Summary

Protocolo de Coleta para Pâncreas Humano

Published: May 23, 2012
doi:

Summary

Este vídeo demonstra um processo para o processamento de dissecção pâncreas humano em formatos de armazenamento. Orientação anatómica é mantida ao longo das regiões pancreáticas para permitir a definição da composição de ilhotas regional e densidade.

Abstract

Esta dissecção e procedimento de amostragem foi desenvolvido para a Rede de Doadores de Órgãos do pâncreas com Diabetes programa (nPOD) para padronizar a preparação do pâncreas recuperado de doadores de órgãos cadáveres. O pâncreas é dividido em 3 regiões principais (cabeça, corpo, cauda), seguido por seriados transversais ao longo do eixo medial para lateral. Secções alternadas são utilizados para parafina fixo e blocos congelados frescos e amostras remanescentes são picados para encaixe preparações amostra congelada, com ou sem inibidores de RNAse, por DNA, RNA, ou o isolamento de proteínas. O objetivo geral do procedimento de dissecção pâncreas é para provar o pâncreas inteiro, mantendo a orientação anatômica.

Heterogeneidade endócrino célula em termos de composição ilhéu, tamanho e número é relatado para ilhotas humanos em comparação com ilhotas de roedores 1. A maioria dos ilhéus humanos a partir da cabeça do pâncreas, regiões do corpo e da cauda são compostos de insulina containin-g beta-células seguido por proporções inferiores de glucagon contendo ct-células e somatostatina-ô-contendo células. Células pancreáticas polipeptídeo contendo PP e células que contêm grelina epsilon também estão presentes, mas em pequenas quantidades. Em contraste, a região uncinado contém ilhotas que são principalmente compostas por células pancreáticas polipéptido contendo 2 pp. Essas variações regionais ilhotas surgem diferenças de desenvolvimento. O pâncreas desenvolve a partir das gemas pancreáticas ventral e dorsal no estômago e depois da rotação do estômago e do duodeno, os movimentos do lóbulo ventral e os fusíveis com o 3 dorsal. O lóbulo ventral forma a porção posterior da cabeça, incluindo o processo uncinado enquanto o lobo dorsal dá origem ao resto do órgão. Variação de pâncreas Regional também é relatado com a região da cauda com maior densidade de ilhota em comparação com outras regiões e os dorsais lobo derivados componentes submetidos a atrofia seletiva na diabetes tipo 1 <saté> 4,5.

Órgãos, tecidos e muitas vezes são recuperadas a partir dos doadores de órgãos e incluir nós pancreáticas linfáticos, baço e gânglios linfáticos não-pancreáticas. Estas amostras são recuperados com os formatos similares às utilizadas para o pâncreas com a adição de isolamento de células criopreservadas. Quando o duodeno proximal está incluído com o pâncreas, mucosa duodenal pode ser recolhida para parafina e congeladas blocos e preparações instantâneas picados congelados.

Protocol

1. Set-up Cassetes de etiquetas para blocos de parafina manualmente com um lápis, ou automaticamente com uma impressora cassete. Incluir o identificador do doador (CaseID), tipo de amostra, o número de alíquota, e qualquer identificação adicional única (planilha Case, Anexo 1 ). Rotular moldes Oct como para cassetes com um marcador permanente. Corte retângulos de 5-10 cm de papel alumínio. Imprima…

