Summary

Stereotaktisk Intrakraniel Implantation og<em> In vivo</em> Bioluminescent Imaging af tumorvæv implanteret i en musemodel System af glioblastoma multiforme

Published: September 25, 2012
doi:

Summary

Vi beskriver en integreret fremgangsmåde til præcis stereotaktisk implantation af humane glioblastoma multiforme-celler ind i hjernen på nøgne mus og efterfølgende serielle<em> In vivo</em> Billedbehandling til at overvåge vækst og reaktion på behandlingen af ​​de resulterende xenotransplantater.

Abstract

Glioblastoma multiforme (GBM) er en high-grade primær kræft i hjernen med en median overlevelse på kun 14,6 måneder hos mennesker trods standard tri-modalitet behandling bestående af kirurgisk resektion, postoperativ strålebehandling og temozolomid kemoterapi 1. Nye terapeutiske tilgange er klart behov for at forbedre patienternes overlevelse og livskvalitet. Udviklingen af ​​mere effektive behandlingsstrategier vil blive hjulpet af dyremodeller for GBM der rekapitulere sygdom hos mennesker endnu tillade seriel billeddannelse til at overvåge tumor vækst og behandlingsrespons. I denne artikel beskriver vi vor teknik til præcis stereotaktisk implantation af bio-billedområdet GBM kræftceller i hjernen på nøgne mus resulterer i tumorxenotransplantater at rekapitulere vigtige kliniske træk ved GBM 2. Denne metode giver tumorer, som er reproducerbare og er placeret i præcise anatomiske steder, samtidig med at in vivo bioluminescerende billeddannelse til serielt overvåge intrakraniel xenotransplantat vækst og respons på behandling 3-5. Denne metode er også godt tolereret af dyrene med lav perioperative sygelighed og dødelighed.

Protocol

A. Pre-Operative tumorcelle Preparation Transducere U251 glioblastoma multiforme-celler med en lentiviral ekspressionsvektor (pGreenFire, System Biosciences) stabilt at udtrykke ildflue-luciferase-genet. Disse celler blev dyrket i 10 ml komplet Dulbeccos modifikation af Eagles medium (DMEM), der består af DMEM suppleret med 10% føtalt kalveserum, 1% penicillin-streptomycin og 1% ikke-essentielle aminosyrer i en T75 vævsdyrkningskolbe inkubering ved 5% C0 2 og 37 ° C. Udføre…

Discussion

Fremgangsmåden til stereotaktisk implantation af cancerceller i mus er beskrevet i dette dokument reproducerbart frembringer tumorer, som med rimelighed rekapitulere den infiltrativ og hurtig vækst mønster af klinisk glioblastoma multiforme 2, 6-8. Denne teknik er specielt velegnet til eksperimenter stratificere mus jævnt til forskellige behandlingsgrupper, hvor reproducerbare tumorer af sammenlignelig størrelse og biologiske egenskaber og i specifikke anatomiske steder er ønskelige. Stereotaktisk impla…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi er taknemmelige for Dr. Andrew Hollander, Sara Davis, Lee Shuman, Tim Jenkins, og Dr. Xiangsheng Xu for deres eksperthjælp. Vi anerkender støtten fra Dr. Ann Kennedy. BCB blev støttet på Radiation Biology Training Grant C5T32CA009677. JFD blev støttet på Burroughs Wellcome Career Award for medicinske forskere (1.006.792). JLB blev støttet på supers tilskud (5 R25 CA140116-03). Vi vil gerne anerkende Dr. Steve Hahn hvis opmuntring og støtte har bidraget til at gøre vores forskning mulig. Vi vil også gerne takke University of Pennsylvania Nano-Bio-grænseflade Center (NBIC) og Dr. Dennis Discher for opmuntring og nyttige kommentarer. Vi anerkender Small Animal Imaging Facility (SAIF) ved University of Pennsylvania for brug af deres MRI og optisk / Bioluminescence Core Facilities. Disse teknikker blev udviklet som en del af projekter, der blev støttet af National Institutes of Health (RC1 CA145075 og K08 NS076548-01).

