted microscope equipment Nikon TE2000U Equipped with Hg lamp, GFP filter and objectives 20X and 5X at least
Amplifier PC-501A equipment Warner 64-0008 Headstage 1 GΩ
Diamond knife Equipment Custom-made
Digitizer Mikro1401 A/D equipment Cambridge Electronic Design
Filter unit 3382 equipment Krohn Hite corporation
Signal software Cambridge Electronic Design
Molded Ag/AgCl Pellet equipment WPI 64-1297
Pipette holder equipment Warner 64-0997 Custom modified to fit
headstage
Recording chamber Equipment Custom-made
Micromanipulator
MP85-1028
equipment Sutter Instrument Micromanipulator
MP85-1028
Mineral oil Solution Sigma 330779-1L
Oscilloscope TDS 1001 equipment Tektronix
Three-barreled square glass tube Equipment Warner 64-0119 0.6 mm ID , 5 cm long
Valve equipment The Lee Company
Valvelink 8.2 equipment Automate Scientific
SF-77B Perfusion fast step equipment Warner

Riferimenti

  1. Reisert, J., Zhao, H. Perspectives on: Information and coding in mammalian sensory physiology: Response kinetics of olfactory receptor neurons and the implications in olfactory coding. J. Gen. Physiol. 138, 303-310 (2011).
  2. Kaupp, U. B. Olfactory signalling in vertebrates and insects: differences and commonalities. Nat. Rev. Neurosci. 11, 188-200 (2010).
  3. Tirindelli, R., Dibattista, M., Pifferi, S., Menini, A. From pheromones to behavior. Physiol. Rev. 89, 921-956 (2009).
  4. Kleene, S. J. The electrochemical basis of odor transduction in vertebrate olfactory cilia. Chem. Senses. 33, 839-859 (2008).
  5. Baylor, D. A., Lamb, T. D., Yau, K. W. Responses of retinal rods to single photons. J. Physiol. 288, 613-634 (1979).
  6. Wang, J., Kefalov, V. J. Single-cell Suction Recordings from Mouse Cone Photoreceptors. J. Vis. Exp. (35), e1681 (2010).
  7. Lowe, G., Gold, G. H. The spatial distributions of odorant sensitivity and odorant-induced currents in salamander olfactory receptor cells. J. Physiol. 442, 147-168 (1991).
  8. Reisert, J., Matthews, H. R. Na+-dependent Ca2+ extrusion governs response recovery in frog olfactory receptor cells. J. Gen. Physiol. 112, 529-535 (1998).
  9. Reisert, J., Matthews, H. R. Adaptation of the odour-induced response in frog olfactory receptor cells. J. Physiol. 519, 801-813 (1999).
  10. Matthews, H. R. A compact modular flow heater for the superfusion of mammalian cells. J. Physiol. 518P, 13 (1999).
  11. Reisert, J., Matthews, H. R. Simultaneous recording of receptor current and intraciliary Ca2+ concentration in salamander olfactory receptor cells. J. Physiol. 535, 637-645 (2001).
check_url/it/3862?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Ponissery Saidu, S., Dibattista, M., Matthews, H. R., Reisert, J. Odorant-induced Responses Recorded from Olfactory Receptor Neurons using the Suction Pipette Technique. J. Vis. Exp. (62), e3862, doi:10.3791/3862 (2012).

View Video