Discussion

O objectivo deste procedimento é definir um processamento pâncreas padrão que pode ser harmonizadas entre os locais de recolha múltiplas e, assim, permitir a comparação dos resultados obtidos por diferentes grupos. O método de dissecção é baseada no padrão cirúrgicos práticas patologia com passos adicionais para anotação das regiões mais importantes do pâncreas seguido por intra-regionais subdivisões. Padronização de métodos de processamento biospecimen é necessário para facilitar a recolha de amo…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Os autores agradecem as famílias dos doadores e as Organizações de Procura de Órgãos envolvidos na pesquisa e Martino Maria e Irina Kusmartseva para a sua assistência especializada. Este trabalho foi financiado pela Juvenile Diabetes Research Foundation (MC-T., MA), em apoio da Rede de Doadores de Órgãos do pâncreas com Diabetes.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Dissection instruments including scalpels with 22 blades Various Various  
Centrifuge tubes (15 and 50 ml) Fisher Scientific 05-539-5, 430828 Sterile
Cryotubes(1.8 ml) VWR North America 89004-300 Sterile, bar codes optional
RNAlater Ambion AM7021  
Surgical Pathology Ink      
Cassettes Mercedes Medical CAS ECO109  
10% Neutral Buffered Formalin Fisher Scientific 23-245-685  
OCT Freezing Media TissueTek 4583  
Molds ThermoScientific 58952 Various sizes
Isopentane Fisher Scientific O3551-4 OCT chilling bath
Dry ice     OCT chilling bath
Liquid nitrogen in Dewar flask     Snap freezing cryovials
Cell culture dish (100mm) Corning 430167 Sterile
Hyclone DMEF ThermoScientific SH30023.01 Sterile, store refrigerated, glutamine included
Fetal Bovine Serum Cellgro 35-010-CV Sterile, store frozen aliquots
Penicillin/Streptomycin/Antifungal GIBCO 15240-062 Sterile, store frozen aliquots
Type 9 Paraffin Richard-Allan Scientific 8337  
1X D-PBS GIBCO 14190-144 Sterile
16% Paraformaldehyde EM Sciences 15710 Make fresh, store refrigerated
8% Glutaraldehyde EM Sciences 16019 Make fresh, store refrigerated
Biosafety Level 2 hood Various    
Ultra-low freezer Various    
Sakura Cassette Printer Sakura    
Sakura VIP300 Sakura   Automatic paraffin processor
Paraffin Embedding Station ThermoFisher    

Table 1. Specific reagents and equipment.

Riferimenti

  1. Brissova, M. Assessment of human pancreatic islet architecture and composition by laser scanning confocal microscopy. J. Histochem. Cytochem. 53, 1087-1097 (2005).
  2. Rahier, J. The pancreatic polypeptide cells in the human pancreas: the effects of age and diabetes. J. Clin. Endocrinol. Metab. 56, 441-444 (1983).
  3. Uchida, T., Takada, T., Ammori, B. J., Suda, K., Takahashi, T. Three-dimensional reconstruction of the ventral and dorsal pancreas: a new insight into anatomy and embryonic development. J. Hepatobiliary Pancreat. Surg. 6, 176-180 (1999).
  4. Wittingen, J., Frey, C. F. Islet concentration in the head, body, tail and uncinate process of the pancreas. Ann. Surg. 179, 412-414 (1974).
  5. Rahier, J., Goebbels, R., Henquin, J. Cellular composition of the human diabetic pancreas. Diabetologia. 24, 366-371 (1983).
  6. Vaught, J. An NCI perspective on creating sustainable biospecimen resources. J. Natl. Cancer Inst. Monogr. 42, 1-7 (2011).
  7. Gianani, R. Initial results of screening of nondiabetic organ donors for expression of islet autoantibodies. J. Clin. Endocrinol. Metab. 91, 1855-1861 (2006).
  8. Tauriainen, S., Salmela, K., Rantala, I., Knip, M., Hyöty, H. Collecting high-quality pancreatic tissue for experimental study from organ donors with signs of β-cell autoimmunity. Diabetes Metab. Res. Rev. 26, 585-592 (2010).
  9. In’t Veld, P. Screening for insulitis in adult autoantibody-positive organ donors. Diabetes. 56, 2400-2404 (2007).
  10. Töns, H. A., Terpstra, O. T., Bouwman, E. Heterogeneity of human pancreata in perspective of the isolation of the islets of langerhans. Transplant Proc. 40, 367-369 (2008).
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Citazione di questo articolo
Campbell-Thompson, M. L., Montgomery, E. L., Foss, R. M., Kolheffer, K. M., Phipps, G., Schneider, L., Atkinson, M. A. Collection Protocol for Human Pancreas. J. Vis. Exp. (63), e4039, doi:10.3791/4039 (2012).

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