Summary

Analyse av encellede gentranskripsjon av RNA Fluorescent<em> In Situ</em> Hybridisering (FISH)

Published: October 07, 2012
doi:

Summary

Fluoriserende<em> In situ</em> Hybridisering (FISH) til å identifisere mRNA transkripsjoner i enkeltceller tillater analyse av polygenisk aktivitet som samtidig transkripsjon av mer enn ett medlem av<em> Var</em> Multigene familie i<em> Plasmodium falciparum</em> Infiserte erytrocytter<sup> 1</sup>. Teknikken er tilpasningsdyktig og kan brukes på forskjellige typer gener, celler og organismer.

Abstract

Heft Plasmodium falciparum infiserte erytrocytter (IE) til humane endotelceller reseptorer under malaria infeksjoner er mediert av uttrykk for PfEMP1 protein varianter kodet av VAR gener.

Den haploid P. falciparum genom havner omtrent 60 forskjellige VaR gener hvorav kun ett er antas å bli transkribert per celle om gangen under blod stadium av infeksjonen. Hvordan et slikt gjensidig utelukkende regulering av Var gentranskripsjon oppnås er uklart, er som identifisering av individuelle VAR gener eller undergrupper av Var gener assosiert med ulike reseptorer og konsekvensen av differensial binding på den kliniske utfallet av P. falciparum infeksjoner. Nylig har gjensidig utelukkende transkripsjon paradigme blitt kalt inn tvil ved transkripsjon analyser basert på individuelle P. falciparum karakterutskrift identifikasjon i ett infected erythrocytic celler ved hjelp av RNA fluorescerende in situ hybridisering (FISH) analyse av Var gentranskripsjon av parasitten i enkelte kjerner av P. falciparum IE en.

Her presenterer vi en detaljert protokoll for gjennomføring av RNA-FISH metodikk for analyse av Var gentranskripsjon i single-kjerner av P. falciparum smittet humane erytrocytter. Metoden er basert på bruk av Digoxigenin-og biotin-merket antisens RNA sonder bruker TSA Plus Fluorescence Palette System 2 (Perkin Elmer), mikroskopiske analyser og ferskt valgt P. falciparum IE. In situ hybridisering metoden kan brukes til å overvåke transkripsjon og regulering av en rekke gener som skal uttrykkes under de forskjellige stadier av P. falciparum livssyklus og er tilpasningsdyktig til andre malariaparasitten arter og andre organismer og celletyper.

Protocol

1. Generasjon Fersk Utvalgte Infiserte Erytrocytter For denne analysen, blir de beste resultater oppnådd ved bruk av ferskt utvalgte kulturer for overflate ekspresjon av PfEMP1 protein. I dette spesielle forsøket 3D7 P. falciparum avstamning ble valgt ved hjelp av spesifikke antistoffer som tidligere beskrevet 1. Dag 1 Innhøsting 200fil av pakkede blodlegemer fra en P. falciparum kultur inneholdende 2-5% sent stadium IE ved…

Representative Results

Figur 1 illustrerer et flytskjema av de store trinn og varigheten av RNA FISH metodikk. En rekke representative bilder av godt og dårlig bevarte farget mRNA FISK forsøk med én P. falciparum IE er vist i figur 2. Dette intracellulære protozo har en liten (1-1,5 mikrometer diameter) kjerne som er farget blå med DAPI. Fire tyve timer etter erytrocytt invasjon i P. falciparum prosessen schizogony, dvs. kjernefysisk inndeling, begy…

Discussion

RNA FISH analyse, i motsetning til metoder som Northern blotting og RT-PCR, tillater diskriminering av spesifikke mRNA transkripter på enkelt celle-nivå. Dette gjør det mulig å diskriminere mellom transkripsjonelt aktive og inaktive celler, i dette eksemplet, P. falciparum parasittiske protozoer inne humane røde blodceller. Slike hel-celle observasjoner er ofte nødvendig, og kan rakne viktige og romanen transkripsjonelle mønstre en.