Materials

Description Supplier Catalogue Number Comments
Digital Just for Mouse Stereotaxic Instrument Stoelting 51730D Stereotactic platform for mouse implantation
Ketamine/xylazine     Injectable anesthesia
Puralube Vet Ointment (ophthalmic) Amazon.com   To prevent drying of the mouse’s eyes
drill holder for the stereotactic platform Stoelting 51681  
Micromotor Electric Drill Stoelting 51449 For drilling through the skull
.45 mm carbide drill bit Stoelting 514551  
Sterile cotton swabs Fisher Scientific 23-400-100  
Glass bead dry sterilizer (Germinator 500) Braintree Scientific GER-5287 To sterilize metal surgical instruments
Mouse rectal probe Braintree Scientific RET-3-ISO Compatible with the temperature controller
Temperature Controller (TCAT-2DF) Harvard Apparatus 727561 Temperature controller to maintain animal’s temperature during surgery
Small heating plate Harvard Apparatus 727617 For use with temperature controller to warm mouse during surgery. The heating plate fits under the mouse on the stereotaxic platform.
Disposable Scalpels BD Bard-Parker 2015-11 #10 scalpel
10 microliter syringe Hamilton 7635-01 For injection of tumor cells
30 gauge needles, 1″ long, with flat point Hamilton Various Must be compatible with the 10 μl syringe
Nanomite Programmable Syringe Pump Harvard Apparatus 704507 Digital motorized syringe injector for stereotaxic device
Cellulose sterile surgical spear sponges Ultracell 40410 To dry the surgical field
Bone wax Ethicon W31 To seal the burr hole
Tissumend II synthetic absorbable tissue adhesive Veterinary Products Laboratories 3002931 To seal the incision
Hot water pump with warming pad Gaymar TP-650 Warms mice in post-operative period
IVIS Lumina II Caliper Life Science   Bioluminescent imager
D-Luciferin potassium salt Gold Biotechnology LUCK-1 Luciferin for bioluminescent imaging

References

  1. Stupp, R. Radiotherapy plus concomitant and adjuvant temozolomide for glioblastoma. N. Engl. J. Med. 352, 987-996 (2005).
  2. Jacobs, V. L., Valdes, P. A., Hickey, W. F., De Leo, J. A. Current review of in vivo GBM rodent models: emphasis on the CNS-1 tumour model. ASN Neuro. 3, e00063 (2011).
  3. Shelton, L. M. A novel pre-clinical in vivo mouse model for malignant brain tumor growth and invasion. J. Neurooncol. 99, 165-176 (2010).
  4. Brehar, F. M. The development of xenograft glioblastoma implants in nude mice brain. J. Med. Life. 1, 275-286 (2008).
  5. Ozawa, T., James, C. D. Establishing Intracranial Brain Tumor Xenografts With Subsequent Analysis of Tumor Growth and Response to Therapy using Bioluminescence Imaging. J. Vis. Exp. (41), e1986 (2010).
  6. Radaelli, E. Immunohistopathological and neuroimaging characterization of murine orthotopic xenograft models of glioblastoma multiforme recapitulating the most salient features of human disease. Histol. Histopathol. 24, 879-891 (2009).
  7. Baumann, B. C. Enhancing the efficacy of drug-loaded nanocarriers against brain tumors by targeted radiation therapy. , (2012).
  8. Baumann, B. C. An integrated method for reproducible and accurate image-guided stereotactic cranial irradiation of brain tumors using the Small Animal Radiation Research Platform (SARRP). Transl. Oncol. , (2012).
  9. Park, S. S. MicroPET/CT imaging of an orthotopic model of human glioblastoma multiforme and evaluation of pulsed low-dose irradiation. Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 80, 885-892 (2011).
  10. Szentirmai, O. Noninvasive bioluminescence imaging of luciferase expressing intracranial U87 xenografts: correlation with magnetic resonance imaging determined tumor volume and longitudinal use in assessing tumor growth and antiangiogenic treatment effect. Neurosurgery. 58, 365-372 (2006).
  11. Dinca, E. B. Bioluminescence monitoring of intracranial glioblastoma xenograft: response to primary and salvage temozolomide therapy. J. Neurosurg. 107, 610-616 (2007).
check_url/4089?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Baumann, B. C., Dorsey, J. F., Benci, J. L., Joh, D. Y., Kao, G. D. Stereotactic Intracranial Implantation and In vivo Bioluminescent Imaging of Tumor Xenografts in a Mouse Model System of Glioblastoma Multiforme. J. Vis. Exp. (67), e4089, doi:10.3791/4089 (2012).

View Video