Summary

El uso de la cistometría en pequeños roedores: un estudio de la vejiga chemosensation

Published: August 21, 2012
doi:

Summary

Cystometry es una técnica eficaz para medir la función de la vejiga de animales pequeños<em> In vivo</em>. La vejiga se infundió continuamente a velocidades controladas a través de un catéter intravesical, mientras que la uretra se deja libre para la micción. Esto permite repetitivo de llenado y vaciado de la vejiga, mientras que la presión intravesical y volumen evacuado se registran.

Abstract

<p class="jove_content"> Las tracto urinario inferior (LUT) funciona como un depósito dinámico que es capaz de almacenar la orina y para expulsar eficientemente que en un momento conveniente. Mientras que el almacenamiento de orina, sin embargo, la vejiga está expuesto durante períodos prolongados a los productos de desecho. Al actuar como una barrera apretado, el revestimiento epitelial de la LUT, el urotelio, evita la re-absorción de sustancias nocivas. Además, los productos químicos nocivos estimular inervación nociceptiva de la vejiga e iniciar la micción contracciones que expulsan los contenidos de la vejiga. Curiosamente, la sensibilidad de la vejiga para los productos químicos nocivos se ha utilizado con éxito en la práctica clínica, por vía intravesical infusión de la capsaicina TRPV1 agonista para tratar la hiperactividad de la vejiga neurogénica<sup> 1</sup>. Esto pone de relieve la ventaja de ver la vejiga como un órgano quimiosensorial y solicita investigación clínica adicional. Sin embargo, las cuestiones éticas limitan seriamente las posibilidades de llevar a cabo, en el ser humano, las mediciones invasivas que son necesarios para desentrañar las bases moleculares de la farmacología clínica LUT. Una manera de superar esta limitación es el uso de varios modelos animales<sup> 2</sup>. Aquí se describe la aplicación de la cistometría en ratas y ratones, una técnica que permite la medición de la presión intravesical en condiciones de perfusión vejiga controlada.</p><p class="jove_content"> Después de la laparotomía, un catéter se implanta en la cúpula de la vejiga y subcutáneamente en la región interescapular. A continuación, la vejiga puede ser llenado a una velocidad controlada, mientras que la uretra se deja libre para la micción. Durante los ciclos repetitivos de llenado y vaciado, la presión intravesical se puede medir a través del catéter implantado. Como tal, los cambios de presión pueden ser cuantificados y analizados. Además, la medición simultánea del volumen miccional permite distinguir contracciones de vaciado de no miccionales contracciones<sup> 3</sup>.</p><p class="jove_content"> Es importante destacar que, debido a las diferencias en el control de la micción entre roedores y humanos, las mediciones cistométricos en estos animales tienen sólo un valor limitado traslacional<sup> 4</sup>. Sin embargo, son bastante instrumental en el estudio de la fisiopatología de la vejiga y de la farmacología experimental en pre-clínicos configuración. Investigaciones recientes utilizando esta técnica ha puesto de manifiesto el papel clave de los nuevos jugadores moleculares en las propiedades mecano-y quimio-sensoriales de la vejiga.</p>

Protocol

1. Animales de Laboratorio Los animales (ratones, ratas) están alojados en una instalación de animales especializada con un 12-horas de luz-oscuridad ciclo y el acceso ad libitum al agua y pastillas estándar de alimentos. Tanto la edad y el sexo de los animales son parámetros importantes que deben ser estandarizados de acuerdo con las necesidades. Nos suelen realizar cistometría en 10 a 12 semanas de edad, las hembras 5,6. Todos los experimentos con animales se realicen de c…

Discussion

La técnica de la cistometría aquí se presenta permite realizar mediciones in vivo de la función vesical en modelos animales. Las ratas son probablemente el modelo animal más utilizado. Los ratones son más difíciles de manejar, pero ofrecen la ventaja de la utilización de animales manipulados genéticamente. Debido a la dificultad técnica de la utilización de ratones conscientes, que tienden a ser muy activo dando como resultado el aflojamiento del catéter implantado y los cambios en las presiones int…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por subvenciones del Gobierno federal belga (IUAP P6/28), la Fundación de Investigación de Flandes (FWO) (G.0565.07 y G.0686.09), la Astellas European Foundation Award 2009 y el Consejo de Investigación de la KU Leuven (GOA 2009/07, EF/95/010 y PFV/10/006). PU y NOSOTROS somos los estudiantes de doctorado de la Fundación de Investigación de Flandes (FWO). MB es una beca Marie Curie. DDR un compañero fundamental-clínica de la FWO.

Materials

Name of the reagent Commercial name, company, Catalogue number Comments
urethane Urethane, Sigma-Aldrich 315419 group 2B carcinogen
isoflurane Isoba, Schering-Plough Animal Health    
polyethylene catheter Intramedic Polyethylene tubing PE50, Becton Dickinson 427411  
surgical microscope Op-Mi 6, Carl Zeiss Op-Mi 6  
purse-string suture Prolene 6/0, Ethicon 8610H  
fascia and skin suture Ethilon 4/0 or 5/0, Ethicon 662G or 661G  
postoperative analgesics Temgesic, Schering-Plough Animal Health   dosage for rats: 0.05 mg/kg
amplifier 78534c monitor, Hewlett Packard    
analytical balances and balance data acquisition software FZ 300i, A&D FZ-300i  
infusion pumps pump 33, Harvard apparatus HA33  
cystometry recording system Dataq instruments, DI-730 series and Windaq/Lite DI-730-USB Windaq/Lite  
temperature registration Fluke 52 KJ thermometer 52 KJ  
pressure transducers Edwards Lifesciences, pressure monitoring set T322247A  

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Uvin, P., Everaerts, W., Pinto, S., Alpízar, Y. A., Boudes, M., Gevaert, T., Voets, T., Nilius, B., Talavera, K., De Ridder, D. The Use of Cystometry in Small Rodents: A Study of Bladder Chemosensation. J. Vis. Exp. (66), e3869, doi:10.3791/3869 (2012).

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