Selv om andre RNA FISH metoder h…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å takke Michael Alifrangis og Ulla Abildtrup for genotyping av parasitter og Christina Holm for utmerket teknisk assistanse. Dette arbeidet ble finansiert av Howard Hughes Medical Institute (tilskudd 55.005.511), The Lundbeck Foundation (tilskudd R9-A840) og ved Niels Bohr Foundation.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Acetic Acid Sigma/Aldrich 338826-100ml
Albumax media: RPMI 1640 Glutamine solution Lonza BE12-115F 500 ml RPMI 1640
5 ml glutamine solution
Albumax media: Gentamycin sulphate Albumax-solution Lonza BE02-012E 2.5 ml gentamycin sulphate
50 ml Albumax-solution
Albumax-solution: Hypoxanthine Sigma-Aldrich H9377 0.8 g Hypoxanthine
Albumax-solution: AlbuMAX II Invitrogen 11021-037 200 g Albumax
Albumax-solution: RPMI 1640 Lonza BE12-115F 4 liter RPMI 1640
Dissolve with magnet at max. 50 °C. Filter sterilize and store at -20 °C in aliquots.
Amberlite Sigma A5710-110G Resin to deionize formamide.
Anti-biotin goat pAb Peroxidase Conjugate Calbiochem 203206
Anti-Dig antibody Novus biologicals NB100-41330
Anti-fade reagent with DAPI Invitrogen P36931 The mounting media has to cure for 24 hr before sealing the slide completely.
Biotin RNA Labeling Mix Roche 11685597910
Camera digital Nikon digital sight DC-F11
Coverslips Menzel-glaser 631-1570
culture flask 25 cm2 Nunclon surface Nunc 156340
DEPC Fluka/Sigma 32490-100ml 1 ml DEPC in 1000 ml deinonized water. Add a stir bar and stir for 12 hr. Autoclave for 30 min.
Digital camera Nikon digital sight DC-F11
Dynabeads Protein A Invitrogen 10002D
DynaMaq-15 Magnet Invitrogen 123-01D
Formamide bioultra 99 % Fluka/Sigma 47671-1l-F Deionized formamide: 5 g of ion exchange resin per 100 ml of formamide. Stir 30 min. Filter through Whatman paper.
Gelatine 0.75% solution: Gelatine Sigma-Aldrich G2500 3.75 g gelatine in 500 ml RPMI 1640. Heat to 56 °C to dissolve. Filter sterilize when 56 °C. Store at -20 °C in aliquots.
Gelatine 0.75% solution: RPMI 1640 Lonza BE12-115F 3.75 g gelatine in 500 ml RPMI 1640. Heat to 56 °C to dissolve. Filter sterilize when 56 °C. Store at -20 °C in aliquots.
Glutamine solution: L-glutamin Sigma-Aldrich G3126 14.6 g L glutamine in 500 ml 0.9 % NaCl. Dissolve, filter sterilize and store at -20 °C in aliquots.
Glutamine solution: HCl Sigma H1758 14.6 g L glutamine in 500 ml 0.9 % NaCl. Dissolve, filter sterilize and store at -20 °C in aliquots.
Hybridization solution: Formamide Bio ultra 99% SSC 20x Fluka/Sigma 47671-1l-F Total 20 ml, keep frozen at -20 °C in aliquots
10 ml deionized formamide
Hybridization solution: Denhardt’s 50x concentrate Sigma D2532 5 ml 20xSSC
Hybridization solution: Yeast tRNARoche blocking reagent Sigma R-6750 2 ml 50x Denhardt’s
250 μl 20 mg per ml yeast tRNA
Hybridization solution: Salmon sperm DNA Fluka/Sigma 31149-106GF 0.4 g Roche blocking reagent
1 ml of 10 mg per ml salmon sperm DNA (Critical: denature salmon spermDNA at 96 °C for 5 min before adding to the hybridization solution)
Hybridizer ThermoStar 100 HC4 Quantifoil Instruments GmbH 1004-0011 Can be replaced by hybridization oven and RNase free hybridization chambers padded with DEPC water.
Immersion oil UV transparent fluorescence free Sigma 10976-1EA
Immunofluorescence or confocal microscope Nikon D-Eclipse TE2000C
Nailpolish Available in any drugstore
PBS 20x:NaCl
KCl
Na2HPO4 x 2H2O
KH2PO4 DEPC deionized H2O
Ajust pH to 7.4
160 g
4 g
23 g
4 g
1 l
Paraformaldehyde 4 % Fluka/chemika 76240 4 g PFA in 80 ml PBS/DEPC. Heat to 65 °C until the PFA dissolves. Add 20 ml PBS, allow the solution to cool. Adjust the pH to 7.4. Filter. Store in aliquots at -20 °C.
Paraformaldehyde 4 %/ Acid acetic 5 % 950 μl paraformaldhyde + 50 μl Acetic acid
Pepsin Sigma/Aldrich P7000
Peroxidase-conjugated anti-biotin Calbiochem 203206
RBC-wash media: RPMI 1640 Glutamine solution Lonza BE12-115F 500 ml RPMI 1640 5 ml glutamine solution
RBC-wash media: Gentamycin sulfate Lonza BE02-012E 2.5 ml gentamycin sulphate
RNase Sigma/Aldrich Make a 10 mg/ml stock solution.
RNase free 1.5 ml tube Ambion AM12450
RNase Zap Ambion AM9780
Slides 4 wells 11 mm Thermo Scientific MENZXER306W
SSC 20x: NaCl Sigma/Aldrich S9625 3 M NaCl (175 g/l) 0.3M Na3 citrate x H2O (88 g/l) Adjust to pH 7.0 with 1M HCl
SSC 20x: Sodium citrate dehydrate Sigma/aldrich W302600 3 M NaCl (175 g/l) 0.3M Na3 citrate x H2O (88 g/l) Adjust to pH 7.0 with 1M HCl
SSPE 20x: NaCl Sigma/Aldrich S9625 175.3 g NaCl
SSPE 20x: NaH2PO4 Sigma/Aldrich S0751 27.6 g NaH2PO4.
SSPE 20x:4 EDTA powder 9.4 g EDTA powder
Add DEPC water, adjust pH 7.4. Autoclave for 20 min
TNB buffer: TNT buffer 10 ml TNT buffer
TNB buffer: Blocking reagent   0.05 g Blocking reagent
To dissolve the blocking reagent, heat the solution to 60 °C for one hour with stirring. Store at -20 °C. (Derived from the Perkin Elmer TSA-protocol.)
TNT buffer: Tris/HCl Sigma T1503 1M Tris/HCl, pH 8.0
TNT buffer: NaCl Sigma Aldrich S9625 100 ml
TNT buffer: Tween20 Sigma 93773 5 M NaCl 30 ml
1 ml DEPC dH2O 869 Ml
Adjust pH to 7.5 at room temperature. (Derived from the Perkin Elmer TSA-protocol.)
TSA plus Cyanine3/ Fluorescein system Perkin Elmer NEL753000IKT Read the protocol from the TSA Plus Fluorescence Palette System carefully before starting the experiment.
Tubes 14 ml sterile Almeco – CM LAB Aps 91016

Riferimenti

  1. Joergensen, L., Bengtsson, D. C., Bengtsson, A., Ronander, E., Berger, S. S., Turner, L., Dalgaard, M. B., Cham, G. K., Victor, M. E., Lavstsen, T., Theander, T. G., Arnot, D. E., Jensen, A. T. Surface co-expression of two different PfEMP1 antigens on single Plasmodium falciparum-infected erythrocytes facilitates binding to ICAM1 and PECAM1. PLoS Pathog. 2, 1001083 (2010).
  2. Pinaud, R., Mello, C. V., Velho, T. A., Wynne, R. D., Tremere, L. A. Detection of two mRNA species at single-cell resolution by double-fluorescence in situ hybridization. Nat. Protoc. 3, 1370-1379 (2008).
  3. Cheeseborough, M. . District Laboratory Practice in Tropical Countries. , (2006).
  4. Brolin, K. J., Ribacke, U., Nilsson, S., Ankarklev, J., Moll, K., Wahlgren, M., Chen, Q. Simultaneous transcription of duplicated var2csa gene copies in individual Plasmodium falciparum parasites. Genome Biol. 10, R117 (2009).
  5. Epp, C., Li, F., Howitt, C. A., Chookajorn, T., Deitsch, K. W. Chromatin associated sense and antisense noncoding RNAs are transcribed from the var gene family of virulence genes of the malaria parasite Plasmodium falciparum. RNA. 15, 116-127 (2009).
  6. Freitas-Junior, L. H., Hernandez-Rivas, R., Ralph, S. A., Montiel-Condado, D., Ruvalcaba-Salazar, O. K., Rojas-Meza, A. P. Telomeric heterochromatin propagation and histone acetylation control mutually exclusive expression of antigenic variation genes in malaria parasites. Cell. 121, 25-36 (2005).
  7. Obernosterer, G., Martinez, J., Alenius, M. Locked nucleic acid-based in situ detection of microRNAs in mouse tissue sections. Nature Protoc. 2, 1508-1514 (2007).
  8. Li, F., Sonbuchner, L., Kyes, S. A., Epp, C., Deitsch, K. W. Nuclear non-coding RNA are transcribed from the centromeres of Plasmodium falciparum and are associated with centromeric chromatin. J. Biol. Chem. 283, 5692-5698 (2008).
  9. Thompson, J., Sinden, R. E. In situ detection of Pbs21 mRNA during sexual development of Plasmodium berghei. Mol. Biochem. Parasitol. 68, 189-196 (1994).
  10. Thompson, J. In situ detection of RNA in blood- and mosquito-stage malaria parasites. Methods Mole Med. 72, 225-235 (2002).
  11. Arnot, D. E., Ronander, E., Bengtsson, D. C. The progression of the intra-erythrocytic cell cycle of Plasmodium falciparum and the role of the centriolar plaques in asynchronous mitotic division during schizogony. Int. J. Parasitol. 41, 71-80 (2011).
  12. Osborne, C. S., Chakalova, L., Brown, K. E., Carter, D., Horton, A., Debrand, E., Goyenechea, B., Mitchell, J. A., Lopes, S., Reik, W., Fraser, P. Active genes dynamically colocalize to shared sites of ongoing transcription. Nat. Genet. 36, 1065-1071 (2004).
check_url/it/4073?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Ronander, E., Bengtsson, D. C., Joergensen, L., Jensen, A. T. R., Arnot, D. E. Analysis of Single-cell Gene Transcription by RNA Fluorescent In Situ Hybridization (FISH). J. Vis. Exp. (68), e4073, doi:10.3791/4073 (2012).

View Video